$$\rightleftharpoonup{xx}$$
$$\longleftharp{xx}$$,
$$\longrightharp{xx}$$,
Ten artykuł opisuje użycie platformy opartej na chipie (rys. 1) do trójwymiarowej hodowli linii komórkowych, jak również komórek pierwotnych. Ponieważ wiele komórek wyraża funkcje organotypowe tylko w środowisku 3D, opracowaliśmy polimerowy chip, który zapewnia rusztowanie, do którego komórki mogą przylegać we wszystkich kierunkach przestrzennych i który może być zamontowany w obudowie bioreaktora w celu kontroli przepływu płynu, napięcia tlenu itp. W zależności od projektu eksperymentalnego, powierzchnia polimeru może być modyfikowana za pomocą różnych technik, np. naświetlania promieniami UV, PECVD, szczepienia γ lub konwencjonalnej chemii mokrej.

Rysunek 01
1. Odpowietrzanie i hydrofilizacja chipa
Przed użyciem chip musi zostać odpowietrzony i hydrofilizowany. W tym celu przeprowadzana jest seria alkoholowa. Roztwory izopropanolu składające się ze 100%, 70%, 50%, 30% izopropanolu w wodzie uzdatnionej DMPC są przygotowywane, a chip zanurza się w każdym stężeniu, zaczynając od 100% roztworu, przez okres do 30 sekund. Ostatnim etapem serii jest czysta woda uzdatniona pirowęglanem dimetylu (DMPC). Od tego momentu ważne jest, aby chip był mokry
.
2. Powłoka kolagenu I
Po serii alkoholowej, chip jest zwykle pokryty roztworem kolagenu I z ogona szczura. Z podstawowego roztworu kolagenu o stężeniu 2 mg/ml w 0,2% kwasie octowym podwielokrotność odpowiadającą 30 μg białka kolagenowego rozcieńcza się wodą poddaną działaniu DMPC do końcowej objętości 150 μl. W ten sposób powstaje powłoka kolagenowa powierzchni wióra o gęstości 10 μg kolagenu I nacm2 powierzchni.
3. Inokulacja komórek raka wątrobowokomórkowego
Komórki raka wątrobowokomórkowego linii Hep G2 są trypsynizowane i zliczane. W przypadku eksperymentów krótkoterminowych (od 1 do 6 dni) 5*10,6 komórek zaszczepia się w każdym chipie i odpowiadającej im kontrolnej 6-centymetrowej kulturze tkankowej: szalkach Petriego. Aby zaszczepić, komórki chipa 5*106 są ponownie zawieszane w pożywce hodowlanej o objętości 150 μl i umieszczane na mikrostrukturalnym obszarze chipa (ryc. 2). Następnie umieszcza się go w inkubatorze na 2-3 godziny. Podczas tego okresu inkubacji komórki osadzają się w mikropojemnikach i przylegają do rusztowania pokrytego kolagenem I.

Rysunek 2
4. Umieszczenie chipa w obudowie bioreaktora
Po okresie inkubacji, chip jest wyjmowany z inkubatora i montowany w obudowie bioreaktora. W tym celu pod czystym stołem wstępnie zmontowany bioreaktor jest wyjmowany ze sterylnego opakowania i demontowany do stopnia umożliwiającego wprowadzenie chipa. Z chipem ostrożnie obchodzi się sterylnymi kleszczami i umieszcza w rowku, w którym znajduje się uszczelka uszczelniająca chip, co powoduje wytworzenie górnej i dolnej komory w bioreaktorze. Następnie bioreaktor jest ponownie montowany i przenoszony do inkubatora, gdzie jest podłączony do pompy, zasilania gazem i analizatora tlenu.
5. Napełnianie systemu
Gdy tylko bioreaktor zostanie podłączony do zbiornika medium, pompy i zasilania gazem, zamknięta pętla cyrkulacyjna jest napełniana medium. Odbywa się to poprzez ustawienie 3-drożnych złączy w taki sposób, aby uzyskać superfuzję, która jest definiowana jako przepływ medium przez górną część chipa. Prowadzi to do odprowadzania zamkniętego powietrza z obiegu bioreaktora bez usuwania komórek z rusztowania. Po całkowitym napełnieniu systemu pożywką, łączniki 3-drożne są przełączane w taki sposób, że uzyskuje się perfuzję, która jest definiowana jako przepływ spod chipa przez tkankę. W konfiguracji perfuzyjnej przepływ jest dostosowywany do potrzeb komórki, które dla hepatocytów zwykle wahają się w zakresie 60-500 μl/min.
6. Pobieranie próbek
Podczas eksperymentu można pobrać próbki podłoża. W tym celu strzykawki są podłączane do sterylnych portów na górze zbiornika pożywki. Po pobraniu próbek porty są sterylizowane 70% izopropanolem.
7. Izolacja nienaruszonych komórek od chipa do dalszych zastosowań
Na końcu eksperymentu, bioreaktory są odłączane od zasilania gazem i pompy rolkowej, przenoszone na czyste stanowisko i demontowane zgodnie z wcześniejszym opisem. Za pomocą sterylnych kleszczyków chip jest usuwany z obudowy bioreaktora, umieszczany na szalce Petriego o średnicy 3,5 cm i spłukiwany PBS. Następnie chip jest inkubowany z trypsyną/EDTA (0,25%/0,53 mM) przez 5-15 minut w inkubatorze w celu odłączenia komórek od obszaru mikrostrukturalnego. Zebraną zawiesinę komórek odwirowuje się przez 5 minut przy 600 g. Komórki mogą być następnie wykorzystane do konwencjonalnych zastosowań końcowych, np. do izolacji całkowitego RNA lub białek. Rutynowo izolujemy całkowite RNA (zestaw PARIS, Ambion Inc., Austin, Teksas, USA) do analizy mikromacierzy i RT-PCR w czasie rzeczywistym. Ekspresja białek jest analizowana po immunohistochemicznym barwieniu komórek wewnątrz chipa za pomocą laserowego mikroskopu skaningowego, ale może być również analizowana w inny sposób, np. za pomocą cytometrii przepływowej.