Subskrypcja JoVE jest wymagana do oglądania tego materiału. Zaloguj się lub rozpocznij bezpłatny okres próbny.

Artykuł metodologiczny

Technika wytwarzania i dostarczania aerozoli leków bezpośrednio do płuc myszy

1.7K wyświetleń

⸱

8 lipca 2025

W tym artykule

Streszczenie

Źródło: Phillips, J. E. et al., Suchy proszek i inhalacja aerozolem w nebulizowanym aerozolu dostarczana myszom przy użyciu systemu ekspozycji tylko na nos.J. Vis. Exp. (2017)

Ten film pokazuje wytwarzanie aerozoli leków i celowe dostarczanie tych aerozoli myszom tylko do nosa za pomocą urządzenia do inhalacji wyposażonego w generator aerozolu. Mysz jest unieruchomiona w ograniczniku tylko na nos i podłączona do jednostki inhalacyjnej, która dostarcza lek bezpośrednio do jamy nosowej myszy. Następnie lek przechodzi przez tchawicę i dostaje się do płuc.

Protokół

Wszystkie procedury dotyczące modeli zwierzęcych zostały sprawdzone przez lokalny instytucjonalny komitet opieki nad zwierzętami oraz weterynaryjną komisję rewizyjną JoVE.

1. Formulacja i wybór urządzenia do wytwarzania aerozoli farmaceutycznych

UWAGA: Wybór formuły i urządzenia zależy od właściwości fizykochemicznych danego leku, który ma być aerozolowany.

  1. Aerozole ciekłe w nebulizacji.
    1. Rozpuść lek w 100 ml wody lub soli fizjologicznej.
    2. Załadować strzykawkę o pojemności 100 ml roztworem leku i umieścić strzykawkę w pompie strzykawkowej o natężeniu przepływu ustawionym na 1 ml/min.
    3. Podłączyć pompę strzykawkową do nebulizatora strumieniowego i usunąć powietrze z przewodu zasilającego prowadzącego do nebulizatora.
    4. Podłącz źródło sprężonego powietrza do nebulizatora strumieniowego i ustaw miernik przepływu powietrza na 10 l/min.
    5. Włóż nebulizator strumieniowy do separatora wstępnego. Separator wstępny łączy nebulizator z centralną komorą aerozolową urządzenia do inhalacji (rysunek 1).
      UWAGA: Wiele związków leczniczych ma ograniczoną rozpuszczalność w wodzie i lepiej jest je formułować w postaci suchych aerozoli w postaci proszku. Jeśli stabilne zawieszenie można wykonać z mikronizowanego związku o medianie średnicy aerodynamicznej (MMAD < 5 μM), można je stosować z nebulizatorem strumieniowym. Należy zachować ostrożność, ponieważ zawiesina może zatkać nebulizator. Stężenia w nebulizatorze w paszy od 1 mg/ml dla silnych związków (takich jak ipratropium rozszerzający oskrzela) do 40 mg/ml zawiesin (dla słabszych związków, takich jak siarczan salbutamolu). Szybkość podawania pompy strzykawki jest ustawiona na 1 ml/min ze względów praktycznych: aby umożliwić zakończenie okresu równoważenia stężenia aerozolu i 45-minutowej ekspozycji bez konieczności ponownego ładowania strzykawki.

2. Konfiguracja eksperymentu z ekspozycją na aerozol

  1. Zmierzyć stężenie leku (poprzez zebranie aerozolu na filtrze absolutnym) i rozkład wielkości cząstek (poprzez zebranie aerozolu za pomocą impaktora kaskadowego) aerozolu, który dostaje się do jednostki inhalacyjnej po separatorze wstępnym/cyklonie. Wykorzystaj te parametry, minutową wentylację zwierzęcia, masę ciała i czas ekspozycji, aby oszacować dawkę leku zdeponowaną w płucach.
    1. Zważyć filtr bezwzględny i zapisać masę filtra. Umieść filtr w uchwycie filtra i zamontuj uchwyt filtra. Podłączyć wlot uchwytu filtra absolutnego do centralnego portu próbki komory aerozolowej, a wylot do źródła podciśnienia ustawionego na pobieranie próbki aerozolu z natężeniem przepływu 1 l/min na potrzeby eksperymentu.
      UWAGA: Masa leku na filtrze po pobraniu próbki przez 45 minut może mieścić się w zakresie submikrogramów i/lub być zmieszana z laktozą, solą NaCl lub innym nośnikiem. Niezbędna jest mikrowaga z dokładnością do 0,1 mikrograma. Filtr musi być zrównoważony i zważony w środowisku o kontrolowanej wilgotności, aby uzyskać dokładną wagę leku osadzonego na filtrze. Masa leku na filtrach może być wykorzystana do obliczenia dawki tylko wtedy, gdy w postaci chemicznej nie ma nośnika lub nośnikiem jest woda. W przypadku gdy w postaci użytkowej znajduje się nośnik inny niż woda, masa substancji na filtrze stanowi jedynie szacunkowy punkt wyjścia do dalszej analizy zawartości leku za pomocą wysokosprawnej chromatografii cieczowej (HPLC).
    2. Zważyć i zapisać masę 7 kaskadowych filtrów stopnia impaktora i jednego końcowego filtra "końcówki". Umieść filtr na każdym z siedmiu stopni impaktora kaskadowego i zmontuj impaktor kaskadowy Mercer. Podłączyć wlot impaktora kaskadowego do centralnego portu próbki komory aerozolowej, a wylot do źródła podciśnienia ustawionego na pobieranie próbek aerozolu przy natężeniu przepływu, przy jakim impaktor kaskadowy jest kalibrowany (zwykle 0,5 lub 1 l/min) na czas trwania eksperymentu.
    3. Monitoruj zawartość aerozolu w urządzeniu do inhalacji za pomocą monitora aerozolu w czasie rzeczywistym (patrz Tabela materiałów i odczynników), aby potwierdzić, że generatory aerozoli działają i wytwarzają stabilny aerozol przez cały czas trwania eksperymentu. Podłącz wlot monitora aerozolu w czasie rzeczywistym do centralnego portu próbki komory aerozolowej, a wylot do źródła podciśnienia ustawionego na pobieranie próbki aerozolu z natężeniem przepływu 1 l/min na potrzeby eksperymentu.
      UWAGA: Sygnał monitorowania aerozolu w czasie rzeczywistym jest podawany w μg/l, ale jest skalibrowany dla pyłu drogowego i musi być ponownie skalibrowany dla każdego aerozolu leku, aby uzyskać prawidłowe wartości stężenia aerozolu. Kalibracja nie jest konieczna w przypadku korzystania z monitora w celu potwierdzenia obecności lub braku stężenia aerozolu oraz stabilności czasowej.
    4. Ustaw parametry sterowania procesem (przepływ powietrza, podciśnienie, ciśnienie, moc generatora aerozolu) na wymagane wartości, które zależą od liczby zwierząt podłączonych do jednostki inhalacyjnej. Jednostka inhalacyjna i generatory aerozoli są w sposób ciągły kontrolowane/monitorowane przez skomputeryzowany system kontroli/akwizycji danych procesu (DACO) dostarczony przez producenta (patrz Tabela materiałów i odczynników). Natężenie przepływu powietrza do urządzenia do inhalacji powinno być co najmniej około 2 razy większe niż całkowite minutowe tempo wentylacji wszystkich zwierząt w urządzeniu do inhalacji, aby uniknąć gromadzenia się CO2 .
  2. Załaduj myszy do ograniczników tylko do nosa przed wystawieniem ich na działanie aerozolu w urządzeniu do inhalacji tylko do nosa. Załaduj również zwierzęta do ograniczników, aby mogły oddychać powietrzem w pomieszczeniu.
    UWAGA:
    Eksperyment dawka/odpowiedź składa się z wielu grup myszy wystawionych na działanie aerozolu przez różny czas. Czas ekspozycji kontroluje dawkę każdej grupy podczas eksperymentu dawka/odpowiedź.
    1. Ustaw rurkę krępującą w kierunku sufitu, próbując załadować zwierzęta, ponieważ mają one tendencję do biegania w górę, próbując uciec. Skierowanie rurek w dół podczas ładowania zachęci do odwrócenia się i ucieczki z tyłu rury. Upewnij się, że nos myszy jest skierowany w spiczasty koniec rurki i zamocuj tłok o zmiennym położeniu w tylnej części ogranicznika.
      UWAGA: Tłok jest tak skonstruowany, aby ogon myszy wystawał z uchwytu, co umożliwia myszowi regulację temperatury ciała podczas przebywania w uchwycie.
    2. Wyreguluj tłok, aby myszy mogły się obracać, ale nie obracać się od głowy do ogona, aby zapewnić wdychanie aerozolu.
    3. Stale monitoruj myszy w rurkach krępujących. Po ustawieniu tłoka małe myszy (<20 gramów) często próbują obrócić się głową w ogon w rurkach i przyjąć pozycję U, w której mają problemy z oddychaniem. To zachowanie podczas skręcania jest najbardziej rozpowszechnione w ciągu pierwszych 5 minut powściągliwości; Po tym myszy rzadko próbują obrócić się od głowy do ogona.

3. Dostarczanie aerozolu

  1. Włóż korki, aby zatkać porty tłoczne jednostki inhalacyjnej i aktywować generator aerozolu, regulator przepływu sprężonego powietrza i pompę próżniową jednostki inhalacyjnej z poziomu oprogramowania sterującego procesem.
  2. Gdy odczyty z monitora aerozolu w czasie rzeczywistym wykażą, że stężenie aerozolu musi dojść do równowagi (~30 min, rysunek 2), zacznij wyjmować korki i wkładać do urządzenia do inhalacji rurki krępujące tylko nos, zawierające myszy. Powtarzaj tę czynność, aż wszystkie myszy wystawione na działanie leku zostaną podłączone do urządzenia do inhalacji.
    UWAGA: W przykładowym eksperymencie całkowity przepływ powietrza dostarczany do jednostki inhalacyjnej za pośrednictwem generatora aerozoli i powietrza rozcieńczającego jest ustawiony tak, aby zapewnić natężenie przepływu 0,5 l/min do każdego używanego portu narażenia zwierząt. Na przykład całkowity przepływ powietrza 15 l/min wystarcza do zasilania każdego z 30 portów w urządzeniu do inhalacji. Jest to znacznie większy przepływ powietrza niż wymaga tego minutowa wentylacja myszy, ale większy przepływ powietrza jest niezbędny do dostarczenia energii (spadek ciśnienia na generatorze aerozolu) w celu wytworzenia (atomizacji/deaglomeracji) aerozolu.
  3. Gdy wszystkie zwierzęta zostaną załadowane do jednostki naświetlania, włącz pompy do pobierania próbek próżniowych podłączone do filtra absolutnego i impaktora kaskadowego za pomocą oprogramowania sterującego procesem.
  4. Po zakończeniu wszystkich ekspozycji wyłącz generator aerozoli i wyjmij pozostałe myszy z urządzenia do inhalacji.
    UWAGA: Zwierzęta będą obsługiwane w kapturze stanowiska do przewijania lub przez personel noszący maskę na twarz. Po zakończeniu podawania aerozolu myszy są wyjmowane z probówek i odkażane po każdym użyciu.

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Wyniki

figure-results-1
Rysunek 1: Urządzenie do inhalacji z podłączonym generatorem aerozolu w postaci suchego proszku. Nebulizator używany do generowania aerozolu z płynnych preparatów jest pokazany po prawej stronie. 1) Zasilanie pyłem Wrighta, 2) cyklon, 3) pompa strzykawkowa, 4) nebulizator strumieniowy umieszczony w separatorze wstępnym, 5) mieszalnik powietrza rozcieńczającego. Podczas dostarczania aerozoli w nebuli...

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Oświadczenia

Nie stwierdzono konfliktu interesów.

Materiały

Lista materiałów użytych w tym artykule
NazwaFirmaNumer katalogowyKomentarze
Urządzenie do inhalacji do ekspozycji tylko na nosSystemy TSE700100-KNES-040-SSDostępne konfiguracje niestandardowe
System akwizycji danych DACOSystemy TSE700400-PRO-C-D/1
Młyn strumieniowy MC OneLinie lotnicze JetpharmaDEC MicroJet 10
Mikser TurbulaGlenMills IncCzołg T2F
Mikronizowana laktozaDFE PharmaLaktohal 200
Prasa hydraulicznaSpecyfikacjaGS15011
Kaskadowe filtry udarowePall Nauki przyrodnicze7219Filtr emfab
Filtry bezwzględneWhatman10370302Średnica 5 cm
Monitor aerozoli w czasie rzeczywistym
Monitor Microdust Pro
CasellaCEL-712
Bromek ipratropiumSpektrum chemiczneI1178wstępnie zmikronizowane
System flexiVent FX1scireq powiedział:FV-FXCS
Rozdział powiedział:

Przeglądaj więcej artykułów

Inhalacja wyłącznie donosowagenerowanie aerozoludostarczanie aerozolu lekuekspozycja płuc myszynebulizator jetowyimpaktor kaskadowymonitor aerozolu w czasie rzeczywistymogranicznik donosowyźródło sprężonego powietrzarównowaga stężenia aerozolu