Artykuł metodologiczny

Rekonstytucja nukleosomów z histonami siostrzanymi znakowanymi różnicowo izotopami

10.6K wyświetleń

DOI:

10.3791/55349

26 marca 2017

W tym artykule

Podsumowanie

Ten protokół opisuje rekonstytucję nukleosomów zawierających różnie znakowane izotopowo histony siostrzane. Jednocześnie asymetrycznie zmodyfikowane potranslacyjnie nukleosomy mogą być generowane po użyciu wstępnie zmodyfikowanej kopii histonu. Preparaty te mogą być z łatwością wykorzystywane do badania mechanizmów przesłuchów modyfikacji, jednocześnie na obu siostrzanych histonach, przy użyciu spektroskopii NMR o wysokiej rozdzielczości.

Streszczenie

Asymetrycznie zmodyfikowane nukleosomy zawierają dwie kopie histonu (histony siostrzane) ozdobione odrębnymi zestawami modyfikacji potranslacyjnych (PTM). Są to nowo zidentyfikowane gatunki o nieznanych sposobach osiedlania się i implikacjach funkcjonalnych. Obecne metody analityczne są niewystarczające do wykrycia specyficznego dla kopii występowania PTM na siostrzanych histonach nukleosomalnych. Protokół ten przedstawia biochemiczną metodę odtwarzania in vitro nukleosomów zawierających histony siostrzane znakowane izotopowo. Powstały kompleks może być również modyfikowany asymetrycznie, po włączeniu wstępnie zmodyfikowanej puli histonów podczas ponownego fałdowania podkompleksów histonowych. Te asymetryczne preparaty nukleosomów mogą być łatwo reagowane z enzymami modyfikującymi histony w celu zbadania mechanizmów przesłuchów modyfikacji narzuconych przez asymetrycznie wstępnie włączony PTM za pomocą spektroskopii magnetycznego rezonansu jądrowego (NMR). W szczególności reakcje modyfikacji w czasie rzeczywistym mogą być odwzorowywane niezależnie na dwóch siostrzanych histonach, wykonując różne typy eksperymentów korelacji NMR, dostosowanych do odpowiedniego typu izotopu. Metodologia ta zapewnia środki do badania mechanizmów przesłuchów, które przyczyniają się do powstawania i propagacji asymetrycznych wzorców PTM w kompleksach nukleosomalnych.

Wprowadzenie

DNA eukariotyczne jest ciasno upakowane w jądrach komórkowych w chromatynie. Podstawowym budulcem chromatyny jest cząstka rdzenia nukleosomu, która zawiera ~ 147 pz DNA owiniętego wokół kompleksu oktamerycznego składającego się z dwóch kopii każdego z czterech histonów rdzenia (H3, H4, H2A, H2B). Białka histonowe zawierają mnóstwo modyfikacji potranslacyjnych (PTM). Te substytucje kowalencyjne wywołują zmiany w strukturze chromatyny, zarówno bezpośrednio, wpływając na chemię fizyczną układu, jak i pośrednio poprzez rekrutację działań związanych z przebudową chromatyny1,2,3. W....

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Protokół

1. Rekonstytucja nukleosomów za pomocą histonów siostrzanych znakowanych izotopowo (i asymetrycznie modyfikowanych)

UWAGA: Obecny protokół opisuje odtwarzanie nukleosomów za pomocą histonu H3 znakowanego izotopami. W tym celu wykorzystano dwie pule histonu H3; jeden był znakowany 15N i zawierał znacznik 6xHhis na N-końcu, a drugi był znakowany 13C i zawierał peptyd Strep (WSHPQFEK) połączony na N-końcu. Oba znaczniki zostały oddzielone od natywnej sekwencji H3 za pomocą miejsca rozpoznawania proteazy wirusa wytrawiania tytoniu (TEV). Aby przygotować dodatkowe asymetrycznie zmodyfikowane nukleosomy, jedna z dwóch p....

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Wyniki

Właściwie refoldowane formy oktameryczne są izolowane po przepuszczeniu mieszaniny rekonstytuującej przez kolumnę do filtracji żelowej (Rysunek 2). Rekonstytuowana pula oktamerów zawierająca trzy różne typy oktamerów jest poddawana schematowi tandemowego oczyszczania powinowactwa. Próbki są pobierane na każdym etapie i analizowane metodą SDS-PAGE, a następnie WB. Weryfikację prawidłowego wykonania protokołu prowadzącego do izolacji form asymetrycznych przeprowadza się pop.......

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Dyskusja

Do rekonstytucji nukleosomów obecny protokół wykorzystuje matrycę DNA o długości 165 pz zawierającą sekwencję pozycjonowania nukleosomów 601-Widom20, ale oczekuje się podobnej wydajności przy użyciu różnych długości matryc DNA. Protokół został zaprojektowany i zastosowany przy użyciu asymetrycznych typów histonu H3. Na tej samej zasadzie metoda może być stosowana również do innych histonów rdzeniowych, a dodatkowo może być stosowana do rekonstytucji kompleksów zawierających dwa odrębne histony rdz.......

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Oświadczenia

Autor nie ma nic do zdradzienia.

Podziękowania

Autor dziękuje Dr. Philippowi Selenko (FMP-Berlin) za udostępnienie przestrzeni i infrastruktury do przeprowadzania eksperymentów oraz Deutsche Forschungsgemeinschaft (DFG) za sfinansowanie pracy poprzez grant badawczy (LI 2402/2-1).

....

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Materiały

Lista materiałów użytych w tym artykule
NazwaFirmaNumer katalogowyKomentarze
Guanidinium HClApplichemA14199Użyj wysokiej jakości Gu-HCl
Tris Roth4855.2
DTT ApplichemA1101
NaClVWR chemicals27810.364
EDTARoth8043.2
Na2H2PO4ApplichemA1046
NaH2PO4ApplichemA3902
AplikacjaimidazolowaA1073
d-DesthiobiotinSigmaD1411
Ni-NTA SuperflowQiagen1034557
Strep-Tactin SuperflowIBA2-1207-001
Santa Cruzsc-8036
Sprzężona z paciorkowcem HRPIBA2-1502-001
Hi-Load 16/600 Superdex 200 pgGE Healthcare28-9893-35
Membrana dializowa 6 - 8 kDaSpectrumlabsspectra/por 1, 132650
50 kDa membrana dializacyjnaSpectrumlabsspectra/por 7, 132129
10 kDa filtr odśrodkowyMerck MilliporeUFC901024
30 kDa jednostkaMerck MilliporeUFC903024
Spektrometr NMR w stanie roztworu o częstotliwości roboczej co najmniej 500 MHz, wyposażony w kriosondę z potrójnym rezonansem
Buffer nameComponent
Unfolding Buffer7 M Guanidinium HCl
20 mM Tris, pH 7,5
10 mM Bufor do ponownego składania naziemnej telewizji cyfrowej
10 mM Tris, pH 7,5
2 M NaCl
1 mM EDTA
2 mM DTT
Bufor testowy25 mM Na2H2PO4, pH 6,8
25 mM NaCl
2 mM DTT
Przeciwciało przeciwko paciorkowcom

Bibliografia

  1. Hansen, J. C. Conformational Dynamics of the Chromatin Fiber in Solution: Determinants, Mechanisms, and Functions. Annu. Rev. Biophys. Biomol. Struct. 31, 361-392 (2002).
  2. Clapier, C. R., Cairns, B. R. The Biology of Chromatin Remodeling Co....

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Przedruki i uprawnienia

Poproś o pozwolenie na ponowne wykorzystanie tekstu lub ilustracji tego artykułu JoVE

Poproś o pozwolenie

Tagi

Rekonstytucja nukleosom whistony znakowane izotopowohiston H3oczyszczanie bia ekmembrana dializacyjnafiltracja elowachromatografia powinowactwaspektroskopia NMRmodyfikacje potranslacyjne

Powiązane artykuły