Artykuł metodologiczny

Wszczepienie zespołu elektrod do mózgu myszy w celu zapisu elektrofizjologicznego

8 lipca 2025

W tym artykule

Streszczenie

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Źródło: Straub, J., et al. Przygotowanie i implantacja elektrod dla elektrycznie zapalających myszy VGAT-cre w celu wygenerowania modelu padaczki skroniowej. J. Vis. Exp. (2021).

Ten film demonstruje technikę wszczepiania zespołu elektrod do mózgu myszy. Zespół zawiera elektrody bipolarne do rejestrowania aktywności z hipokampa i elektrodę odniesienia do uzyskiwania podstawowej aktywności z móżdżku. Znieczuloną mysz umieszcza się na stereotaktycznej ramie, a zespół elektrod wszczepia się w docelowy obszar mózgu. Następnie zwierzę może dojść do siebie przed wykonaniem zapisu elektrofizjologicznego.

Protokół

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Wszystkie procedury dotyczące modeli zwierzęcych zostały sprawdzone przez lokalny instytucjonalny komitet opieki nad zwierzętami oraz weterynaryjną komisję rewizyjną JoVE.

1. Tworzenie zestawów słuchawkowych z dwiema elektrodami bipolarnymi (Rysunek 1)

  1. Wytnij 3,5 cm drutu ze stali nierdzewnej pokrytego politetrafluoroetylenem.
  2. Zdejmij około 1 mm warstwy izolacyjnej z drutu na obu końcach. Nie zdejmuj zbyt dużej izolacji z przewodu.
  3. Umieść dwa kołki na uchwycie imadła dolną częścią kołka, która ma dłuższą szczelinę skierowaną w dół.
  4. Nałóż topnik na odizolowane końce drutu i na wierzchołki kołków.
  5. Ocynuj odizolowaną część drutu wystarczającą ilością lutu, aby go pokryć.
  6. Dodaj minimalną ilość lutu na górę kołka, nie przelewając się na boki.
  7. Umieść jeden koniec odizolowanych końców drutu w szpilce tak głęboko, jak to możliwe, podczas gdy lut jest topiony.
    nuta: Jest boczny otwór, z którego może wyjść drut - nie pozwól, aby drut wyszedł z kołka. Cały odizolowany drut musi pozostać w obrębie kołka.
  8. Powtórz kroki 1.6-1.7 dla drugiego pinu, teraz z pozostałymi odizolowanymi końcami drutu.
  9. Pozostaw kołki na 30 sekund, aby się ustawiły, wyjmij je z uchwytu imadła, a następnie pociągnij za nie, aby upewnić się, że połączenie między drutem a kołkami jest mocne i trzyma się.
  10. Opłucz szpilki w zimnej wodzie, a następnie wysusz.
  11. Sprawdź przewodność między pinem 1 a pinem 2 za pomocą omomierza.
  12. Zbliż do siebie kołki na końcach drutu; trzymaj je równolegle i blisko. Zacisnąć hemostat na środku drutu. Następnie obróć hemostat, aby drut owinął się wokół siebie dość mocno. Usuń hemostat.
  13. Zacisnąć kleszczyki na skręconym drucie 2 mm poniżej kołków i zegnij drut pod kątem 90°.
  14. Ponownie popchnij ten sam drut pod kątem 90° z powrotem przez kleszcze, tworząc kolejne zagięcie 1 mm od pierwszego.
  15. Przetnij skręcony drut pod kątem 45° poniżej zagięcia na 3,5 mm małymi ostrymi nożyczkami.
  16. Przygotuj dwie z tych dwubiegunowych (skręconych dwupinowych) elektrod dla każdego zestawu słuchawkowego (opcjonalnie, druga to kopia zapasowa w przypadku problemów elektrycznych z pierwszą).
  17. Przygotuj pojedynczą elektrodę referencyjną, przecinając drut z kołkami przylutowanymi na obu końcach na dwie części (kroki 1.1-1.17, Rysunek 1A).
  18. Przetnij drut na 7 mm.
  19. Zegnij koniec 1 mm poniżej końcówki.
  20. Następnie przykryj wygiętą końcówkę drutu o średnicy 1 mm kleszczykami i mocno obróć drut wokół kleszczy, aby utworzyć małą pętlę (o średnicy 1 mm).
  21. Zegnij pętlę prostopadle do prostej części drutu, aby końcówka drutu była ponownie skierowana na zewnątrz.
  22. Zamontuj dwie elektrody bipolarne i pojedynczą elektrodę odniesienia w sześciopinowym cokole w taki sposób, aby elektrody bipolarne znajdowały się obok siebie w odległości 6 mm między nimi, a elektroda referencyjna była umieszczona w środkowym zewnętrznym otworze (Rysunek 1B).
    nuta: Alternatywną metodą jest wszczepienie elektrod, zacementowanie ich na miejscu, a następnie włożenie ich kołków w cokół.

2. Stereotaktyczne wszczepienie elektrody

  1. Wysterylizuj wszystkie narzędzia chirurgiczne i sześciopinowy zespół elektrod przez autoklawowanie przed operacją. Podczas operacji należy zachować sterylne pole operacyjne i używać sterylnych rękawic chirurgicznych. Sterylne obłożenia (np. Press n' Seal) są zalecane do przykrycia zwierzęcia z wyjątkiem obszaru operacyjnego.
  2. Użyj 8-tygodniowych myszy VGAT-Cre (eksprymujących rekombinazę Cre pod kontrolą genu pęcherzykowego transportera GABA [VGAT], dopasowanych do wieku, zarówno samców, jak i samic) do operacji 4 tygodnie po odsadzeniu. Zapisz wagę zwierzęcia przed operacją, aby umożliwić pomiar utraty masy ciała po operacji.
  3. Używaj certyfikowanego waporyzatora izofluranu lub systemu anestezjologicznego o niskim przepływie wyposażonego w precyzyjną pompę strzykawkową, zintegrowany parownik cyfrowy i poduszkę termiczną ze sprzężeniem zwrotnym.
    nuta: Systemy o niskim przepływie są w stanie dostarczyć znieczulenie o niskim natężeniu przepływu proporcjonalnym do wielkości zwierzęcia do komory indukcyjnej lub przez stożek nosowy na ramie stereotaktycznej (70 ml/min, stężenie izofluranu w powietrzu wynosi 4% dla indukcji i 2% dla operacji). Stosowanie mniejszej ilości znieczulenia nie tylko przynosi korzyści zwierzęciu podczas operacji, ale także zmniejsza ryzyko narażenia personelu laboratoryjnego na izofluran.
  4. Umieść znieczulone zwierzę na podgrzewanej podkładce rozgrzanej do 37 °C, aby utrzymać ją w cieple podczas operacji. W przypadku korzystania z systemu temperatury sterowanego sprzężeniem zwrotnym, włóż lekko nasmarowaną sondę temperatury do odbytnicy zwierzęcia w celu monitorowania temperatury podczas operacji.
  5. Zamontuj zwierzę na ramie stereotaktycznej, delikatnie umieszczając nauszniki w uszach, a przednie górne zęby w siekaczu. Umieść stożek nosowy nad nosem, aby zapewnić prawidłowe podanie znieczulenia. Upewnij się, że głowa jest wypoziomowana i wyśrodkowana i nie można jej przesunąć przy lekkim sondowaniu.
  6. Podskórnie wstrzyknąć 0,5 ml normozolu w celu nawodnienia.
  7. Zastosuj lubrykant do oczu, aby zapobiec wysuszeniu rogówki.
  8. Monitoruj głębokość znieczulenia przez brak odruchu wycofania po uszczypnięciu palca kończyny tylnej, a następnie zmniejsz izofluran do 1,5%-2,0% podczas operacji.
  9. Usuń włosy w okolicy operacyjnej i wokół niej, wyrywając lub używając maszynki do strzyżenia (golenia) lub kremu do depilacji, a następnie zdezynfekuj skórę trzema cyklami naprzemiennego stosowania jodu i etanolu, kończąc jodem. Usuwanie włosów z miejsca operowanego jest zalecane tylko wtedy, gdy istnieją środki do utrzymania znieczulenia w tym miejscu. W razie potrzeby użyj aplikatorów z bawełnianą końcówką nasączoną alkoholem, aby usunąć włosy z bezpośredniego obszaru otaczającego głowę. Wstrzyknąć podskórnie 0,05 ml miejscowej przeciwbólowej bupiwakainy (0,25%).
  10. Wykonaj nacięcie na czaszce za pomocą skalpela, a następnie wytnij część skóry ostrymi nożyczkami chirurgicznymi, odsłaniając czaszkę. Odsuwając skórę na bok, za pomocą bawełnianego wacika oczyść czaszkę ze wszystkich mięśni i tkanek zasłaniających widok.
    nuta: Aby zatamować przypadkowe krwawienie, należy uciskać miejsce krwawienia sterylnym wacikiem, aż do jego ustania.
  11. Oczyść czaszkę wodą utlenioną za pomocą sterylnych wacików, aby widoczne były szwy czaszki oraz bregma i lambda.
  12. Dokładnie osusz czaszkę, a następnie nałóż jedną kroplę samotrawiącego kleju dentystycznego za pomocą aplikatora. Wmasuj go w czaszkę, odczekaj 60 s i utwardź dentystycznym światłem UV przez 40 sekund. Błyszcząca powierzchnia wskazuje, że klej został skutecznie usieciowany z czaszką.
    nuta: Ten krok ma kluczowe znaczenie dla bezpiecznego zamocowania zestawu słuchawkowego.
  13. Użyj wiertła 0,031" (0,79 mm), aby obustronnie wywiercić dwa otwory na zadziory w celu wszczepienia elektrod głębokości hipokampa (około 5,000 obr./min). Wywierć jeden dodatkowy otwór na elektrodę odniesienia nad móżdżkiem za lambda.
    UWAGA: Podczas wiercenia należy uważać, aby powoli opuszczać wiertło i unikać wwiercania się w mózg.
  14. Współrzędne elektrod są następujące (z bregma w mm): elektrody hipokampa na głębokości 3 mm z tyłu, 3 mm bocznej i 3 mm oraz elektroda referencyjna móżdżku na głębokości 6 mm z tyłu, 0 mm bocznej i 0 mm (podtwardówkowa).
  15. Aby zwiększyć dokładność, użyj wiertła zamontowanego stereotaktycznie, wyzeruj oś X/Y manipulatora stereotaktycznego podczas dotykania bregmy - jest to punkt odniesienia dla współrzędnych.
  16. Zmontuj zestaw słuchawkowy, wkładając wszystkie elektrody do sześciopinowego cokołu, upewniając się, że kołki są wciśnięte do końca. Zamontuj cokół w uchwycie elektrody na ramie stereotaktycznej (Rysunek 1B).
  17. Ustaw elektrody nad odpowiednimi otworami na zadziory. Stereotaktycznie wszczepij skręcone bipolarne elektrody druciane ze stali nierdzewnej w prawym i lewym hipokampie oraz elektrodę odniesienia do móżdżku, powoli opuszczając zestaw słuchawkowy i prowadząc elektrody do otworów w zadziorach.
  18. Gdy elektroda skrętna hipokampa znajdzie się tuż nad otworem, wyzeruj oś Z i powoli opuść do -3,0 mm.
  19. Pokryj powierzchnię czaszki i elektrody cementem dentystycznym i wypełnij przestrzeń między powierzchnią czaszki a dnem cokołu. Krawędzie skóry będą przylegać do cementu dentystycznego, tak że żadna tkanka pod spodem nie pozostanie odsłonięta. Poczekaj, aż cement wyschnie i stwardnieje. Następnie odłącz uchwyt elektrody od ramienia stereotaktycznego i zdejmij uchwyt z cokołu.
  20. Wstrzyknąć 0,1 ml ketoprofenu (1 mg/ml, podskórnie [SC]) w celu znieczulenia i drugą dawkę 0,5 ml normozolu (SC) w celu nawodnienia i usunąć zwierzę z ramy stereotaktycznej.
  21. Umieścić podkładkę izotermiczną podgrzaną do temperatury 37 °C w pustej klatce wiwarium przykrytej ręcznikiem papierowym. Gdy zwierzę jest w pełni wybudzone, umieść je w czystej klatce z pościelą i miękkim jedzeniem, a następnie zwróć je do wiwarium. Od tego momentu zwierzęta są trzymane pojedynczo, aby zapobiec gryzieniu nawzajem swoich zestawów słuchawkowych. Zbiorniki z drucianymi prętami nie są używane, aby uniknąć utknięcia zestawów słuchawkowych, a zamiast tego butelki z wodą są przywiązane do spodu górnych części klatki, a karma jest obecna w pościeli.
  22. Karm zwierzę miękkim pokarmem przez 72 godziny po operacji i monitoruj utratę wagi i ocenę kondycji ciała. Odwodnionym zwierzętom można podawać podskórnie 0,5 ml normozolu, jeśli są odwodnione (utrata masy ciała, zwiększony turgor skóry, zapadnięte oczy). Ketoprofen można podawać podskórnie raz dziennie przez kolejne 2 dni po zabiegu (postępuj zgodnie ze schematem analgezji zgodnie z wytycznymi lokalnego instytucjonalnego komitetu ds. opieki i użytkowania zwierząt [IACUC]). Pozwól zwierzętom w pełni wyzdrowieć w klatkach przez 4-7 dni przed przeniesieniem do systemu rejestracji elektroencefalografii (EEG).

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Wyniki

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

figure-results-1
Rysunek 1: Kluczowe etapy produkcji gogli EEG. (A) Wygląd elektrod na różnych etapach protokołu (numery po lewej stronie zgadzają się). (B) Zdjęcie produktu końcowego zamontowane w domowej roboty uchwycie, który pasuje do ramy stereotaktycznej. Uwaga, uchwyt kończy się zespołem sworznia kołnierza, który pasuje do cokołu zestawu słuchawkowego.

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Oświadczenia

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
Nie stwierdzono konfliktu interesów.

Materiały

Lista materiałów użytych w tym artykule
NazwaFirmaNumer katalogowyKomentarze
16-kanałowy zewnątrzkomórkowy różnicowy wzmacniacz prądu przemiennego (115 V / 60 Hz)Instrumenty ADZobacz materiał AM3500-115-60Alternatywny wzmacniacz EEG
363/CP KOŁNIERZ WTYKOWY, TULEJA SWORZNITechnologie P1363SLEEVPIN0NLDo uchwytu elektrody
, 363-363 5CM - 100CM W/MESH 6TCMTechnologie P1363363XXXXCM004Przewód między myszą a komutatorem
Kamery CCTV: Qcwox HD, Sony IR LEDSonyKontroler QC-SP316
Komutator SL6C/SB (pojedyncza szczotka)Technologie P1Zobacz materiał 8BSL6CSBC0MTdawniej Plastics One, Inc.
Wzmacniacz prądowySystemy A-Mnr wzoru 2100
Cement dentystycznyStoelting (Stoelting)Numer katalogowy: 51459
Wiertła, #75, OD 0.310" LOC 130 PTKsiążeczka KyoceraNumer katalogowy: 105-0210.310
E363/0 STYK GNIAZDOWY SKOŚNYTechnologie P18IE3630XXXXEpiny do złącza
Klej iBond Self EtchKulzerCE0197
MS363 COKÓŁ 2298 6 PIN BIAŁYTechnologie P18K000229801FZłącze zestawu słuchawkowego EEG
OmomierzSimpson260Wysoka czułość
PowerLab 16/35 oraz LabChart ProInstrumenty ADPL3516/PAlternatywne oprogramowanie EEG
Pakiet SomnoSuiteKorporacja Naukowa KentZobacz materiał SS-01Jednostka anestezjologiczna i monitorowanie RightTemp
Wiertarka stereotaktyczna i zestaw mikrosilnikaForedom Electric Co.K.1070
Ramka stereotaktycznaDavid Kopf Instrumentywzoru 940
Drut pokryty teflonem do elektrody głębokościowej, OD 0,008'Systemy A-MNumer telefonu 791400
Myszy VGAT-Cre na kongenicznym tle C57BL/6JLaboratorium Jacksona664
powiedział: powiedział: powiedział: szt. TGL TGL

Przedruki i uprawnienia

Poproś o pozwolenie na ponowne wykorzystanie tekstu lub ilustracji tego artykułu JoVE

Poproś o pozwolenie

Tagi

Implantacja w m zgu myszystereotypikrejestracja z hipokampareferencja m d kowacement dentystycznymonitorowanie anestezjiwiercenie otworu trepanacyjnegomyszy VGAT Cre

Powiązane artykuły