Subskrypcja JoVE jest wymagana do oglądania tego materiału. Zaloguj się lub rozpocznij bezpłatny okres próbny.

Artykuł metodologiczny

Stosowanie dwóch wewnątrzustrojowych urządzeń wspomagających pracę komór jako całkowicie sztucznego serca

9.2K wyświetleń

DOI:

10.3791/55961

11 maja 2018

W tym artykule

Podsumowanie

Tutaj prezentujemy protokół wykorzystujący dwie pompy odśrodkowe jako całkowitą wymianę sztucznego serca.

Streszczenie

Mechaniczne wspomaganie krążenia (MCS) zostało wprowadzone jako realna alternatywa dla transplantacji serca, głównie dzięki zastosowaniu wewnątrzustrojowych urządzeń wspomagających pracę komór (VADs) do wspomagania lewej komory. Jednak niektóre scenariusze kliniczne uzasadniają dwukomorowe wspomaganie mechaniczne. Jedną ze strategii dla niektórych pacjentów jest wycięcie obu komór i wszczepienie dwóch pomp VAD jako całkowitego sztucznego serca (TAH). Ostatnio stało się to możliwe dzięki ulepszeniom w konstrukcji urządzeń i niewielkiemu profilowi urządzeń odśrodkowych. To podejście TAH pozostaje eksperymentalne z wieloma ważnymi wyzwaniami, takimi jak ustawienia urządzenia w celu zrównoważenia prawego i lewego krążenia, orientacja urządzeń i przeszczep odpływowy wraz z ich wpływem na hemolizę i stabilność, a także wynik przewlekłego wspomagania przy użyciu takiej orientacji. Protokół ten ma na celu zapewnienie powtarzalnego podejścia do całkowitej wymiany sztucznego serca za pomocą dwóch wewnątrzustrojowych odśrodkowych VAD w modelu krowy.

Wprowadzenie

Nastąpił wzrost liczby pacjentów z niewydolnością serca, szacuje się, że obecnie w Stanach Zjednoczonych na tę chorobę cierpi 5,7 miliona dorosłych1. Około 300 000 pacjentów cierpi na schyłkową niewydolność serca, a średnia długość życia wynosi mniej niż jeden rok. Chociaż przeszczep serca pozostaje złotym standardem terapii w końcowym stadium niewydolności serca, jest on znacznie ograniczony przez liczbę dostępnych narządów dawcy. MCS został wprowadzony jako realna alternatywa dla transplantacji serca, zwłaszcza dzięki zastosowaniu VADs2. Działanie VED polega na odciążeniu lewej komory i zapewnieniu przepływu do przodu (wspomaganego przez pompę) bezpośrednio do krążenia tętniczego. VAD mogą być wszczepiane jako pomost do przeszczepu, jak również jako terapia docelowa dla pacjentów, którzy nie kwalifikują się do transplantacji3. Od czasu zatwierdzenia przez FDA niecałą dekadę temu, roczna liczba wszczepianych VED przekroczyła liczbę przeszczepów serca, przy czym liczba ta wykładniczo rośnie4. Jednak w podgrupie pacjentów niewydolność serca jest dwukomorowa (tj. dotyczy zarówno lewej, jak i prawej komory) i samo wspieranie lewej komory może nie zapewnić odpowiedniej perfuzji. W takich sytuacjach prawa komora wymaga tymczasowego wsparcia mechanicznego5. Ten rodzaj "RVAD" wymaga użycia dużych kaniul podłączonych do pompy pozaustrojowej, która ogranicza pacjenta do Oddziału Intensywnej Terapii (OIOM) podczas rekonwalescencji komory. Dla ograniczonej podgrupy pacjentów inną opcją jest TAH6,7. Wskazaniami do stosowania TAH są: niewydolność dwukomorowa po zawale lekarskim, ubytek przegrody międzykomorowej (VSD), ciężka miopatia restrykcyjna wykluczająca kaniulację komorową oraz nieudany przeszczep serca wymagający przewlekłego wspomagania. Jednak obecnie zatwierdzone przez FDA urządzenie TAH jest duże i nie może być stosowane u mniejszych pacjentów. Dodatkowo sterowniki pneumatyczne są sporych rozmiarów i ograniczają mobilność pacjenta.

Jedną ze strategii eksperymentalnych dla niektórych pacjentów jest użycie drugiego VAD do wsparcia prawej komory8,9,10. W tym scenariuszu obie komory są wycinane, a dwa VAD są wszczepiane jako TAH. Stało się to możliwe dzięki ulepszeniom w konstrukcji urządzenia i zmniejszeniu profilu urządzenia. Nowe odśrodkowe VAD są znacznie mniejsze, co pozwala na wszczepienie dwóch VAD obok siebie, aby wspierać zarówno lewe, jak i prawe krążenie. Podejście to pozostaje eksperymentalne z wieloma ważnymi wyzwaniami, w tym ustawieniami urządzenia w celu zrównoważenia prawego i lewego krążenia, orientacją urządzeń i przeszczepem odpływowym wraz z ich wpływem na hemolizę i inne zdarzenia niepożądane. Celem tego protokołu jest zapewnienie powtarzalnego podejścia do zastąpienia TAH dwoma odśrodkowymi zaworami VED w modelu krowy.

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Protokół

Dobrane wiekowo (do oddania krwi, jeśli jest to potrzebne) cielęta (waga 80-90 kg) są pod opieką w obiekcie dla zwierząt. Trzymanie i wszystkie procedury zabiegowe są wykonywane zgodnie z wytycznymi Komitetu ds. Opieki nad Zwierzętami i Użytkowania Centrum Medycznego Uniwersytetu Duke'a.

1. Rozpoczęcie znieczulenia

  1. Po poście przez 8–12 godzin należy wstępnie podawać cielęciu Telazol (4,5 mg/kg/domięśniowo), a następnie podawać izofluran (1–4%) przez maskę na twarz.
  2. Umieść krowę w pozycji leżącej na podgrzewanym stole i zaintubuj. Przymocuj kończyny do stołu za pomocą ciężkich opasek.
  3. Umieścić cewnik dożylny (rozmiar 14–20) w żyle usznej.
  4. Diazepam należy podawać (0,22–0,44 mg/kg mc./dożylnie), jeśli żucie i połykanie jest bardzo powszechne lub jeśli zwierzę gryzie rurkę dotchawiczą (ET). Dodatkowo, w przypadku trudności z intubacją, należy podawać, aby ułatwić narażenie dróg oddechowych na intubację.

2. Parametry życiowe i ustawienia linii centralnej

  1. Wentylację mechaniczną należy rozpocząć przy objętości oddechowej 10–15 ml/kg i częstości 20–25 uderzeń na minutę, przy czym izofluran (0,5–4%) utrzymuje się przez cały czas trwania zabiegu.
  2. Zabezpiecz rurkę ET za pomocą opasek, aby upewnić się, że nie zmieni się położenie rurki podczas operacji.
  3. Stale monitoruj nasycenie tlenem i tętno przez cały czas trwania eksperymentu. Wszelkie trudności z wentylacją lub nasyceniem tlenem (SaO2) należy natychmiast rozwiązać. Będą one prawdopodobnie związane z położeniem rurki lub ustawieniami respiratora. Jeśli jest to pozycja rurki, wyreguluj rurkę ET, aby uzyskać odpowiednie objętości oddechowe.

3. Centralny dostęp naczyniowy

  1. Chociaż następujące czynności można wykonać przezskórnie pod kontrolą ultrasonograficzną, należy zastosować podejście ograniczające, aby lepiej kontrolować wszelkie miejscowe krwawienia po antykoagulacji zwierzęcia.
  2. Używając tchawicy jako punktu orientacyjnego, ogol futro na szyi (za pomocą maszynki do strzyżenia włosów) i wysterylizuj obszar za pomocą betadyny. Wykonaj równoległe nacięcie liniowe w odległości 1–2 cm od tchawicy i 20 cm od manubrium za pomocą skalpela z ostrzem nr 10.
  3. Podziel mostek obojczykowo-sutkowy i ostrożnie odsłoń lewą tętnicę szyjną wspólną i żyłę szyjną wewnętrzną za pomocą elektrycznego narzędzia do kauteryzacji. Użyj samozabezpieczającego się zwijacza, aby pomóc w ekspozycji. Utrzymuj proksymalną i dystalną kontrolę zarówno tętnicy, jak i żyły za pomocą dużych szwów jedwabnych (jedwab w rozmiarze 0 lub 1) lub pętli naczyń.
  4. Kankaniul lewą tętnicę szyjną wspólną za pomocą cewnika o rozmiarze 18 do monitorowania ciśnienia krwi. Odwietrz linię, a jeśli wystąpi krwawienie, umieść szew polipropylenowy 6-0 lub 7-0 w sposób sznurkowy wokół cewnika.
    1. Podłącz przetwornik ciśnienia do konsoli i przenieś falę ciśnienia do oprogramowania pod "ciśnieniem systemowym". Odczyt i zapisz dane wyjściowe.
  5. Uzyskaj dostęp do lewej żyły szyjnej wewnętrznej w celu podawania płynów i leków oraz monitorowania ciśnienia w żyle centralnej. Podłącz przetwornik ciśnienia do konsoli i przenieś falę ciśnienia do oprogramowania pod "centralnym ciśnieniem żylnym". Odczyt i zapisz dane wyjściowe.
  6. Przymocuj obie linie dystalnie do skóry i monitoruj. Zapisz wyjściowe ciśnienie w żyłach ośrodkowych (CVP) i ciśnienie tętnicze krwi.

4. Mediana sternotomii i krążenie pozaustrojowe (CPB)

  1. Wykonaj badanie palpacyjne mostka od manubrium do mieczykowatego, aby wybrać miejsce w linii środkowej i zaznaczyć za pomocą sterylnego markera chirurgicznego. Ogol futro maszynką do strzyżenia włosów i wysterylizuj obszar za pomocą betadyny. Zastosuj sterylną obłożenie chirurgiczne.
  2. Wykonaj nacięcie za pomocą ostrza nr 10 od brzucha w dół do mieczykowatego.
  3. Użyj elektrycznego narzędzia do kauteryzacji, aby podzielić klatkę piersiową większą w dół od mostka, jednocześnie idealnie wyrównając ją z linią środkową za pomocą ręcznego badania palpacyjnego bocznych krawędzi mostka. Naciąć linię środkową mostka za pomocą elektrycznego narzędzia do kauteryzacji. Rozpocznij sternotomię od dołu, dzieląc mieczyk mieczykowaty ciężkimi nożyczkami.
  4. Przedłuż głowodź sternotomii za pomocą maszynek do strzyżenia ogrodowego. Po każdym cięciu sprawdź mostek. Wykonaj badanie palpacyjne pod mostkiem i wykonaj rozwarstwienie, aby pomóc sercu i płucu odejść od mostka. W połowie sternotomii można napotkać niektóre krzyżujące się mięśnie poprzeczne, które są dzielone za pomocą kauteryzacji elektrycznej.
  5. Ukończ sternotomię aż do manubrium. Uważaj, aby pozostać wzdłuż linii środkowej, ponieważ będzie to ważne dla gojenia.
  6. Po zakończeniu sternotomii osiągnij hemostazę, nacinając krwawiące krawędzie mięśni za pomocą elektrycznego narzędzia do kauteryzacji. Nałóż wosk kostny na szpik mostka, aby pomóc w przypadku resztkowego krwawienia.
  7. Zidentyfikuj grasicę i usuń ją za pomocą elektrycznego narzędzia do kauteryzacji. Wejdź do osierdzia w sposób podłużny i odbijaj się od przepony aż do aorty.
    1. Stwórz kołyskę osierdziową za pomocą pięciu jedwabnych szwów 2-0 przybliżających osierdzie do skóry, aby podciągnąć serce do góry i je podeprzeć. Wybierz wszystkie rogi otwartego osierdzia i przyprowadź je bezpośrednio do przodu skóry za pomocą jedwabnych szwów.
  8. Utwórz okno o długości 3 cali między aortą a tętnicą płucną, preparując tkankę łączną, aby umożliwić przejście zacisku krzyżowego aorty. Założyć szew polipropylenowy 4-0 ze sznurka do aorty wstępującej w miejscu bliższym rozwidleniu.
  9. Uwolnić obwodowo żyłę główną górną (SVC) za pomocą rozwarstwienia i założyć drugi szew polipropylenowy 3-0 z torebki. Ustalić heparynizację ogólnoustrojową przy użyciu dawki początkowej 300 j./kg, aby osiągnąć czas krzepnięcia po aktywacji (ACT) większy niż 400 s.
  10. Po osiągnięciu odpowiedniego ACT użyj ostrza nr 11, aby wejść do aorty i włóż kaniulę tętniczą 18 Fr. Odwietrzyć kaniulę i podłączyć do linii tętniczej CPB. Następnie umieść kaniulę SVC 28 Fr w SVC i uruchom CPB.
  11. Podczas częściowego CPB zidentyfikuj żyłę główną dolną (IVC) i kanniuluj zgodnie z opisem dla SVC. Zrób to podczas pomostowania, ponieważ pozwala to na lepsze zarządzanie hemodynamiką, biorąc pod uwagę konieczność naciskania na serce w celu ekspozycji.
    UWAGA: Nadal może istnieć możliwość rozwoju niedociśnienia, ponieważ CPB jest w tym momencie włączony tylko jako częściowe wsparcie. Jeśli wystąpi niedociśnienie, krok ten należy wykonać ostrożnie i rozbić, aby serce zwierzęcia mogło się okresowo wypełniać.
  12. Po bezpiecznym włożeniu kaniuli IVC należy ją podłączyć do obwodu głównego za pomocą złącza Y. Zapętlić zarówno SVC, jak i IVC taśmą pępowinową, aby umożliwić całkowitą izolację krwi z serca.

5. Ventriculectomia

  1. Podczas pełnego wspomagania krążeniowo-oddechowego należy zejść do SVC i IVC za pomocą wcześniej nałożonej taśmy pępowinowej. Zastosuj zacisk krzyżowy aorty proksymalnie do miejsca kaniulacji aorty. Po potwierdzeniu pozycji zacisku rozpocznij komorę.
  2. Wyciąć tkankę komorową obwodowo 1-2 cm dystalnie do prawego i lewego rowka przedsionkowo-komorowego. Pozostaw krawędź mięśnia komorowego z pierścieniami mitralnymi i trójdzielnymi, aby zapewnić dalsze wsparcie dla implantacji pierścieni huśtawki.
  3. Przeciąć aparaty podzastawkowe dla zastawek mitralnych i trójdzielnych w miarę ich napotkania.
  4. Wyciąć mięsień drogi odpływu prawej komory z drogą odpływu prawej komory (RVOT) wraz z wycięciem zastawki płucnej. Należy również wyciąć drogę odpływu lewej komory (LVOT), ale zachować tylną część zastawki aortalnej jako część kurtyny aortalno-mitralnej.
  5. Podziel przegrodę międzykomorową na końcu. Zidentyfikuj ujście zatoki wieńcowej i podwiązaj za pomocą szwów polipropylenowych 5-0.

6. Implantacja pomp o przepływie odśrodkowym (CFP)

  1. Użyj zastawionych, przerywanych, plecionych szwów 2-0, aby przymocować pierścień do szycia do tkanki komorowej i pierścienia zastawki mitralnej. Wyjdź szwy na powierzchni nasierdzia obręczy mięśnia komorowego i przeprowadź przez pierścień do szycia. Technika ta pozwala uniknąć "zbijania się" tkanki powyżej pierścienia, co zakłócałoby koaptację pierścienia z pompą.
  2. Zastosuj podobne podejście, aby przymocować pierścień do szycia do obręczy mięśnia prawej komory i pierścienia trójdzielnego.
  3. Przymocuj CFP do pierścieni do szycia i zabezpiecz za pomocą standardowego mechanizmu blokującego. Ustaw je tak, aby umożliwić dostęp do mechanizmu blokującego.
  4. Dostosuj długość przeszczepu odpływu zgodnie z wybraną orientacją. Po ustaleniu odpowiedniej długości należy odciąć przeszczep odpływowy. Uważaj, aby przeszczep nie był zbyt długi, ponieważ może to spowodować załamania.
  5. Użyj ciągłych szwów polipropylenowych 4-0, aby zespoleć przeszczepy odpływowe do aorty (dla CFP lewego serca) i tętnicy płucnej (dla CFP prawego serca) w sposób od końca do końca.
  6. Przed zakończeniem zespoleń należy zwolnić taśmę na kaniulach drenażowych SVC i IVC i pozwolić, aby krew wypełniła prawą i lewą pompę, rozpoczynając w ten sposób proces odpowietrzania. Umieść igłę o rozmiarze 18 w każdym z przeszczepów odpływowych w celu dalszego odpowietrzenia. Użyj respiratora, aby zapewnić oddychanie o dużej objętości, aby umożliwić powrót i odpowietrzenie powietrza uwięzionego w żyłach płucnych.
    1. Po zakończeniu odpowietrzania usuń igłę i napraw miejsce za pomocą zastawionych szwów polipropylenowych 5-0.
  7. Uruchom pompy przy niskiej prędkości obrotowej (3,000 obr./min), aby umożliwić przepływ krwi do przodu, początkowo z zaciskiem nadal na miejscu. Usuń zacisk krzyżowy aorty i pozostaw pewną objętość krwi, aby dostać się do pomp.
  8. Stopniowo zwiększaj prędkość pompy w miarę odzwyczajania wspomagania krążeniowo-oddechowego. Zakończyć CPB i całkowicie wspomóc cyrkulację za pomocą pomp po prawej i lewej stronie.
  9. Określ końcowe ustawienia prędkości pompy na podstawie ciśnienia napełniania żył po prawej i lewej stronie.
  10. Wprowadzić cewniki ciśnieniowe bezpośrednio do tętnicy płucnej i żył płucnych za pomocą nici polipropylenowej 5-0, aby zabezpieczyć je na miejscu.
  11. Przesyłaj sygnały ciśnienia do oprogramowania pod etykietami "tętnica płucna" i "żyła płucna". Ponadto należy umieścić ultradźwiękowe sondy przepływu wokół aorty wstępującej i głównej tętnicy płucnej.
    UWAGA: Wszystkie 4 kanały powinny być teraz aktywne: 1. "ciśnienie ogólnoustrojowe", 2. "centralne ciśnienie żylne", 3. "tętnica płucna" i 4. "żyła płucna".

7. Ustanowienie dwukomorowego urządzenia wspomagającego przepływ

  1. Stopniowo zmniejszając przepływ CPB, powoli zwiększaj prędkość lewego CFP, a następnie prawego CFP, zawsze utrzymując niższą prędkość CFP po prawej stronie niż lewą CFP.
  2. Zwróć szczególną uwagę na hemodynamikę, w tym ogólnoustrojowe ciśnienie krwi i CVP. Nadkrążenie płucne jest wskazane przez niefizjologiczne ciśnienie w tętnicy płucnej lub żyle płucnej.
  3. Na koniec zwiększ prędkość lewego i prawego CFP, aby osiągnąć przepływ 4 l/min na każdym urządzeniu i odzwyczaić od CPB. Po osiągnięciu stabilności hemodynamicznej należy usunąć kaniule SVC i IVC i zawiązać szwy sznurkowe.
  4. Następnie usuń kaniulę aorty i zawiąż szew ze sznurkiem do torebki. Poddaj zwierzę eutanazji, powoli zmniejszając się, a następnie zatrzymując obie pompy CFP, gdy zwierzę jest pod narkozą.

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Wyniki

Na Rysunku 1 przedstawiono sposób mocowania pierścieni szyjących. Rysunek 1A pokazuje „marszczenie” tkanki komory, które może stwarzać problemy z mocowaniem pompy. Rysunek 1B przedstawia prawidłowe mocowanie.

Rysunek 2 oraz Rysunek 3 przedstawiają dwie różne orientacje pomp. Na

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Dyskusja

W tym manuskrypcie opisujemy zastosowanie dwóch odśrodkowych przepływów VAD jako wewnątrzustrojowego TAH. Ta technika może być bardzo przydatna do badania wpływu sztucznego krążenia na narządy wtórne, takie jak płuca i wątroba. Ponadto może być przydatny do badania zmian hemodynamicznych wynikających z różnych orientacji pomp i scenariuszy przepływu. Krytyczne kroki w tym protokole obejmują sposób, w jaki pierścienie do szycia są przymocowane do tkanki komorowej, a jednocześnie zawierają pierścienie zastawkowe w celu zwi...

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Oświadczenia

Praca ta była możliwa dzięki grantowi badawczemu przyznanemu przez Abbot Medical dr Milano.

Podziękowania

Chcielibyśmy podziękować Laurze Janney i Abbot Medical za częściowe dofinansowanie. Chcielibyśmy również podziękować Duke Perfusion Services i Large Animal Surgical Core za ich pomoc podczas operacji.

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Materiały

Lista materiałów użytych w tym artykule
NazwaFirmaNumer katalogowyKomentarze
SPO2  i tętno należy monitorować: MultiparameterMeditech Equipment, Co., Ltd.Monitor hemodynamicznyMD-908
Viscot Mini XL Markery chirurgiczneAmazonB007P550WGznakowanie mostka przed nacięciem
60W High Power Electric Pet Cat Rabbits Koń Strzyżenie włosów zwierząt Maszynka do strzyżenia włosówLILY International Business CO., LIMITED ZP-293Golenie futra
nr 10 ostrze skalpelaSwann-Mortan, Anglia301Nacięcie skóry
Nożyczki MatzenbaumBD-V. Mueller, USACH2006-001Nożyczki do eksploracji naczyń krwionośnych
Felco, USAFELCO 200A-50, Felco Professional Nożyce do obejściasternotomii
SamozwijaczBD-V. Mueller, Stany ZjednoczoneAU19270SCHUKNECHT Samozabezpieczający się zwijacz zauszny, 
Zwijacz mostkaBD-V. Mueller, Stany ZjednoczoneCH6950-007Retraktor mostka Cooley
Przetwornik ciśnienia (Millar Mikro-Tip, 5Fr)Millar, StanyZjednoczone MillarMikro-Tip, SPR-350SOcena ciśnienia w tętnicy płucnej lub żyle
Instrumenty AD (PowerLab)Instrumenty AD, USAPowerLab 16/35Transdukcja sygnału ciśnienia
Taśmy pępowinoweMedline industries Inc., Stany ZjednoczoneU11Do izolacji i zastawiania sidła żyły głównej górnej lub dolnej Pętle
naczyńAspen Surgical, USA3901, 3902 i 3904Izolacja naczyń
Nici jedwabne, 2-0Ethicon US, LLC, USASA11GDo sidła żyły głównej górnej lub dolnej
Ticron 2-0Covidien, USASzew TicronTMSzew naczyniowy
Prolene, 7-0Covidien, USASurgipro IISzew naczyniowy
Prolene, 6-0Covidien, USASurgipro IISzew naczyniowy
Prolene, 4-0Covidien, USASurgipro IISzew naczyniowy
Prolene, 3-0Covidien, USASurgipro IISzew naczyniowy
Kaniula aortalna, 15-18 FrMedtronic, USAWydłużona-jednoczęściowa-kawałkowa kaniula tętniczaKaniula aortalna 3D do ustawiania krążenia i oddechu obejście
Kaniula żylna, 28FrEdwards Lifesciencesjednostopniowakaniula żylna do założenia krążenia pozaustrojowego
śródoperacyjnie do

Bibliografia

  1. Mozzafarian, D., et al. American Heart Association Statistics Committee and Stroke Statistics Subcommittee. Heart disease and stroke statistics—2016 update: a report from the American Heart Association. Circulation. 133 (4), e38-e360 (2016).
  2. Slaughter, M. S., et al. HeartMate II Investigators. Advanced heart failure treated with continuous-flow left ventricular assist device. N Engl J Med. 361 (23), 2241-2251 (2009).
  3. Fang, J. C. Rise of the Machines — Left Ventricular Assist Devices as Permanent Therapy for Advanced Heart Failure. N Engl J Med. 361, 2282-2285 (2009).
  4. Kirklin, J. K., et al. Seventh INTERMACS annual report: 15,000 patients and counting. J Heart Lung Transplant. 34 (12), 1495-1504 (2015).
  5. Leidenfrost, J., et al. Right ventricular assist device with membrane oxygenator support for right ventricular failure following implantable left ventricular assist device placement. Eur J Cardiothorac Surg. 49 (1), 73-77 (2016).
  6. Gerosa, G., Gallo, M., Bottio, T., Tarzia, V. Successful heart transplant after 1374 days living with a total artificial heart. Eur J Cardiothorac Surg. 49 (4), e88-e89 (2016).
  7. Pelletier, B., et al. System overview of the fully implantable destination therapy--ReinHeart-total artificial heart. Eur J Cardiothorac Surg. 47 (1), 80-86 (2015).
  8. Krabatsch, T., et al. Biventricular circulatory support with two miniaturized implantable assist devices. Circulation. 124, Suppl 11. S179-S186 (2011).
  9. Milano, C. A., Schroder, J., Daneshmand, M. Total Artificial Heart Replacement With 2 Centrifugal Blood Pumps. Oper Tech Thorac Cardiovasc Surg. 20 (3), 306-321 (2016).
  10. Strueber, M., et al. Placement of 2 implantable centrifugal pumps to serve as a total artificial heart after cardiectomy. J Thorac Cardiovasc Surg. 143 (2), 507-509 (2012).

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Przedruki i uprawnienia

Tagi

Urz dzenie do wspomagania kom rpompa z przep ywem od rodkowymwsparcie obustronne kom rmodel krowichirurgiczna niewydolno sercastabilno hemodynamicznagraft odp ywowykolebka osierdziowapozaustrojowe wspomaganie kr enia