$$\rightleftharpoonup{xx}$$
$$\longleftharp{xx}$$,
$$\longrightharp{xx}$$,
Najbardziej powszechnymi narzędziami do analizy oprogramowania dostępnymi do pomiaru obrazów fluorescencyjnych są dane dwuwymiarowe (2D), które opierają się na ręcznych ustawieniach włączania i wykluczania punktów danych, oraz wspomagane komputerowo rozpoznawanie wzorców, które wspierają interpretację i wyniki analizy. Coraz ważniejsza staje się możliwość pomiaru obrazów fluorescencyjnych zbudowanych z trójwymiarowych (3D) zestawów danych, aby móc uchwycić złożoność dynamiki komórkowej i zrozumieć podstawy plastyczności komórkowej w systemach biologicznych. Zaawansowane instrumenty mikroskopowe umożliwiły wizualizację obrazów fluorescencyjnych 3D poprzez akwizycję wielospektralnych obrazów fluorescencyjnych i potężnego oprogramowania analitycznego, które rekonstruuje obrazy ze stosów konfokalnych, które następnie zapewniają reprezentację 3D zebranych obrazów 2D. Zaawansowane metody stereologii oparte na projektowaniu rozwinęły się w porównaniu z przybliżeniem i założeniami oryginalnej stereologii opartej na modelu1 nawet w złożonych skrawkach tkanek2. Pomimo tych postępów naukowych w mikroskopii, nadal istnieje zapotrzebowanie na zautomatyzowaną metodę analityczną, która w pełni wykorzystuje wewnętrzne dane 3D, aby umożliwić analizę i kwantyfikację złożonych zmian w morfologii komórek, lokalizacji białek i transporcie receptorów.
Obecne techniki dostępne do ilościowego oznaczania obrazów fluorescencyjnych obejmują Meta-Morph (Molecular Devices, Sunnyvale, CA) i Image J (NIH), które zapewniają ręczną analizę. Oprogramowanie Imaris (Andor Technology, Belfast, Irlandia Północna) udostępnia funkcję MeasurementPro, która umożliwia ręczne tworzenie punktów pomiarowych, które można umieścić na obrazie objętościowym lub narysować na serii plasterków 2D w celu utworzenia obiektu 3D. Ta metoda jest przydatna w przypadku pomiarów punktowych jednym kliknięciem w celu zmierzenia odległości linii między dwoma obiektami lub utworzenia wielokąta otaczającego obszar zainteresowania, ale jest trudna do zastosowania w przypadku złożonych struktur sieci komórkowych. Filament Tracer (Andor) umożliwia automatyczne wykrywanie neuronów 3D przypominających włókna, jednak moduł ten został opracowany do pomiaru zdefiniowanych struktur, takich jak neurony, które składają się z dendrytów, aksonów i kolców (struktura przypominająca drzewo). Moduł ten został genialnie wykorzystany do wykonywania pomiarów morfologicznych komórek nieneuronalnych3, jednak dane wyjściowe dostarczają informacji o rozszerzonej sieci komórkowej za pomocą oprogramowania, które zależy od zdefiniowanego kształtu komórki, a nie jest amorficznym modelem komórkowym. Aby przezwyciężyć problem analizy komórek o kształcie amorficznym i dostosowania oprogramowania do zastosowań biologicznych, firma Imaris opracowała Imaris Cell. Był to projekt naukowy realizowany we współpracy z Eidgenössische Technische Hochschule, który został opracowany w celu obliczenia relacji między komórkami a organellami. Chociaż oprogramowanie umożliwia wykrywanie ograniczeń biologicznych, wymuszając jedno jądro na komórkę i wykorzystując błony komórkowe do segmentacji komórek, nie można go wykorzystać do analizy danych fluorescencyjnych, które nie są ciągłe, ponieważ w idealnym przypadku buduje powierzchnię komórki bez pustych przestrzeni. Zgodnie z naszą wiedzą, obecnie nie opracowano modyfikowalnego przez użytkownika zautomatyzowanego podejścia, które dostarczałoby informacji morfometrycznych z obrazów fluorescencyjnych 3D, które uzyskuje komórkową informację przestrzenną o nieokreślonym kształcie (ryc. 1).
Opracowaliśmy platformę analityczną, korzystając z modułu oprogramowania Imaris core i Imaris XT połączonego z MATLAB (Mat Works, Inc.). Narzędzia te umożliwiają pomiar 3D komórek bez predefiniowanego kształtu i z niespójnymi składnikami sieci fluorescencyjnej. Co więcej, metoda ta pozwoli naukowcom, którzy mają rozszerzoną wiedzę specjalistyczną w zakresie systemów biologicznych, ale nie są zaznajomieni z aplikacjami komputerowymi, na ilościowe określenie zmian morfologicznych w dynamice komórki.