Subskrypcja JoVE jest wymagana do oglądania tego materiału. Zaloguj się lub rozpocznij bezpłatny okres próbny.

Artykuł metodologiczny

Oddzielenie embrionalnej ektodermy twarzy myszy i mezenchymy

11.1K wyświetleń

⸱

DOI:

10.3791/50248

⸱

12 kwietnia 2013

 , 

W tym artykule

Podsumowanie

Opisano protokół separacji ektodermy twarzy i mezenchymy zarodka. Używamy Dispase II do leczenia najpierw całych zarodków, następnie wycinamy całe wypukłości twarzy, a następnie oddzielamy ektodermę twarzy i mezenchymę.

Streszczenie

Szczeliny ustno-twarzowe są najczęstszymi wadami twarzoczaszki, które dotykają 1,5 na 1000 noworodków na całym świecie1,2. Rozszczep jamy ustnej twarzy jest spowodowany nieprawidłowym rozwojem twarzy3. U ludzi i myszy początkowy wzrost i wzór twarzy opiera się na kilku małych zawiązkach tkanki, wypukłości twarzy4,5. Twarz wywodzi się z sześciu głównych protuberancji: parzystych wyrostków czołowych nosowych (FNP), protuberancji szczękowych (MxP) i protuberancji żuchwy (MdP). Te protuberancje składają się z obrzęków mezenchymy, które są otoczone leżącym nad nimi nabłonkiem. Badania na wielu gatunkach wykazały, że przesłuch sygnalizacyjny między ektodermą twarzy a mezenchymą ma kluczowe znaczenie dla kształtowania twarzy6. Brakuje jednak mechanistycznych szczegółów dotyczących genów zaangażowanych w te przekaźniki sygnalizacyjne. Jednym ze sposobów na uzyskanie kompleksowego zrozumienia ekspresji genów, wiązania czynników transkrypcyjnych i znaczników chromatyny związanych z rozwijającą się ektodermą twarzy i mezenchymą jest wyizolowanie i scharakteryzowanie oddzielonych przedziałów tkankowych.

Tutaj prezentujemy metodę oddzielania ektodermy twarzy od mezenchymy w dniu embrionalnym (E) 10.5, krytycznym etapie rozwoju w tworzeniu się twarzy myszy, który poprzedza fuzję protuberancji. Nasza metoda jest zaadaptowana z podejścia, które wcześniej stosowaliśmy do preparowania wypukłości twarzy7. W tym wcześniejszym badaniu wykorzystaliśmy myszy wsobne C57BL/6, ponieważ szczep ten stał się standardem w genetyce, genomice i morfologii twarzy8. W tym przypadku jednak, ze względu na bardziej ograniczoną ilość dostępnych tkanek, wykorzystaliśmy niekrewny szczep CD-1, który jest tańszy w zakupie, bardziej wytrzymały w hodowli i ma tendencję do produkcji większej liczby zarodków (12-18) na miot niż jakikolwiek wsobny szczep myszy8. Po wyizolowaniu zarodka do leczenia całego zarodka zastosowano neutralną proteazę Dispase II. Następnie wypreparowano wypukłości twarzy i oddzielono ektodermę twarzy od mezenchymy. Ta metoda utrzymuje zarówno ektodermę twarzy, jak i mezenchymę w stanie nienaruszonym. Próbki uzyskane przy użyciu tej metodologii mogą być wykorzystane do technik takich jak wykrywanie białek, test immunoprecypitacji chromatyny (ChIP), badania mikromacierzy i sekwencjonowanie RNA.

Protokół

1. Przygotuj Dispase II

  1. Przygotuj świeżą sól fizjologiczną buforowaną przez Hepes (HBS) (50 mM Hepes/KOH pH 7,4, 150 mM NaCl). Dodać 2 ml 0,5 M Hepes/KOH pH 7,4 i 1,2 ml 2,5 M NaCl do 16,8 ml UltrapureH2O.
  2. Zrobić 10 mg/ml Dypaza II. Odważyć 0,2 g Dispase II (Roche, Cat# 4942078001) i rozpuścić w 20 ml HBS. Przygotować 1,0 ml porcji w oddzielnych probówkach Eppendorfa i przechowywać w temperaturze -20 °C do długotrwałego przechowywania.
  3. Rozcieńczyć 10 mg/ml Dispase II w stosunku 1:10 w PBS przed użyciem. Rozcieńczoną Pipezę II umieścić na lodzie.

2. Sekcja zarodków CD-1 E10.5 od ciężarnej kobie....

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Wyniki

Po traktowaniu Dispase II ektoderm zarodka wykazuje tendencję do rozluźniania. Wyrostki twarzy powinny pozostać nienaruszone po sekcji (Rysunek 2A). Izolowana ektoderm twarzy jest przejrzysta i wolna od tkanki mezenchymy (Rysunek 2B). Aby określić skuteczność protokołu i wykryć zanieczyszczenia krzyżowe, przeprowadzono analizę ekspresji Zic39 (wyrażanego w przedmózgowiu), specyficznego dla ektodermy cdh15 oraz specyficznego dla mezenchymy sox1010 przy uży.......

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Dyskusja

Protokół ten zapewnia prostą metodę oddzielania embrionalnej ektodermy twarzy myszy i mezenchymy w oparciu o początkowy etap leczenia Dispase II. W poprzednich badaniach przeprowadziliśmy sekcję wypukłości twarzy przed zabiegiem Dispase II, ale konsekwentnie stwierdzaliśmy, że mezenchyma staje się "lepka" i trudniejsza do manipulowania. Nasz nowy protokół pozwala uniknąć tego problemu. Skojarzone leczenie Dispase II z delikatną siłą fizyczną poprzez pipetowanie w górę i w dół ułatwia oddzielenie ektodermy i mezenchymy. C.......

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Oświadczenia

Autorzy nie mają sprzecznych interesów ani innych konfliktów związanych z treścią tego artykułu.

Podziękowania

Autorzy chcieliby podziękować Irene Choi za zilustrowanie głów embrionów na Ryc. 1 oraz innym członkom laboratorium za pomoc i dyskusję. Ta praca jest wspierana przez grant NIH DE012728 (T.W.)

....

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Materiały

Lista materiałów użytych w tym artykule
NazwaFirmaNumer katalogowyKomentarze
Dyspaza II (proteaza obojętna, stopień II)Roche4942078001Przygotować 10 mg/ml roztworu podstawowego Dyspazy II w HBS. Podwielokrotność i przechowywać w temperaturze -20 & C .
RNAlaterAmbionAM7021

Bibliografia

  1. Wilkie, A. O., Morriss-Kay, G. M. Genetics of craniofacial development and malformation. Nat. Rev. Genet. 2, 458-468 (2001).
  2. Gritli-Linde, A. Chapter 2 - The Etiopathogenesis of cleft lip and cleft palate: usefulness and caveats o....

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Przedruki i uprawnienia

Przeglądaj więcej artykułów

Mezynchym twarzysekcja zarodka myszytraktowanie dyspazą IIizolacja wypustek twarzyseparacja tkankiekstrakcja RNAanaliza ChIPdetekcja białekszczep myszy CD1