Subskrypcja JoVE jest wymagana do oglądania tego materiału. Zaloguj się lub rozpocznij bezpłatny okres próbny.

Artykuł metodologiczny

Leczenie śródmózgowo-komorowe resyferatoksyną w celu odczulenia TRPV1 w mózgu myszy

766 wyświetleń

⸱

7 sierpnia 2025

W tym artykule

Streszczenie

Źródło: Fukushima, A., et al. Leczenie śródmózgowo-komorowe resynitrotoksyną i testy bólu u myszy. J. Vis. Exp. (2020)

Ten film pokazuje procedurę wstrzykiwania do komory mózgowej resiniferatoksyny u myszy w celu odczulania receptorów TRPV1 w mózgu.

Protokół

Wszystkie procedury z udziałem modeli zwierzęcych zostały zweryfikowane przez lokalną instytucjonalną komisję ds. opieki nad zwierzętami oraz weterynaryjną komisję rewizyjną JoVE.

1. Wstrzyknięcie domózgowo-komorowe RTX

  1. Anesthetitiz myszy solą sodową pentobarbitalu (60 mg / kg, dootrzewnowo) i sprawdź, czy nie ma utraty odruchu prostowania.
  2. W przypadku leczenia domózgowo-komorowego (dożylnie) należy wstrzyknąć 5 μl żywicoferatoksyny (RTX) (20 μg/ml) do prawej komory bocznej. W przypadku grupy kontrolnej należy wstrzyknąć nośnik (10% etanolu, 10% monooleinianu polioksyetylenu (20) sorbitanu i 80% sztucznego płynu mózgowo-rdzeniowego (ACSF)) w ten sam sposób.
    1. Przełóż jednorazową igłę 27 G przez metalową rurkę (średnica wewnętrzna 0,8 mm), aby odsłonić końcówkę igły o średnicy 3,0-3,5 mm (rysunek 1A).
    2. Zdezynfekuj głowę myszy 70% alkoholem i mocno przytrzymaj kości łuskowe myszy palcami (ryc. 1B). nuta: Zwróć uwagę na położenie występów łuskowych, ponieważ te występy będą służyć jako punkty orientacyjne do wstrzyknięcia.
    3. Przesuń igłę bocznie na skórę głowy i znajdź szew strzałkowy, gdy końcówka igły jest zaczepiona o szew.
    4. Przesuń końcówkę o około 1 mm w prawo, a następnie przesuń końcówkę w ruch obrotowy i znajdź szew koronalny. (Rysunek 1B).
    5. Wprowadź igłę powoli i pionowo, wstrzyknij roztwór RTX w około 10 sekund i przytrzymaj go przez około 10 sekund.
    6. Powoli wyjmij igłę i umieść mysz z powrotem w klatce domowej. Krwawienie jest zwykle minimalne lub nie ma go wcale. Jeśli wystąpi poważne krwawienie, należy rozważyć użycie innej myszy.

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Wyniki

figure-results-1

Rysunek 1: Fotograficzne i schematyczne widoki iniekcji domózgowo-komorowej (i.c.v.). (A) Igła używana do wstrzykiwań dożylnych. (B) Schemat czaszki myszy i ruch końcówki igły. Kości łuskowe są pokazane na n...

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Materiały

Lista materiałów użytych w tym artykule
NazwaFirmaNumer katalogowyKomentarze
ResiniferatoxinLKT LaboratoriesR1774używany do wstępnych zabiegów s.c./i.c.v. i testu RTX
Sól sodowa pentobarbitaluTokio Przemysł chemicznyP0776stosowany do znieczulenia
Etanol (99,5%)Wako Pure Chemical Industries057-00456służy do rozpuszczania
RTX Polioksyetylen(20) Monooleinian sorbitanuWako Pure Chemical Industries161-21621używany do rozpuszczania
RTX 25 mL Microsy-strzykawkaHamilton1702LTużywana do wstrzykiwań dożylnych
Jednorazowa igłaTERUMONN-2613Sdo wstrzykiwań dożylnych
o rozmiarze 26 używana

Przeglądaj więcej artykułów

Wtryskiwanie dokomoroweleczenie reziniferatoksynącelowanie w komory mózguznieczulona myszwprowadzanie igływstrzyknięcie RTXwrażliwość na bóldepolaryzacja neuronalna