Artykuł metodologiczny

Modelowanie krwotoku śródkomorowego noworodka poprzez dokomorowe wstrzyknięcie hemoglobiny

8 lipca 2025

W tym artykule

Streszczenie

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Źródło: Miller, BA, i wsp. Modelowanie krwotoku śródkomorowego noworodków poprzez dokomorowe wstrzyknięcie hemoglobiny. J. Vis. Exp. (2022).

Ten film przedstawia metodę generowania szczurzego modelu krwotoku dokomorowego u noworodków. W tej procedurze znieczulonemu szczeniakowi szczura wstrzykuje się hemoglobinę do bocznej komory mózgu. Hemoglobina powoduje stres oksydacyjny i uwalnia hem, symulując krwotok dokomorowy. Wynikające z tego uszkodzenie tkanek mózgowych, napędzane przez reaktywne formy tlenu i cytokiny zapalne, prowadzi do powiększenia komór, co jest częstą konsekwencją krwotoku dokomorowego.

Protokół

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Wszystkie procedury z udziałem modeli zwierzęcych zostały zweryfikowane przez lokalną instytucjonalną komisję ds. opieki nad zwierzętami oraz weterynaryjną komisję rewizyjną JoVE.

1. Przygotowanie roztworów hemoglobiny i płynu mózgowo-rdzeniowego

  1. Przygotować sterylny roztwór sztucznego płynu mózgowo-rdzeniowego (aCSF), dodając 500 μl roztworu aCSF do mikroprobówki o pojemności 1,5 ml i przechowywać na lodzie.
  2. Przygotować sterylny roztwór hemoglobiny o stężeniu 150 mg/ml, dodając 75 mg hemoglobiny do 500 μl aCSF w mikroprobówce o pojemności 1,5 ml i przechowywać na lodzie.

2. Przygotowanie zwierzęcia do iniekcji

  1. Ustaw poduszkę grzewczą na średnie ustawienie, aby utrzymać temperaturę ciała szczura.
  2. Znieczulenie szczurów po urodzeniu w 4. dobie (P4) należy umieścić w komorze indukcyjnej wypełnionej 3% izofluranem.
    UWAGA: Potwierdź wystarczające znieczulenie, używając reakcji na uszczypnięcie palca/ogona co 15 minut. Monitoruj znieczulenie z wizualną obserwacją koloru tkanek, temperatury ciała i częstości oddechów.
  3. Znieczulonemu szczurowi należy podać środek przeciwbólowy za pomocą podskórnego wstrzyknięcia karprofenu w dawce 5 mg/kg.
  4. Umieścić znieczulonego szczura leżącego w aparacie stereotaktycznym z nosem umieszczonym w adapterze anestezjologicznym ze stałym przepływem 1,5% izofluranu.
  5. Dokręć niepękające pręty uszne na zewnętrznym przewodzie słuchowym, aby zabezpieczyć głowę.
    UWAGA: Zastosuj maść weterynaryjną, aby utrzymać nawilżenie oczu, jeśli oczy są otwarte w wieku wstrzyknięcia.
  6. Wyczyść głowę, na przemian sterylnymi aplikatorami z bawełnianą końcówką nasączonymi betadyną i 70% etanolem.
    1. Przyłóż aplikator nasączony betadyną do środka skóry głowy i rozprowadź betadynę okrężnymi ruchami, przesuwając się na zewnątrz.
    2. Powtórzyć krok 2.6.1.1 z aplikatorem nasączonym etanolem.
    3. Powtórz krok 2.6.1.1 i krok 2.6.1.2 3x.
  7. Zastosuj sterylną serwetę chirurgiczną, aby chronić pole operacyjne.
  8. Za pomocą sterylnego skalpela wykonaj nacięcie o długości 0,3 cm pionowo w dół środka głowy, aby odsłonić bregmę czaszki.
    UWAGA: W przypadku wstrzykiwania z lambdy, należy odsłonić lambdę czaszki zamiast bregmy.
  9. Użyj sterylnego aplikatora z bawełnianą końcówką, aby wysuszyć obszar.

3. Konfiguracja wtryskiwacza stereotaktycznego

  1. Pobrać roztwór hemoglobiny przygotowany w kroku 1.2 do sterylnej strzykawki o pojemności 0,3 ml z igłą 30G i umieścić strzykawkę w stereotaktycznym systemie wstrzykiwań.
    UWAGA: Jeśli generujesz warunki kontrolne, pobierz roztwór płynu mózgowo-rdzeniowego przygotowany w kroku 1.1 do sterylnej strzykawki o pojemności 0,3 ml i postępuj zgodnie z protokołem.
  2. Włącz interfejs wtryskiwacza stereotaktycznego i kliknij przycisk Configuration , aby wprowadzić ustawienia objętości i szybkości wtrysku.
    1. Kliknij na Volume i ustaw wolumin na 20,000 nL (20 μL).
    2. Kliknij Szybkość infuzji i ustaw szybkość na 8,000 nL/min (8 μL/min).
  3. Wyjdź z Konfiguracja , klikając przycisk Resetuj pozycję .
  4. Przepłucz końcówkę igły, klikając przycisk Infuse , aż na końcu igły pojawi się mała kulka roztworu hemoglobiny.
  5. Delikatnie odsączyć roztwór hemoglobiny z końcówki igły za pomocą sterylnego aplikatora z bawełnianą końcówką.

4. Wstrzyknięcie dla zwierząt

  1. Ustaw bregma jako zero w stereotaktycznym systemie wstrzykiwaczy, dostosowując przyśrodkowe i przednio-tylne położenie strzykawki przed opuszczeniem końcówki przepłukanej igły strzykawki, aby delikatnie dotknąć czaszki w bregmie.
    UWAGA: Jeśli wtryskujesz z lambdy, ustaw lambda jako zero.
  2. Zidentyfikuj współrzędne wyboru.
    1. W przypadku wstrzykiwania z bregmy, u P4 szczurów opisanych tutaj, użyj 1,5 mm bocznie, 0,4 mm z przodu i 2,0 mm głębokości od bregmy.
    2. W przypadku wstrzykiwania z lambdy użyj następujących współrzędnych dla szczurów P4: 1,1 mm boczny, 4,6 mm przedni i 3,3 mm głębokości od lambdy.
  3. Podnieś igłę strzykawki 1 cm nad czaszkę, aby oczyścić skórę głowy. Gdy strzykawka zostanie podniesiona, przystąp do ustawiania współrzędnych przyśrodkowo-bocznych i przednio-tylnych.
  4. Opuścić igłę strzykawki, aby delikatnie dotknąć czaszki. Sprawdź, czy igła dotyka czaszki.
  5. Ustaw współrzędną grzbietowo-brzuszną w okresie 30 sekund.
    UWAGA: Podczas ustawiania współrzędnej grzbietowo-brzusznej, igła przebije czaszkę. Należy dołożyć starań, aby strzykawka przeszła przez czaszkę bez deformacji czaszki. Deformacji czaszki unika się, powoli wycofując igłę wzdłuż współrzędnej grzbietowo-brzusznej, jeśli wystąpi deformacja, a następnie umieszczając igłę z powrotem wzdłuż tej samej trajektorii. Dzięki temu igła przechodzi przez otwór w czaszce z mniejszą siłą i bez deformacji.
  6. W interfejsie wtryskiwacza stereotaktycznego kliknij przycisk Uruchom , aby rozpocząć wstrzykiwanie.
  7. Po zakończeniu wstrzykiwania należy pozostawić igłę strzykawki na miejscu na 2 minuty, aby zminimalizować cofanie się roztworu.
  8. Powoli wyjmować strzykawkę wzdłuż współrzędnej grzbietowo-brzusznej przez 2 minuty, aż końcówka igły znajdzie się 2 cm nad skórą głowy.
  9. Obróć ramię wtryskiwacza stereotaktycznego z dala od pola operacyjnego.

5. Opieka pooperacyjna

  1. Zamknij skórę głowy szwem monofilamentowym 6-0. Wykonaj jeden prosty przerywany szew w środku nacięcia o długości 0,3 cm.
  2. Wyjmij szczeniaka ze znieczulenia i umieść go w bezpiecznym miejscu na poduszce grzewczej.
  3. Wróć gryzonia do klatki domowej, aby doszedł do siebie po znieczuleniu pod opieką jego matki.
    UWAGA: Szybki powrót pod opiekę matki zmniejsza wczesną śmiertelność pooperacyjną.
  4. Monitoruj zwierzęta pod kątem znieczulenia przez utratę odruchu prostującego co godzinę po operacji przez 3 godziny.
  5. Monitoruj zwierzęta codziennie przez 7 dni pod kątem normalnej aktywności, spożycia pokarmu i przyrostu masy ciała. Monitoruj miejsce nacięcia pod kątem gojenia się ran, zamykania i ponownego pojawienia się futra w miejscu operacji.
    UWAGA: W rzadkich przypadkach, gdy podczas monitorowania obserwuje się zmiany neurologiczne, takie jak drgawki, depresja centralna lub zmniejszony apetyt, należy poddać zwierzę eutanazji za pomocą perfuzji wewnątrznaczyniowej lub zwichnięcia szyjki macicy w znieczuleniu.
  6. Aby zapobiec infekcji po zamknięciu szwu i gojeniu się rany, należy zastosować miejscowy potrójny antybiotyk w miejscu nacięcia.

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Oświadczenia

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
Nie stwierdzono konfliktu interesów.

Materiały

Lista materiałów użytych w tym artykule
NazwaFirmaNumer katalogowyKomentarze
0,3 ml strzykawki insulinowejBD Microfine + Strzykawka do insuliny230-45330,3-0,5 ml syntezatorów będzie działać
1,5 ml mikroprobówkiStany Zjednoczone Naukowe1615-5500Nr działki K194642H -3 511
6-0 szew monofilamentowyETHICON667G
Bilans analitycznyCCURIS InstrumentsW3200-320
Sztuczny płyn mózgowo-rdzeniowy (aCSF)Tocris Bioscience3525Nr serii: 72A
BetadinePurdue Products L.P.301005-00NDC 67618-150-09
Karprofen (do wstrzykiwań)Zoetis Inc.PI 4019448Rimadyl
EtanolLaboratoria Dekon2701
Poduszka grzewczaPromień słońcaE12107-819UL 612A, Z-1228-001
HemoglobinaMP Biomedycyna100714DZIAŁKA NR SR02321
IzofluranIntensywna terapia PiramalNDC 66794-017-25
Waporyzator izofluranuVETEQUIP911103
Światło do instalacji stereotaktycznejDolan-Jenner industriesŚwiatłowód MI-150
Pompa strzykawkowa do mikroiniekcjiŚwiatowe instrumenty precyzyjneMICRO21184034 szeregowy T08K
TlenAirgas HealthcareUN1072NUMER DZIAŁKI S1432080XA02
Szczury Sprague DawleyLaboratoria Charles RiverKod szczepu: 001
Instrument stereotaktycznyInstrumenty KOPFModel 900LS Leniwa Zuzanna
Sterylny aplikator z bawełnianą końcówkąFischerbrand23-400-118
Ostrze chirurgicznecovetrus#10
Miejscowy potrójny antybiotykMaść z potrójnym antybiotykiemNDC 51672-2120-1

Przedruki i uprawnienia

Poproś o pozwolenie na ponowne wykorzystanie tekstu lub ilustracji tego artykułu JoVE

Poproś o pozwolenie

Tagi

Wtryskiwanie hemoglobinywtryskiwanie stereotaktycznemodel szczurz tpowi kszenie kom rreaktywne formy tlenucytokiny prozapalneuszkodzenie tkanki m zgowejrama stereotaktycznawtryskiwanie mikrostrzykawk

Powiązane artykuły