Method Article

Narzędzie analityczne, które określa ilościowo zmiany morfologii komórek na podstawie trójwymiarowych obrazów fluorescencyjnych

DOI:

10.3791/4233

August 31st, 2012

In This Article

Summary

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Opracowaliśmy platformę oprogramowania, która wykorzystuje Imaris Neuroscience, ImarisXT i MATLAB do pomiaru zmian w morfologii niezdefiniowanego kształtu, pobranego z trójwymiarowej konfokalnej fluorescencji pojedynczych komórek. To nowatorskie podejście może być wykorzystane do ilościowego określenia zmian w kształcie komórki po aktywacji receptora, a zatem stanowi potencjalne dodatkowe narzędzie do odkrywania leków.

Abstract

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Najbardziej powszechnymi narzędziami do analizy oprogramowania dostępnymi do pomiaru obrazów fluorescencyjnych są dane dwuwymiarowe (2D), które opierają się na ręcznych ustawieniach włączania i wykluczania punktów danych, oraz wspomagane komputerowo rozpoznawanie wzorców, które wspierają interpretację i wyniki analizy. Coraz ważniejsza staje się możliwość pomiaru obrazów fluorescencyjnych zbudowanych z trójwymiarowych (3D) zestawów danych, aby móc uchwycić złożoność dynamiki komórkowej i zrozumieć podstawy plastyczności komórkowej w systemach biologicznych. Zaawansowane instrumenty mikroskopowe umożliwiły wizualizację obrazów fluorescencyjnych 3D poprzez akwizycję wielospektralnych obrazów fluorescencyjnych i potężnego oprogramowania analitycznego, które rekonstruuje obrazy ze stosów konfokalnych, które następnie zapewniają reprezentację 3D zebranych obrazów 2D. Zaawansowane metody stereologii oparte na projektowaniu rozwinęły się w porównaniu z przybliżeniem i założeniami oryginalnej stereologii opartej na modelu1 nawet w złożonych skrawkach tkanek2. Pomimo tych postępów naukowych w mikroskopii, nadal istnieje zapotrzebowanie na zautomatyzowaną metodę analityczną, która w pełni wykorzystuje wewnętrzne dane 3D, aby umożliwić analizę i kwantyfikację złożonych zmian w morfologii komórek, lokalizacji białek i transporcie receptorów.

Obecne techniki dostępne do ilościowego oznaczania obrazów fluorescencyjnych obejmują Meta-Morph (Molecular Devices, Sunnyvale, CA) i Image J (NIH), które zapewniają ręczną analizę. Oprogramowanie Imaris (Andor Technology, Belfast, Irlandia Północna) udostępnia funkcję MeasurementPro, która umożliwia ręczne tworzenie punktów pomiarowych, które można umieścić na obrazie objętościowym lub narysować na serii plasterków 2D w celu utworzenia obiektu 3D. Ta metoda jest przydatna w przypadku pomiarów punktowych jednym kliknięciem w celu zmierzenia odległości linii między dwoma obiektami lub utworzenia wielokąta otaczającego obszar zainteresowania, ale jest trudna do zastosowania w przypadku złożonych struktur sieci komórkowych. Filament Tracer (Andor) umożliwia automatyczne wykrywanie neuronów 3D przypominających włókna, jednak moduł ten został opracowany do pomiaru zdefiniowanych struktur, takich jak neurony, które składają się z dendrytów, aksonów i kolców (struktura przypominająca drzewo). Moduł ten został genialnie wykorzystany do wykonywania pomiarów morfologicznych komórek nieneuronalnych3, jednak dane wyjściowe dostarczają informacji o rozszerzonej sieci komórkowej za pomocą oprogramowania, które zależy od zdefiniowanego kształtu komórki, a nie jest amorficznym modelem komórkowym. Aby przezwyciężyć problem analizy komórek o kształcie amorficznym i dostosowania oprogramowania do zastosowań biologicznych, firma Imaris opracowała Imaris Cell. Był to projekt naukowy realizowany we współpracy z Eidgenössische Technische Hochschule, który został opracowany w celu obliczenia relacji między komórkami a organellami. Chociaż oprogramowanie umożliwia wykrywanie ograniczeń biologicznych, wymuszając jedno jądro na komórkę i wykorzystując błony komórkowe do segmentacji komórek, nie można go wykorzystać do analizy danych fluorescencyjnych, które nie są ciągłe, ponieważ w idealnym przypadku buduje powierzchnię komórki bez pustych przestrzeni. Zgodnie z naszą wiedzą, obecnie nie opracowano modyfikowalnego przez użytkownika zautomatyzowanego podejścia, które dostarczałoby informacji morfometrycznych z obrazów fluorescencyjnych 3D, które uzyskuje komórkową informację przestrzenną o nieokreślonym kształcie (ryc. 1).

Opracowaliśmy platformę analityczną, korzystając z modułu oprogramowania Imaris core i Imaris XT połączonego z MATLAB (Mat Works, Inc.). Narzędzia te umożliwiają pomiar 3D komórek bez predefiniowanego kształtu i z niespójnymi składnikami sieci fluorescencyjnej. Co więcej, metoda ta pozwoli naukowcom, którzy mają rozszerzoną wiedzę specjalistyczną w zakresie systemów biologicznych, ale nie są zaznajomieni z aplikacjami komputerowymi, na ilościowe określenie zmian morfologicznych w dynamice komórki.

Protocol

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

1. Trójwymiarowa analiza morfometryczna zmian fenotypowych w pojedynczych komórkach

  1. Ludzkie embrionalne komórki nerki (HEK293) transfekowano receptorem czynnika uwalniającego kortykotropinę znakowaną hemaglutyniną (HA) 2 (CRF-R2), receptorem sprzężonym z białkiem G (GPCR), jak opisano wcześniej4, 5.
  2. Komórki pozostawiono bez leczenia (brak leczenia, NT), stymulowano endogennym ligandem CRF-R2, czynnikiem uwalniającym kortykotropinę, CRF (1 μM, 30 min) lub wstępnie traktowano selektywnym antagonistą CRF-R2, anty-sauvagine 30 (AS-30, 1 μM, 30 min) przed leczeniem agonistycznym .
  3. Komórki zostały następnie utrwalone, przepuszczaln....

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Discussion

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Wykazaliśmy, że leczenie CRF wywołało istotną zmianę w morfologii i lokalizacji CRF-R2. Zmiana CRF-R2 została zahamowana przez selektywne leczenie antagonistami. Wykazaliśmy, że modyfikacje receptorów nie zostały wykryte i nie mogą być mierzone przy użyciu standardowych technik wielospektralnych 2D. Możliwość badania złożonych obrazów 3D ma kluczowe znaczenie dla uwzględnienia złożoności parametrów biologicznych w analizie morfometrycznej. Udało nam się wykonać pomiary 3D komórek bez predefiniowanego kształtu z niespójny.......

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Disclosures

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Nie stwierdzono konfliktu interesów.

Acknowledgements

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Dziękujemy Centrum Rozwoju Obrazowania Biologicznego (BIDC) Uniwersytetu Kalifornijskiego w San Francisco za korzystanie z Imaris, Imaris XT i Matlab. Dziękujemy V. Kharazii za pomoc techniczną oraz A.T. Henry'emu, L.K. Florenowi, L. Daitchowi za ich wkład w redakcję rękopisu. Praca ta była wspierana przez fundusze ze Stanu California Medical Research on Alcohol & Substance Abuse za pośrednictwem UCSF dla SEB, National Institutes of Health: 1R21DA029966-01 oraz nagrodę NIH Fast Track na przegląd kolekcji MLSMR dla SEB, UCSF School of Pharmacy (dziekanat i farmacja kliniczna) oraz School of Medicine (Farmakologia kliniczna i terapia eksperymentalna) dla CLHK.

....

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Materials

List of materials used in this article
NameCompanyCatalog NumberComments
Ludzka nerka embrionalna (HEK293) Kolekcja kultur typu amerykańskiegoCRL-1573
Zmodyfikowane podłoże orła Dulbecco (DMEM)Invitrogen11965118
płodowa surowica bydlęca (FBS)InvitrogenSH30070.03
AlexaFluor-488 (IgG2b) InvitrogenA-11001
monoklonalny anty-HA.11 (IgG1)Covance16B12
DAPIVector LaboratoriesH-1200
CRFSigmaC2917
Antisauvagine-30 (AS-30)SigmaA4727

References

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
  1. West, M. J. Design-based stereological methods for counting neurons. Prog, Brain Res. 135, 43-51 (2002).
  2. Burke, M., Zangenehpour, S., Mouton, P. R., Ptito, M. Knowing what counts: unbiased stereology in the non-human primate brain. J. Vis. Exp. (27), e1262(2009).

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Reprints and Permissions

Request permission to reuse the text or figures of this JoVE article

Request Permission

Tags

3D Fluorescence ImagingCellular Morphology AnalysisConfocal MicroscopyImaris SoftwareMATLAB IntegrationGPCR Receptor TrackingAutomated Morphometric QuantificationReceptor Trafficking AnalysisDrug Discovery AssayFluorescence Image Segmentation

Related Articles