RESEARCH
Peer reviewed scientific video journal
Video encyclopedia of advanced research methods
Visualizing science through experiment videos
EDUCATION
Video textbooks for undergraduate courses
Visual demonstrations of key scientific experiments
BUSINESS
Video textbooks for business education
OTHERS
Interactive video based quizzes for formative assessments
Products
RESEARCH
JoVE Journal
Peer reviewed scientific video journal
JoVE Encyclopedia of Experiments
Video encyclopedia of advanced research methods
EDUCATION
JoVE Core
Video textbooks for undergraduates
JoVE Science Education
Visual demonstrations of key scientific experiments
JoVE Lab Manual
Videos of experiments for undergraduate lab courses
BUSINESS
JoVE Business
Video textbooks for business education
Solutions
Language
pl_PL
Menu
Menu
Menu
Menu
A subscription to JoVE is required to view this content. Sign in or start your free trial.
Research Article
Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.
Erratum Notice
Important: There has been an erratum issued for this article. View Erratum Notice
Retraction Notice
The article Assisted Selection of Biomarkers by Linear Discriminant Analysis Effect Size (LEfSe) in Microbiome Data (10.3791/61715) has been retracted by the journal upon the authors' request due to a conflict regarding the data and methodology. View Retraction Notice
Opisano nowatorską technikę rejestrowania ciśnienia wewnątrz czaszki. Minimalnie inwazyjna metoda wykorzystuje światłowodowy system wykrywania ciśnienia do dokładnego pomiaru ciśnienia śródczaszkowego (ICP) u znieczulonych szczurów bez powodowania poważnych urazów mózgu. Technika ta może być stosowana w szerokim zakresie modeli eksperymentalnych.
Podwyższone ciśnienie śródczaszkowe (ICP) jest poważnym problemem w kilku formach niedokrwiennego uszkodzenia mózgu, w tym po udarze, urazowym uszkodzeniu mózgu i zatrzymaniu akcji serca. To podwyższenie może skutkować dalszym uszkodzeniem neurologicznym w postaci przepukliny przeznamiotowej1,2,3,4, ucisku śródmózgowia, deficytu neurologicznego lub zwiększonego zawału mózgu2,4. Obecne terapie są często niewystarczające do kontrolowania podwyższonego ICP w warunkach klinicznych5,6,7 . W związku z tym istnieje zapotrzebowanie na dokładne metody pomiaru ICP w modelach zwierzęcych, aby pogłębić nasze zrozumienie podstawowych mechanizmów i opracować nowe metody leczenia podwyższonego ICP.
Zarówno w warunkach klinicznych, jak i eksperymentalnych, ICP nie może być oszacowane bez bezpośredniego pomiaru. Obecnie istnieje kilka metod wprowadzania cewnika ICP. Spośród nich cewnik dokomorowy stał się klinicznym "złotym standardem" pomiaru ICP u ludzi8. Metoda ta polega na częściowym usunięciu czaszki i oprzyrządowaniu cewnika przez tkankę mózgową. W związku z tym cewniki dokomorowe mają wskaźnik infekcji na poziomie 6-11%9. Z tego powodu kaniulacje podtwardówkowe i zewnątrzoponowe stały się preferowanymi metodami w zwierzęcych modelach uszkodzenia niedokrwiennego.
Różne techniki pomiarowe ICP zostały dostosowane do modeli zwierzęcych, a spośród nich, cewniki telemetryczne wypełnione płynem10 i cewniki półprzewodnikowe są najczęściej używane11,12,13,14,15. Systemy wypełnione płynem są podatne na powstawanie pęcherzyków powietrza w linii, co skutkuje fałszywymi odczytami ICP. Sondy półprzewodnikowe pozwalają uniknąć tego problemu (ilustracja 1). Dodatkowym problemem jest dopasowanie cewników pod czaszkę lub do komór bez powodowania uszkodzeń mózgu, które mogłyby zmienić wyniki eksperymentu. Dlatego opracowaliśmy metodę, która umieszcza cewnik ICP w miejscu przylegającym do przestrzeni zewnątrzoponowej, ale pozwala uniknąć konieczności wprowadzania go między czaszkę a mózg.
Cewnik ciśnieniowy z włókna optycznego (420LP, SAMBA Sensors, Szwecja) został użyty do pomiaru ICP w miejscu znieczulenia zewnątrzoponowego, ponieważ stwierdzono, że lokalizacja czujnika ciśnienia (na samym końcu cewnika) wytwarza sygnał ICP o wysokiej wierności w tym modelu. Istnieją inni producenci podobnych technologii światłowodowych13 , którzy mogą być wykorzystywani w ramach naszej metodologii. Alternatywne cewniki półprzewodnikowe, które mają czujnik ciśnienia umieszczony z boku końcówki cewnika, nie byłyby odpowiednie dla tego modelu, ponieważ sygnał byłby tłumiony przez obecność monitorującej.
Tutaj prezentujemy stosunkowo prostą i dokładną metodę pomiaru ICP. Metoda ta może być stosowana w szerokim zakresie modeli zwierzęcych związanych z ICP.
1. Penetracja czaszki
2. Modyfikacja i wstawianie
3. Wprowadzenie przetwornika ciśnienia wewnątrzczaszkowego
4. Tworzenie hermetycznego uszczelnienia
5. Demontaż i ponowne włożenie przetwornika ciśnienia wewnątrzczaszkowego
6. Reprezentatywne wyniki
Rysunek 5 przedstawia odczyty ICP w ciągu dziesięciu sekund. Na początku badania średni ICP u szczura Wistar wynosi 6 mmHg. Zdarzenia o krótszej okresowości przedstawione na rycinie 5 odzwierciedlają fale tętna ciśnienia krwi. Zdarzenia o dłuższej okresowości pokazują zdarzenia wentylacji. Należy pamiętać, że czujnik SAMBA odzwierciedla amplitudę wentylacji 3-4 mmHg i amplitudę impulsu 1-2 mmHg.
Aby potwierdzić pozycję czujnika SAMBA w każdym eksperymencie, ślady ICP powinny być testowane pod kątem reakcji na uciski brzucha i zdarzenia oddechowe, takie jak okresy bezdechu. Ucisk brzucha przedstawiono na rycinie 7.
Okresy bezdechu (zilustrowane na rysunku 8) są obserwowane w większości eksperymentów z udziałem spontanicznie oddychających zwierząt. Zdarzenia te są identyfikowane w dokumentacji fizjologicznej na podstawie braku odchyleń oddechowych na śladach oddechowych (przetwornik membrany) i tętniczych. Równoważna zmiana w śladzie ICP potwierdza poprawność pozycjonowania sondy ICP.
Rysunek 9 przedstawia typowy ślad ICP po zdjęciu nauszników (krok 4.6). Założenie prętów usznych w kroku 1.2 powoduje lekkie uciskanie czaszki i w konsekwencji zaburzenie objętości wewnątrzczaszkowej, a tym samym zwiększenie ICP. Jeśli czujnik jest prawidłowo ustawiony, ICP spadnie o co najmniej 4 - 5 mmHg po zdjęciu nauszników.
Analiza histologiczna może być użyta do sprawdzenia, czy obszar korowy nie został uszkodzony bezpośrednio pod czujnikiem ciśnienia i śrubą. Przykład traumatycznego i nieurazowego wkręcenia przedstawiono na rysunku 4.

Rysunek 1. Wypełnione płynem kontra ślady SAMBA ICP. ICP rejestrowano jednocześnie za pomocą cewnika światłowodowego SAMBA (u góry) i cewnika wypełnionego płynem (u dołu). Średnie wartości ICP były podobne w obu śladach, jednak sygnał cewnika wypełnionego płynem był znacznie stłumiony w porównaniu z wyraźnymi falami ciśnienia oddechowego i tętniczego obserwowanymi za pomocą cewnika światłowodowego.

Rysunek 2. Procedura wprowadzania cewnika ciśnienia śródczaszkowego. Głowa szczura została zabezpieczona w stereotaktycznej ramie z nausznikami i znieczulającym stożkiem nosowym [A]. W prawej kości ciemieniowej wywiercono otwór o średnicy około 2 mm [B]. W wałek została wprowadzona śruba 2 x 4 mm z otworem 0,7 mm [C]. Śruba kotwiąca została wprowadzona w lewą kość ciemieniową, a czaszka i miejsce operacyjne pokryte były cementem dentystycznym. Cewnik ICP (strzałka) został następnie wprowadzony do otworu na i wykonany hermetyczny uszczelniony materiał uszczelniający (biała strzałka) [D]. Zszywanie (dla skali) = 12 mm x 5 mm.

Rysunek 3. Monitorowanie orientacji otworu zadziorów. Czaszka została oczyszczona z tkanki łącznej w celu zlokalizowania Lambda (gwiazdka) i Bregma (biała gwiazdka), a otwór wywiercono 2 mm z boku i 2 mm z tyłu od Bregmy. została oczyszczona z gruzu, pozostawiając naczynia opony twardej i pial (strzała) nienaruszone. Zszywanie (dla skali) = 12 mm x 5 mm.

Rysunek 4. Histologia mózgu szczura 24 godziny po oprzyrządowaniu monitorującej ICP. Barwienie hemotoksyliną i eozyną, przekroje koronalne 6 μm. Po lewej: Nieurazowe wkręcenie. Po prawej: Traumatyczne wprowadzenie, obszar bladość przedstawia uszkodzoną tkankę o podobnej morfologii komórkowej do obszaru uszkodzonego po udarze (strzałka). Wkładki przy obiektywie 4x.

Rysunek 5. Typowy ślad ICP. Fale ciśnienia impulsów są obrazowane przez zdarzenia o mniejszej amplitudzie (*). Wentylacja jest odzwierciedlana przez zdarzenia o dłuższej okresowości (#).

Rysunek 6. Schemat wstawiania sondy ICP. Schemat ilustruje umieszczenie nośnej (po prawej) i sondy ICP pokrytej materiałem uszczelniającym w (po lewej).

Rysunek 7. Kompresja brzucha. Brzuch został tymczasowo ściśnięty (~1 sekunda) w celu potwierdzenia żywotności sygnału ICP. Kompresja powoduje zmniejszenie powrotu żył mózgowych, zwiększenie objętości wewnątrzczaszkowej, a tym samym zwiększenie ICP. Ciśnienie tętnicze (Pa) spadło dopiero po początkowym wzroście ICP.

Rysunek 8. Okres bezdechu. Tymczasowe zaprzestanie oddychania znajduje odzwierciedlenie w śladzie przetwornika membranowego, śladzie ciśnienia tętniczego (Pa) i śladzie ICP.

Rysunek 9. Zdejmowanie paska na uszy. ICP powinno spaść wraz z usunięciem stereotaktycznych ramek nauszników.
Nie mamy nic do ujawnienia.
Opisano nowatorską technikę rejestrowania ciśnienia wewnątrz czaszki. Minimalnie inwazyjna metoda wykorzystuje światłowodowy system wykrywania ciśnienia do dokładnego pomiaru ciśnienia śródczaszkowego (ICP) u znieczulonych szczurów bez powodowania poważnych urazów mózgu. Technika ta może być stosowana w szerokim zakresie modeli eksperymentalnych.
Ten projekt został sfinansowany przez National Stroke Foundation, Hunter Medical Research Institute (HMRI) oraz National Health and Medical Research Council (NH&MRC) w Australii. Specjalne podziękowania dla pracowników Warsztatów Wydziału Zdrowia Uniwersytetu w Newcastle za ich wiedzę techniczną.
| Monomer cementu dentystycznego | Henry Schein | VX- SC500MLL | |
| Polimer cementu dentystycznego | Henry Schein | VX- SC1000GCL4 | |
| Wiertło dentystyczne - rozmiar 12 | Gunz Dental | EL104S001012/10 | |
| Frez dentystyczne - rozmiar 6 | Gunz Dental | EL104S001006/10 | |
| Sklep | z metalowymi narzędziami śrubowymi2 x 4 mm, sześciokątny. (modyfikowany laboratoryjnie przez otwór 0,7 mm wywiercony w szybie) | ||
| Jednostka sterująca SAMBA | Aparatura Harvarda | 50433102 | |
| Czujnik SAMBA | Aparatura Harvard | 50461122 | 420 LP, 15 cm gołe włókno, powłoka nieprzezierna promieniowo |
| Materiał uszczelniający Silagum AV Mono | Gunz Dental | RG 9152 | Winylopolisiloksany, polisiloksany wodorowe, wypełniacz, pigmenty, dodatki, katalizator plantinum |
| Terg-A-Zyme | Alconox, Inc. | 1304 | Enzymatyczny detergent w proszku |