Subskrypcja JoVE jest wymagana do oglądania tego materiału. Zaloguj się lub rozpocznij bezpłatny okres próbny.

Artykuł metodologiczny

Ustalenie modelu choroby Alzheimera w mózgu danio pręgowanego poprzez wstrzyknięcie peptydu amyloidowego

1.5K wyświetleń

8 lipca 2025

W tym artykule

Streszczenie

Bhattarai, P., et al. Modelowanie toksyczności i neurodegeneracji amyloidu-β42 w mózgu dorosłego danio pręgowanego. J. Vis. Exp. (2017).

Ten film demonstruje procedurę wstrzykiwania monomerycznych peptydów amyloidowych do przodomózgowia dorosłego danio pręgowanego w celu wytworzenia toksyczności amyloidu, naśladując uszkodzenia neuronów obserwowane w chorobie Alzheimera.

Protokół

1. Przygotowanie peptydu Aβ42

  1. Zsyntetyzować peptydy (patrz Tabela 1) przy użyciu standardowej chemii 9-fluorenylu metoksykarbonylu (Fmoc) z 2-(1H-benzotriazolo-1-ylem)-1,1,3,3-tetrametyluronoiumheksafluorfosforanem (HBTU) jako odczynnikiem sprzęgającym w zautomatyzowanym syntezatorze peptydów w fazie stałej. Skala syntezy wynosiła 100 μmol.
  2. Załaduj do automatycznego syntezatora peptydów 500 mg żywicy chronionej Fmoc jako fazę stałą (zdolność ładowania 0,2 mmol/g). Załadować rozpuszczone aminokwasy chronione Fmoc w stężeniu 0,5 M w wymaganej objętości i zgodnie z obliczeniami dla odpowiedniego syntezatora.
    nuta: Obliczenia są wykonane tak, aby umożliwić dwukrotne sprzężenie każdego aminokwasu chronionego Fmoc z 5-krotnym nadmiarem każdego elementu budulcowego do żywicy.
  3. Rozpuścić odczynniki wymagane do syntezy peptydów w dimetyloformamidzie (DMF). Na przykład należy przygotować aktywator HBTU o stężeniu 0,48 M, 45% v/v N-metylomorfoliny (NMM) (zasada) i 5% v/v bezwodnik octowy (mieszanina zamykająca), aby przykryć nieprzereagowane grupy aminowe.
  4. Rozszczepić wszystkie peptydy z żywicy, mieszając w sposób ciągły stałe podłoże za pomocą mieszadła w świeżo przygotowanej mieszaninie rozszczepiającej składającej się z kwasu trifluorooctowego (TFA): triizopropylosilanu (TIS): wody: ditiotreitolu (DTT) w temperaturze 90 (v/v): 5 (v/v): 2,5 (v/v): 2,5 (m/v) przez 4 godziny. Użyj 10 ml dla skali syntezy 100 μmol.
  5. Wytrącić rozszczepiony produkt, dodając mieszaninę rozszczepienia do 100 ml lodowatego eteru dietylowego. Przepuścić przez jednostkę filtracyjną zawierającą filtr z politetrafluoroetylenu (PTFE) o wielkości porów 0,45 μm i przemyć 20 ml lodowatego eteru dietylowego.
  6. Zebrać przefiltrowany peptyd z bibuły filtracyjnej i rozpuścić 100 mg wytrąconego peptydu w 5 ml destylowanej wody dejonizowanej: acetonitryl w stosunku 1:1.
  7. Oczyszczać za pomocą wysokociśnieniowej chromatografii cieczowej (HPLC) z odwróconymi fazami na półpreparatywnej HPLC wyposażonej w porowatą kolumnę polistyrenową diwinylobenzenu o wielkości kulki 10 μm.
    1. Podgrzej kolumnę i utrzymuj ją w temperaturze 50 °C za pomocą urządzenia grzewczego kolumny. Zebrać wszystkie główne frakcje za pomocą automatycznego kolektora frakcji, stosując gradient od 5% do 100% rozpuszczalnika B przez 25 minut przy 4 ml/min.
      nuta: Rozpuszczalnik A to 0,1% TFA w wodzie, a rozpuszczalnik B to 0,1% TFA w acetonitrylu.
    2. Monitorować chromatogram przy długości fali 220 nm, zebrać odpowiednie piki i przeprowadzić analizę przy użyciu chromatografii cieczowej ze spektrometrią mas (LC-MS).
  8. Potwierdzić czystość za pomocą analitycznej ultrawysokociśnieniowej chromatografii cieczowej (UPLC) z odwróconymi fazami przy długości fali 220 nm, monitorując za pomocą detektora ultrafioletowego (UV) podczas przepuszczania próbki przez analityczną kolumnę C18 (wielkość kulki 1,7 μm). Potwierdzić produkt peptydowy za pomocą spektrometrii mas.
    nuta: UPLC jest sprzężony ze spektrometrią mas z jonizacją elektrorozpylania (ESI-MS) i tandemowym detektorem kwadrupolowym.
  9. Liofilizuj odpowiednie frakcje pożądanego peptydu w kolbie okrągłodennej, przykładając próżnię 0,052 mbar do puszystego proszku. Podłączyć pompę próżniową do urządzenia zamrażającego utrzymywanego w temperaturze -78 °C. Przechowywać w temperaturze -80 °C przez czas nieokreślony.
  10. Użyj liofilizowanego peptydu, aby przygotować roztwór podstawowy 1 mM w mieszaninie acetonitrylu, DMF i wody analitycznej w stosunku 1:1:1 do eksperymentów. Roztwór ten można przechowywać przez co najmniej 6 miesięcy, ponieważ peptydy nie agregują się w nim.

2. Przygotowanie mieszaniny iniekcyjnej

  1. Przygotować sól fizjologiczną buforowaną fosforanami (PBS) (137 mM NaCl, 2,7 mM KCl, 10 mM Na2HPO4, 2 mM KH2PO4, pH 7,4) do rozcieńczenia liofilizowanych peptydów.
  2. Rozpuścić peptyd do końcowego stężenia 20 μM w PBS. Przygotuj ten roztwór na świeżo. Dobrze wymieszać i przechowywać na lodzie do momentu wstrzyknięcia. Nie należy przekraczać 30 minut, aby zapobiec agregacji w roztworze.

3. Znieczulenie

  1. Przygotować roztwór podstawowy środków znieczulających, 0,1% metanosulfonianu etylu m-aminobenzoesanu (MESAB), w zwykłej wodzie dla ryb z układu krążenia. Przygotować roztwór znieczulający do końcowego stężenia 0,0025% (v/v).
  2. Wyjmij żądaną liczbę ryb z ich zbiorników do pojemnika transportowego z 5 litrami wody systemowej.
  3. Napełnij do połowy plastikową szalkę Petriego (90 mm) 40 ml środków znieczulających. Używaj tego naczynia do wstrzykiwań.
  4. Inkubować ryby w środkach znieczulających, aż ruch operkularny ustanie.

4. Mikroiniekcja komorowa mózgu

  1. Przygotowanie aparatu iniekcyjnego
    1. Przygotować szklane kapilary iniekcyjne za pomocą ściągacza igłowego o następujących parametrach: cykl nagrzewania, 537; cykl ciągnięcia, 250; prędkość, 1,5 s; czas, 80 ms.
    2. Ustaw ciśnienie w źródle ciśnienia na 25 psi.
    3. Ustaw parametry mikrowtryskiwacza na 20 psi dla wstrzymania i 10 psi dla wyrzutu, 2.5 dla okresu i 100 ms dla bramkowania.
    4. Napełnić szklaną kapilarnę roztworem do wstrzykiwań. Włożyć szklaną kapilę do uchwytu do mikroiniekcji. Ustaw kąt wtrysku na 45°.
  2. Umieść jedną rybę na nowej szalce Petriego wypełnionej roztworem znieczulającym.
  3. Chwyć rybę kleszczami i ustaw się do wstrzyknięcia.
  4. Za pomocą końcówki igły 30 G należy wykonać szczelinę w czaszce nad powierzchnią nerwu wzrokowego, w miejscu, w którym spotykają się dwie boczne płytki. Nie wkładaj końcówki do tkanki mózgowej, może to spowodować krwawienie i uszkodzenie.
  5. Włóż szklaną kapilarnę do szczeliny.
    1. Używać tylko końcówki igły i nie przebijać czaszki na więcej niż 1 mm. Trzymaj rybę i włóż końcówkę szklanej kapilary przez miejsce nacięcia.
    2. Ustaw końcówkę szklanej kapilary w kierunku kresomózgowia pod kątem 45°. Wstrzyknąć 1 μl roztworu. Ciecz rozprasza się natychmiast po wstrzyknięciu.

5. Odzyskiwanie

  1. Umieść rybę z powrotem w pojemniku transportowym, aż wyzdrowieje. Podłącz pojemnik do regularnie krążącej wody dla ryb, aby zapewnić optymalną jakość wody.
    nuta: Rekonwalescencja powinna zwykle trwać 1 minutę. Jeśli trwa to dłużej, ryba musi być trzymana w znieczuleniu przez krótszy czas (eksperymentator musi to zoptymalizować).

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Wyniki

Tabela 1: Sekwencje peptydowe Aβ42 i TR-Aβ42.

powiedział:
peptydSekwencja peptydowaMW (g/mol)
Aβ42DAEFRHDSGYEVHHQKLVFFAEDVGSNKGAIIGLMVGGVVIA4514.1
TR-Aβ42GWTLNSAGYLLGKINLKALAALAKKILDAEFRHDSGYEVHHQKLVFFAEDVGSNKGAIIGLMVGGVV...

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Oświadczenia

Nie stwierdzono konfliktu interesów.

Materiały

Lista materiałów użytych w tym artykule
NazwaFirmaNumer katalogowyKomentarze
Aminokwasy chronione przez FmocIRIS Biotech GmbH (Marktredwitz, Niemcy)Aminokwasy na bazie Fmoc do syntezy peptydów w fazie stałej (SPPS)
Heksafluorofosforan N,N,N′,N′-tetrametylo-O-(1H-benzotriazol-1-ylo)uron (HBTU)IRIS Biotech GmbH (Marktredwitz, Niemcy)RL-1030Aktywator
Oksyma (Oxyma)IRIS Biotech GmbH (Marktredwitz, Niemcy)RL-1180Tłumik racemizacji
N,N-diizopropyloetyloaminaIRIS Biotech GmbH (Marktredwitz, Niemcy)SOL-003baza
DimetyloformamidIRIS Biotech GmbH (Marktredwitz, Niemcy)SOL-004rozpuszczalnik
N-metylomorfolinaThermo Fisher (Kandel) GmbH, NiemcyA12158baza
Hydrat 1-hydroksybenzotriazolu (HOBT)Sigma-Aldrich Co. LLC. (St. Louis, MO, Stany Zjednoczone)157260 ALDRICHAktywator
PiperydynaMERCK KGaA (Darmstadt, Niemcy)822299Odczynnik deprotekcyjny Fmoc
Dichlormetan (DCM)MERCK KGaA (Darmstadt, Niemcy)Numer katalogowy 106050rozpuszczalnik
Kwas mrówkowy (FA)MERCK KGaA (Darmstadt, Niemcy)100264Składnik buforowy do HPLC
Kwas trifluorooctowy (TFA)MERCK KGaA (Darmstadt, Niemcy)Numer katalogowy: 808260Odczynnik do mieszaniny klejącej
Triizopropylosilan (TIS)MERCK KGaA (Darmstadt, Niemcy)233781 ALDRICHOdczynnik do mieszaniny klejącej
Acetonitryl (dla UPLC/LCMS)Sigma-Aldrich Laborchemikalien GmbHNr kat. 34967-1Lrozpuszczalnik
Acetonitryl (do HPLC)VWR International Ltd, AngliaNumer katalogowy: 83639.32rozpuszczalnik
Eter dietylowyVWR International Ltd, AngliaNumer katalogowy 23811.326Rozpuszczalnik do wytrącania peptydów
Ditiotrytol (DTT)VWR International Ltd, AngliaNumer katalogowy: 0281-25GOdczynnik do mieszaniny klejącej
TentaGel S RAM Fmoc rink żywica amidowaRapp Polymere GmbH (Tybinga, Niemcy)Zobacz materiał S30023Faza stała dla SPPS
Synteza peptydów 5 ml strzykawki z dołączonymi filtramiIntavis AG (Kolonia, Niemcy)34 274Rurka reakcyjna do SPPS i do odpływu z fazy stałej
Filtr z politetrafluoroetylenu (PTFE)Sartorius Stedtim (Aubagne, Francja)11806-50-NFiltracja wytrąconych peptydów
Filtr strzykawkowy z polifluorku winylidenu (PVDF)Carl Roth GmbH + Co. KG KarlsruheZobacz materiał KC78.1Filtracja wstępna do HPLC
Syntezator peptydówIntavis, Kolonia, NiemcyResPep SLZautomatyzowany syntezator peptydów w fazie stałej
Sojusz wodny HPLCWaters, Milford, Massachusetts, Stany ZjednoczoneWody 2998, Wody e2695Półpreparatywna wysokociśnieniowa chromatografia cieczowa z odwróconymi fazami (HPLC)
PolymerX, wielkość koralików 10μm, 250x10 mmPhenomenex Sp. z o.o. Niemcy00G-4328-N0Porowata kolumna HPLC z polistyrenu diwinylobenzenu
Milli-Q Advantage A10 z filtrem Milli-QEMD Millipore Corporation, Billerica, Massachusetts, Stany ZjednoczoneLCPAK0001System oczyszczania wody
Jednostka filtrującaSartorius Stedtim (Aubagne, Francja)Numer katalogowy: 16307Jednostka filtracyjna do wytrącania peptydów
Aquity UPLC z detektorem UVWaters, Milford, Massachusetts, Stany ZjednoczoneM09UPA 664MAnalityczna ultra HPLC z odwróconymi fazami dla LC-MS
ACQUITY UPLC BEH C18, rozmiar koralików 1,7 μm, 50x2,1 mmWaters, Milford, Massachusetts, Stany Zjednoczone186002350Kolumna analityczna C18
Detektor ACQUITY TQWaters, Milford, Massachusetts, Stany ZjednoczoneZobacz materiał QBB908Spektrometria mas z jonizacją elektrorozpylającą (ESI-MS)
CHRIST ALPHA 2-4 LD plus + vacuubrand RZ6Martin Christ Gefriertrocknungsanlagen GmbH, Niemcy16706, 101542Liofilizator z pompą próżniową
Czytnik płytek ParadigmBeckman Coulter
MESAB (metanosulfonian etylo-m-aminobenzoesanu)Sigma-AldrichCiągnik hamulcowy A5040
Szalki PetriegoSarstedtNumer katalogowy: 821.472
Sól fizjologiczna buforowana fosforanamiTechnologie życiowe, GIBCONumer katalogowy: 10010-056
igłaBecton-Dickinson305178
Mikroskop preparacyjnyOlympus, Leica, ZeissRóżni się w zależności od producenta
Pęseta DumontŚwiatowe instrumenty precyzyjne501985
Kleszcze preparacyjne GilliesŚwiatowe instrumenty precyzyjne501265
Kapilary iniekcyjne szklaneŚwiatowe instrumenty precyzyjneZobacz materiał TWF10
Dysza PicoNozzleŚwiatowe instrumenty precyzyjne5430-12
Pneumatyczna pompa PicoPumpŚwiatowe instrumenty precyzyjneSYS-PV820
Oświetlacz pierścieniowy; Przewodnik po lampie pierścieniowejNaukowy ParkILL-RLG
powiedział: powiedział: Rozdział powiedział: powiedział:

Tagi

Procedura mikroiniekcjiiniekcja do przedniego m zgutworzenie blaszek amyloidowychuszkodzenia neuronalneznieczulenie rybek zebrafishprzygotowanie kapilar szklanychustawienia ci nienia