Celem tego protokołu jest specyficzne oznaczanie i selektywne izolowanie wirusowego DNA z zakażonych komórek w celu scharakteryzowania białek związanych z genomem wirusa.
Artykuł metodologiczny
Celem tego protokołu jest specyficzne oznaczanie i selektywne izolowanie wirusowego DNA z zakażonych komórek w celu scharakteryzowania białek związanych z genomem wirusa.
Celem tego protokołu jest wyizolowanie DNA wirusa opryszczki pospolitej typu 1 (HSV-1) z zainfekowanych komórek w celu identyfikacji powiązanych białek wirusowych i komórkowych za pomocą spektrometrii mas. Chociaż białka, które wchodzą w interakcje z genomami wirusów, odgrywają główną rolę w określaniu wyniku infekcji, kompleksowa analiza białek związanych z genomem wirusa nie była wcześniej możliwa. Tutaj demonstrujemy metodę, która umożliwia bezpośrednie oczyszczanie genomów HSV-1 z zakażonych komórek. Replikujące się DNA wirusa jest selektywnie znakowane zmodyfikowanymi nukleotydami, które zawierają alkinową grupę funkcyjną. Wyznakowane DNA jest następnie specyficznie i nieodwracalnie znakowane poprzez kowalencyjne przyłączenie azydku biotyny za pomocą katalizowanej miedzią(I) cykloaddycji azydku alkiny lub reakcji klikania. DNA znakowane biotyną jest oczyszczane na kulkach pokrytych streptawidyną, a powiązane białka są eluowane i identyfikowane za pomocą spektrometrii mas. Metoda ta umożliwia selektywne celowanie i izolację widełek replikacyjnych HSV-1 lub całych genomów ze złożonych środowisk biologicznych. Co więcej, adaptacja tego podejścia pozwoli na badanie różnych aspektów infekcji wirusem opryszczki, a także badanie genomów innych wirusów DNA.
Wirusy mają ograniczoną zdolność do wykonywania podstawowych funkcji i dlatego polegają na czynnikach gospodarza, aby ułatwić krytyczne aspekty infekcji, w tym ekspresję genów wirusa, replikację, naprawę, rekombinację i transport. Aktywność tych czynników gospodarza jest często wzmacniana przez białka kodowane przez wirusa. Ponadto wirusy muszą unikać wykrywania i zakłóceń przez odpowiedzi komórkowe na infekcję wirusową. W związku z tym interakcje wirusa z gospodarzem decydują o wyniku infekcji. Niezwykle ważne jest zrozumienie, w jaki sposób wirusy zmieniają środowisko komórkowe, aby dostosować maszynerię komórkową do ułatwienia procesów wirusowych. Szczególnie inter....
Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.
1. Hodowla komórkowa, infekcja wirusowa i znakowanie EdC (Rysunek 1)
Następujący protokół obejmuje pracę z wirusami. Prosimy o zapoznanie się z protokołami bezpieczeństwa biologicznego Twojej instytucji dotyczącymi bezpiecznego obchodzenia się z wirusami i innymi czynnikami biologicznymi. Protokół ten został zatwierdzony przez Institutional Review Board Uniwersytetu w Pittsburghu.
Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.
Zastosowanie chemii klik w celu oczyszczania DNA z komórek zostało po raz pierwszy zrealizowane za pomocą metody iPOND21. Celem metody iPOND jest oczyszczanie komórkowych widełek replikacyjnych w celu identyfikacji związanych z nimi białek. Zaadaptowaliśmy tę technikę do specyficznego badania oddziaływań białek z vDNA podczas infekcji. Modyfikacja tego podejścia w celu znakowania genomów wirusowych EdC (Rycina 1), w połączeniu z synchr.......
Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.
Protokół ten obejmuje wiele etapów, które, jeśli nie będą przestrzegane ostrożnie, mogą skutkować znacznym zmniejszeniem wydajności białka lub zanieczyszczeniem DNA komórkowego. Bardzo ważne jest, aby komórki stacjonarne były używane do wszystkich eksperymentów, aby zapewnić, że DNA komórkowe nie jest znakowane i oczyszczane. Można to potwierdzić przez brak komórkowych polimeraz DNA w próbce białka, ponieważ HSV-1 nie wykorzystuje komórkowej polimerazy DNA do syntezy genomu. Podczas etapów znakowania EdC i pobierania jąd.......
Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.
Autorzy nie mają nic do ujawnienia.
Dziękujemy Hannah Fox za pomoc w przygotowaniu tego rękopisu. Prace te były wspierane przez grant NIH R01AI030612.
....Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.
| Nazwa | Firma | Numer katalogowy | Komentarze |
|---|---|---|---|
| Komórki MRC-5 | ATCC | CCL-171 | |
| Płodowa surowica bydlęca (FBS) | Gibco | 26140-179 | |
| Zmodyfikowane podłoże Dulbecco's Eagle Medium (DMEM) | Gibco | 12800-082 | Zastąpione 10% FBS, 2 mM L-glutamina, 12 mM (do wzrostu w kolbach) lub 30 mM (do wzrostu w szalkach) wodorowęglinian sodu |
| 600 cm2 naczynie do hodowli tkankowych | Thermo Fisher Scientific | 166508 | |
| Tris Sól fizjologiczna buforowana (TBS), pH 7,4 | 137 mM NaCl, 5 mM KCl, 491 mM MgCl, 680 mM CaCl, 25,1 mM Tricine | ||
| HSV-1 | Zapasy z mianami większymi niż 1x109 PFU/ml działają najlepiej | ||
| Sephadex G-25 kolumna (kolumna odsalająca PD-10) | GE Healthcare | 17085101 | |
| Dimetylosulfotlenek (DMSO) | Fisher Scientific | D128-1 | |
| 5&ostra;-etynylo-2&ostra;-deoksycytydyna (EdC) | Sigma-Aldrich | T511307 | Rozpuść w DMSO, aby przygotować 40 mM bulionu, podwielokrotność i przechowywać w temperaturze -20 ° C |
| 2´-deoxycytydyna (deoksyC) | Sigma-Aldrich | D3897 | Rozpuścić w wodzie, aby przygotować 40 mM bulionu, podwielokrotność i przechowywać w temperaturze -20 ° C |
| Bufor do ekstrakcji jądrowej (NEB) | Przygotuj świeży (20 mM Hepes pH 7,2, 50 mM NaCl, 3 mM MgCl2, 300 mM sacharozy, 0,5% Igepal) | ||
| Skrobak do komórek | Bellco glass | 7731-22000 | Autoklaw przed użyciem |
| Roztwór błękitu trypanowego | Sigma-Aldrich | T8154 | |
| PBS, pH 7,2 (10x) | 1.37 M NaCl, 27 mM KCl, 100 mM Na2HPO4, 18 mM KH2PO4 (przed użyciem rozcieńczyć do 1x w sterylnej wodzie) | ||
| Pięciowodny siarczan miedzi (II) (CuSO4-5H2O) | Fisher Scientific | C489 | Przygotuj 100 mM zapasu i przechowuj w temperaturze 4 stopni; C przez okres do 1 miesiąca |
| (+) L-askorbinian sodu | Sigma-Aldrich | A4034 | Świeżo przygotuj 100 mM bulionu i przechowuj na lodzie do czasu użycia |
| Azydek biotyny | Invitrogen | B10184 | Przygotuj 10 mM bulionu w DMSO, podwielokrotność i przechowuj w temperaturze -20 &; C na okres do 1 roku |
| Click Reaction Mix | Przygotować bezpośrednio przed użyciem, dodając odczynniki we wskazanej kolejności (10 ml: 8,8 ml 1x PBS, 200 ml 100 mM CuSO4, 25 ml 10 mM azydu biotyny, 1 ml 100 mM askorbinianu sodu) | ||
| Kompletny koktajl inhibitorów proteazy | Roche | 11697498001 | Rozpuść w 1 ml wody, aby przygotować 50x bulion, można przechowywać w temperaturze 4 stopni; C przez okres do 1 tygodnia lub bezpośrednio dodać 1 tabletkę do 50 ml buforu |
| Bufor zamrażający | Przygotuj świeże (7 ml 100% glicerolu, 3 ml NEB, 200 μ L 50x inhibitor proteazy) | ||
| Bufor B1 | Przygotuj świeży (25 mM NaCl, 2 mM EDTA, 50 mM Tris-HCl pH 8, 1% Igepal, 1x inhibitor proteazy) | ||
| Bufor B2 | Przygotuj świeży (150 mM NaCl, 2 mM EDTA, 50 mM Tris-HCl pH 8, 0,5% Igepal, 1x inhibitor proteazy) | ||
| Bufor B3 | Przygotuj świeży (150 mM NaCl, 2 mM EDTA, 50 mM Tris-HCl pH 8, 1x inhibitor proteazy) | ||
| Vibra Cell Ultra Sonic Processer wyposażony w sondę mikrokońcówkową 3 mm | Sonics | VCX 130 | |
| Falcon | 352360 | ||
| Dynabeads MyOne Streptavidin T1 | Life Technologies | 65601 | |
| DynaMag-2 Magnet | Life Technologies | 12321D | |
| Rotator Mini-Tube | Fisher Scientific | 260750F | |
| 2x Laemmli bufor | Wymieszaj 400 mg SDS, 2 ml 100% glicerolu, 1,25 ml 1 M Tris (pH 6,8) i 10 mg błękitu bromofenolowego w 8 ml wody. Przechowywać w 4 ° C przez okres do 6 miesięcy. Przed użyciem dodać 1 M DTT do końcowego stężenia 200 mM. | ||
| Zamki do probówki 1,5 ml | Fisher Scientific | NC9679153 | |
| Standardowe odczynniki | |||
| western NOVEX Zestaw do barwienia na niebiesko koloidalne | Invitrogen | LC6025 | |
| 12-dołkowe naczynie do hodowli tkankowych | Corning | 3513 | |
| Szkiełka nakrywkowe | Autoklaw Fisher Scientific | 12-545-100 | przed użyciem |
| Szkiełka mikroskopowe | Fisher Scientific | 12-552-5 | |
| 16% paraformaldehyd | Mikroskopia elektronowa Sciences | 15710 | Rozcieńczyć do 3,7% w 1x PBS przed użyciem |
| Albumina surowicy bydlęcej (BSA) | Fisher Scientific | BP1605 | Przygotuj 3% w 1x PBS |
| Bufor permeabilizacyjny (0,5% Triton-X 100) | Sigma-Aldrich | T8787 | Przygotuj 0,5% Triton-X 100 w 1x PBS |
| Koktajl reakcji na kliknięcie - Zestaw do obrazowania Click-iT EdU Alexa Fluor 488 | Sondy molekularne | C10337 | Przygotuj zgodnie z protokołem producenta |
| Hoechst 33342 | Life Technologies | H1399 | Przygotuj 10 mg / ml w wodzie, można przechowywać w temperaturze 4 & stopni; C przez okres do 1 roku |
| Mysie przeciwciało pierwszorzędowe anty-ICP8 | Abcam | ab20194 | Użyj rozcieńczenia 1:200 w 1x PBS |
| Mysie przeciwciało pierwszorzędowe anty-UL42 (2H4) | Abcam | ab19311 | Użyj rozcieńczenia 1:200 w 1x PBS |
| Goat anty-mysie przeciwciało drugorzędowe sprzężone 594 | Life Technologies | a11005 | Użyj rozcieńczenia 1:500 w 1x PBS |
| Immu-mount | Thermo Fisher Scientific | 9990402 | |
| 2x SDS-roztwór wodorowęglanu | 2% SDS, 200 mM NaHCO3 | ||
| Fenol:chloroform:alkohol | Wymieszać 25:24:1 co najmniej 1 dzień przed użyciem, przechowywać w temperaturze 4 stopni; C w ciemności | ||
| chloroform: alkohol | Wymieszaj 24:1 co najmniej 1 dzień przed użyciem, przechowuj w temperaturze pokojowej w ciemności | ||
| 10x Tris EDTA (TE), pH 8,0 | 100 mM Tris, 10 mM EDTA (rozcieńczyć do 1x przed użyciem) | ||
| Zestaw do oczyszczania Qiaquick PCR | Qiagen | 28104 | |
| 3 M octan sodu pH 5,2 | |||
| Qubit 2.0 Fluorometr | Invitrogen | Q32866 | |
| Zestaw do oznaczania Qubit dsDNA HS | Invitrogen | Q32851 | |
| Probówki do testów kubitowych | Invitrogen | Q32856 | |
| Mikroskop fluorescencyjny wyposażony w oprogramowanie | |||
| Mikrowirówka do probówek 1,5 ml | |||
| Wirówka stołowa do probówek 15 i 50 ml Komórka | |||
| inkubator kultur Komora | |||
| bezpieczeństwa biologicznego | |||
| Bloki | 65 ° C oraz 95 ° Z |
Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.
Poproś o pozwolenie na ponowne wykorzystanie tekstu lub ilustracji tego artykułu JoVE
Poproś o pozwolenie