Artykuł metodologiczny

Generowanie króliczego modelu infekcji kości: technika wywoływania przewlekłej infekcji poprzez wstrzykiwanie bakterii bezpośrednio do szpiku kostnego

8 lipca 2025

W tym artykule

Streszczenie

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Źródło: Zhang, Y i wsp., Leczenie siarczanem wapnia naładowanym wankomycyną i autogenną kością w ulepszonym króliczym modelu infekcji kości. J. Vis. Exp. (2019).

Ten film opisuje technikę chirurgicznego wywoływania infekcji bakteryjnej w szpiku kostnym królika za pomocą wosku kostnego, aby uniknąć wycieku bakterii. Ten model królika może być wykorzystany do badania leczenia infekcji kości i regeneracji kości.

Protokół

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Wszystkie procedury dotyczące modeli zwierzęcych zostały sprawdzone przez lokalny komitet ds. opieki nad zwierzętami oraz komisję weterynaryjną JoVE.

1. Przygotowanie modeli infekcji kości

  1. Trzymanie samców białych królików nowozelandzkich w wieku 3 miesięcy w oddzielnych klatkach, w kontrolowanych warunkach powietrza (20 ± 1 °C) i 12 godzinach/12 godzinach w jasnym i ciemnym oświetleniu. Oferuj rutynową dietę i codzienną wodę z kranu.
  2. Upewnij się, że w czasie operacji królik waży więcej niż 3 kg.
  3. Znieczulenie królików należy podać dootrzewnowo z pentobarbitalem sodu (3 mg na 100 g masy ciała). Upewnij się, że króliki są w pełni znieczulone przez brak reakcji na uszczypnięcie łapy. Zamocuj króliki na stole operacyjnym podczas procedury operacyjnej.
    UWAGA: Upewnij się, że czas trwania procedury modelowania jest krótszy niż 1 godzina.
  4. Ogol proksymalny obszar piszczeli za pomocą golarki elektrycznej w kierunku przeciwnym do kierunku wzrostu włosów. Zdezynfekuj skórę, nakładając roztwór jodu powidonu.
  5. Zaznacz górny koniec kości piszczelowej i pozycję otworu do wiercenia do wstrzyknięcia za pomocą S. aureus (odległość do górnego końca kości piszczelowej wynosi 1,5 cm) długopisem i linijką. Upewnij się, że otwory do wiercenia znajdują się poziomo w środku płaskowyżu piszczelowego (Rysunek 1A).
  6. Przeciąć skórę piszczeli za pomocą skalpela nr 11 i wykonać 1 cm nacięcie w okostnej (ryc. 1B, C). Wybij otwór w kości piszczelowej o średnicy 2 mm za pomocą elektrycznej wiertarki do kości (Rysunek 1D).
  7. Naciśnij otwory o średnicy 2 mm w płaskowyżu piszczelowym za pomocą cylindra z wosku kostnego o średnicy 2 mm i wysokości 2 mm (ryc. 1E). Usuń zapasowy wosk kostny wzdłuż płaszczyzny poziomej płaskowyżu piszczelowego (ryc. 1F). Sprawdź, czy otwór o średnicy 2 mm jest wypełniony woskiem kostnym (Rysunek 1G).
    nuta: Upewnij się, że otwory są pełne wosku kostnego, sprawdzając otwór z przelewem krwi lub bez.
  8. Zszyj okostną i skórę wchłanialnym szwem chirurgicznym w pionowym szwie materacowym, aby zapobiec żuciu szwów przez zwierzę (ryc. 1H).
  9. Wstrzyknąć 1 x 108 jtk/ml roztworów S. aureus (30 μl na 100 g masy ciała) za pomocą wstrzykiwacza do aseptyki o pojemności 1 ml (ryc. 1I). Upewnij się, że igły wnikają w wosk kostny i powoli wstrzykuj roztwór S. aureus do szpiku kostnego.
  10. Trzymaj zwierzę w ciepłych i czystych warunkach, aby uniknąć utraty ciepła po modelowaniu. Monitoruj częstość oddechów i tętno. Po przebudzeniu trzymaj króliki w indywidualnych klatkach ze swobodnym dostępem do jedzenia i wody.

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Wyniki

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

figure-results-1
Rysunek 1. Chirurgiczne opracowanie modelu zakażenia kości.(A) Pokazuje pozycję uderzenia na kości piszczelowej. Odległość między położeniem otworu wiertniczego do wstrzykiwania S. aureus a górnym końcem kości piszczelowej wynosi 1,5 cm. (B) Nacięcie wykonane w skórze w celu odsłonięcia okostnej. (C) Pokazuje nacięcie wykonane przez okostną...

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Oświadczenia

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
Nie stwierdzono konfliktu interesów.

Materiały

Lista materiałów użytych w tym artykule
NazwaFirmaNumer katalogowyKomentarze
wchłanialny szew chirurgiczny Jinghuan powiedział:Zobacz materiał 18S0604A
Wtryskiwacz aseptyczny Jinglong (Dżingdług)20170501
wosk kostny ETYKA JH5CQLM
Elektryczna wiertarka do kości Bao KangBKZ-1
Golarka elektryczna Kody3800
Króliki nowozelandzkie białe Centrum Zwierząt Doświadczalnych w Zhejiang SCXK 2014-0047
Skalpel nr 11 Prowincja Yuanlikang 20170604
pentobarbital sodu Merk2070124
Proszek do liofilizacji S. aureus Chińskie Ogólne Centrum Zbierania Kultur MikrobiologicznychZobacz materiał ATCC 6538
powiedział: szt.

Przedruki i uprawnienia

Poproś o pozwolenie na ponowne wykorzystanie tekstu lub ilustracji tego artykułu JoVE

Poproś o pozwolenie

Tagi

Rabbit Bone InfectionBone Marrow InjectionStaphylococcus AureusBone Wax PlugTibial DrillingPeriosteal SuturingOsteomyelitis ModelSequestrum FormationChronic InfectionBacterial Inoculation

Powiązane artykuły