Subskrypcja JoVE jest wymagana do oglądania tego materiału. Zaloguj się lub rozpocznij bezpłatny okres próbny.

Artykuł metodologiczny

Obejście żołądka z jednym zespoleniem (OAGB) u szczurów

10.8K wyświetleń

⸱

DOI:

10.3791/58776

⸱

10 listopada 2018

W tym artykule

Podsumowanie

Ten protokół służy do wykonywania jednozespoleniowego obejścia żołądka (OAGB) na szczurach. Operator wykonuje długą i zszywaną rurkowo kieszeń żołądkową, a następnie ręcznie zszywane zespolenie. W tym modelu operator odtwarza ten sam stosunek między kończyną żółciowo-trzustkową a kończyną wspólną u ludzi; Dlatego kończyna biliotrzustkowa mierzy 35 cm.

Streszczenie

Celem tego protokołu jest stworzenie przedklinicznego modelu chirurgii bariatrycznej, a dokładniej OAGB u otyłych szczurów. W oparciu o ten model przedkliniczny można przeprowadzić badania podłużne, aby zapewnić lepsze zrozumienie mechanizmów leżących u podstaw wyników obserwowanych po operacji bariatrycznej u ludzi. W tym celu szczury są operowane przez laparotomię w znieczuleniu ogólnym z izofluranem. Najpierw chirurg tworzy długą i rurkową torebkę żołądkową: po większej krzywiźnie i rozwarstwieniu rozworu przełykowego niegruczołowy żołądek jest zszywany i usuwany. Następnie zszywa się również pozostały żołądek w celu utworzenia zgłębnika żołądkowego i wykluczenia antrum żołądka. Następnie chirurg wykonuje pojedynczą gastrojejunostomię z boku w odległości 35 cm od kąta dwunastnicy. Ta długość kończyny została wybrana w celu odtworzenia takiego samego stosunku długości kończyny żółciowo-trzustkowej (BPL) do długości kończyny wspólnej (CL), jak w chirurgii bariatrycznej człowieka. Operacja kończy się zamknięciem rozcięgna i skóry. Wczesne postępowanie pooperacyjne polega na podskórnym nawodnieniu, profilaktycznym wstrzyknięciu antybiotyku domięśniowo, wstrzyknięciu ksylokainy dociemieniowej, podawaniu leków przeciwbólowych i stopniowym wprowadzaniu diety.

Wprowadzenie

Chorobliwa otyłość jest głównym problemem zdrowotnym w świecie zachodnim, z coraz częstszym występowaniem1. Chirurgia bariatryczna pozostaje jedyną długoterminową skuteczną terapią chorobliwej otyłości2, z wyraźnymi korzyściami w przypadku chorób współistniejących związanych z otyłością3. Ominięcie żołądka metodą Roux-en-Y (RYGB) pozostaje złotym standardem, ponieważ jest to jedna z najstarszych procedur i jedna z najczęściej wykonywanych na świecie z najdłuższą kontrolą4. OAGB to nowsza procedura, opisana po raz pierwszy w 2001 roku przez Rutledge5. Został opisany jako skuteczna alternatywa dla RYGB6 i ma kilka zalet. Wczesne dane wskazują na podobną skuteczność do RYGB w odniesieniu do utraty masy ciała i ustąpienia chorób współistniejących związanych z otyłością6,7. Ponadto unika się ryzyka zwężenia lub nieszczelności zespolenia jelita czczo-czczego w RYGB, a ryzyko wystąpienia przepukliny wewnętrznej może być niższe niż w przypadku RYGB8.

Fizjologiczne mechanizmy leżące u podstaw utraty wagi po operacji bariatrycznej pozostają kontrowersyjne i mogą być trudne do zbadania u ludzi9. Modele zwierzęce są przydatne do zrozumienia, w jaki sposób operacje bariatryczne mogą wpływać na metabolizm glukozy, modyfikacje neuroendokrynne lub mechanizmy sytości. Brakuje danych porównawczych między procedurami, a długoterminowe skutki tych operacji muszą być lepiej zrozumiane10. Nie jest możliwa pełna standaryzacja przed- i pooperacyjnej opieki klinicznej, a zadowalająca obserwacja może być trudna do osiągnięcia: niektóre badania podają wskaźniki strat do obserwacji sięgające nawet 30% dla pierwszego roku11.

Koncepcja ominięcia żołądka to połączenie procedury restrykcyjnej, spowodowanej utworzeniem worka żołądkowego, oraz umiarkowanego stopnia złego wchłaniania, wynikającego z wykluczenia dwunastnicy i bliższego jelita czczego z pasażu żołądkowo-jelitowego. Obecnie długość kończyn w chirurgii bariatrycznej jest nadal przedmiotem dyskusji12,13. Dostępne dane wskazują na dużą zmienność procedur i nie osiągnięto jeszcze konsensusu co do optymalnej długości kończyny dla OAGB14,15. Niemniej jednak wielu autorów podaje długość BPL 200 cm jako standard dla OAGB16,17,18. Średnia długość jelita cienkiego wynosi około 700 cm19.

Na całym świecie opracowano kilka modeli gryzoni RYGB20, z dużymi różnicami pod względem rozmiaru torebki, długości kończyny i zachowania nerwu błędnego. Jednak bardzo niewielu autorów opisało model eksperymentalnego OAGB; Z tego powodu zespół badawczy opracował model OAGB we współpracy z chirurgami bariatrycznymi. Uzasadnieniem dla opracowania modelu było naśladowanie bypassów żołądkowych praktykowanych u ludzi. Model zawiera konstrukcję worka żołądkowego z wyłączeniem antrum i korpusu żołądka. W tym celu chirurg wykonuje ablację żołądka niegruczołowego za pomocą zszywacza. W porównaniu z poprzednim protokołem20, zespół zdecydował się dodać profilaktyczną antybiotykoterapię przed operacją, aby zmniejszyć zachorowalność związaną z zespoleniem przewodu pokarmowego, co jest rutynowe w chirurgii u ludzi21.

Długość kończyny szczura użyta w tym modelu została wybrana do odtworzenia stosunku między BPL a CL u ludzi. Wstępne pomiary wykazały, że całkowita długość jelita cienkiego u szczurów wynosi od 90 do 120 cm22. W związku z tym długość BPL wybrana dla OAGB wynosiła 35 cm. Co więcej, model ten jest praktyczny bez wykonywania podwiązania naczyń krwionośnych, unikając niedokrwienia worka żołądkowego.

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Protokół

Wszelkie wykorzystanie zwierząt było zgodne z wytycznymi Wspólnoty Europejskiej i zostało zatwierdzone przez lokalną komisję etyki (Comité d'éthique en expérimentation animale No 121) oraz Ministerstwo Szkolnictwa Wyższego i Badań (Ref #02285.03).

1. Zwierzęta i diety

  1. Szczury
    1. Stosować samce szczurów rasy Wistar o wadze 260 - 320 g, które rozpoczęły dietę wysokotłuszczową (HFD) w wieku 7 tygodni
    2. .
  2. dieta
    1. Wywołaj otyłość wywołaną dietą, z co najmniej 12 tygodniami przedoperacyjnymi HFD. Daj szczurom swobodny dostęp do wody i HFD.
      UWAGA: HFD składa się z oczyszczonej, laboratoryjnej, hiperkalorycznej diety gryzoni zawierającej 45% tłuszczu (patrz Tabela Materiałów).
    2. Upewnij się, że szczury są otyłe w momencie operacji, o wadze od 600 do 800 g.

2. Materiał

  1. Sprzęt chirurgiczny
    1. Autoklawuj wszystkie narzędzia chirurgiczne przed zabiegiem.
    2. Rozłóż wszystkie narzędzia chirurgiczne potrzebne do zabiegu (patrz tabela materiałów).
    3. Zespolenie należy wykonać pod lupą, przy użyciu narzędzi konwencjonalnych i mikrochirurgicznych.
    4. Upewnij się, że szczury są umieszczone na płycie grzewczej w temperaturze 37 °C i pod lampą grzewczą. Ustaw izotermiczną tablicę elektryczną zgodnie z potrzebami.
  2. Znieczulenie i przygotowanie zwierząt
    1. Znieczulić szczura inhalacją izofluranu o stężeniu 3% obj. w powietrzu w celu indukcji znieczulenia w pudełku dla gryzoni
    2. .
    3. Przenieś szczura na płytę rozgrzewającą i utrzymuj znieczulenie za pomocą maski na twarz z tym samym natężeniem przepływu 3%. Upewnij się, że znieczulenie zostało zakończone, szczypiąc ogon zwierzęcia.
    4. Ogolić przednią sierść, odpowiadającą strefie nacięcia laparotomii, strefie o szerokości ~3 cm od mieczykowatej do miednicy zwierzęcia, za pomocą elektrycznej maszynki do golenia.
    5. Ogol strefę o szerokości 3 cm na grzbiecie zwierzęcia, wyśrodkowaną na szyi zwierzęcia. Ten krok ułatwia monopolarne przewodzenie mocy.
    6. Rozpyl roztwór dezynfekujący na bazie alkoholu na miejsce operacji.

3. Chirurgia

  1. laparotomia
    1. Nałóż miejscowy środek antyseptyczny na bazie alkoholu na ogoloną skórę.
    2. Otwórz brzuch za pomocą skalpela z nacięciem skóry w linii środkowej od wyrostka mieczykowatego o długości około 3 cm. Otwórz powięź i otrzewną wzdłuż kresy białej za pomocą monopolarnego skalpela.
    3. Upewnij się, że jama otrzewnej jest otwarta na całej długości nacięcia skórnego.
      Odsłoń jamę otrzewnej za pomocą retraktora.
  2. Większa krzywa i rozwarstwienie rozworu przełykowego
    1. Wypreparuj większą krzywą żołądkową od połączenia żołądka gruczołowego i niegruczołowego do lewej strony przełyku brzusznego za pomocą nożyczek chirurgicznych.
    2. Stopniowo koaguluj naczynia żołądkowo-śledzionowe za pomocą monopolarnego skalpela, aby w pełni uwolnić wielką krzywą żołądkową do kąta He. Następnie odsłoń obszar rozworu przełykowego, przecinając cienkie więzadła.
    3. Wypreparuj prawą stronę przełyku brzusznego, zachowując lewą tętnicę żołądkową i nerw błędny, używając ręcznego rozwarstwienia.
  3. Konfekcja w woreczku żołądkowym
    1. Ablacja żołądka niegruczołowa
      1. Zastosuj zszywacz 35 mm (patrz tabela materiałów) na styku żołądka gruczołowego i niegruczołowego po lewej stronie połączenia żołądkowo-przełykowego. Upewnij się, że niegruczołowy żołądek znajduje się po prawej stronie zszywacza.
      2. Odpal pistolet, a następnie usuń wycięty niegruczołowy żołądek.
    2. Pustka żołądkowa
      1. Założyć drugi zszywacz za pomocą urządzenia piersiowo-brzusznego (TA) (3 - 3,5 mm) (patrz tabela materiałów), równolegle do pierwszego zszywania, po prawej stronie połączenia żołądkowo-przełykowego, aby wykluczyć antrum i część ciała żołądka.
      2. Upewnij się, że wynikiem dwóch linii zszywek jest worek żołądkowy o szerokości około 0,5 cm.
  4. OAGB (Organizacja Zarządzania Komputerami
    1. Pomiar jelita cienkiego
      1. Zlokalizuj kąt dwunastnicy. Bliższe jelito czcze to część jelita cienkiego znajdująca się pod przyśrodkową częścią okrężnicy; Jest to jedyna nieruchoma część jelita cienkiego u szczura.
      2. Za pomocą taśmy o długości 5 cm ręcznie odmierz 35 cm od kąta dwunastnicy. Następnie wykonaj enterotomię punktową po stronie antykrezkowej jelita czczego.
    2. Zespolenie gastrojejunalne
      1. Wykonaj punktową gastrotomię za pomocą skalpela monopolarnego po większej stronie krzywizny worka żołądkowego, dokładnie między dwiema poprzednimi liniami zszywek. Jeśli worek żołądkowy nie jest całkowicie pusty, wykonaj delikatny ręczny nacisk na worek żołądkowy, aby go opróżnić.
      2. Wykonaj zespolenie gastrojejunalne z boku za pomocą nieurazowych kleszczy i małego uchwytu na igłę
      3. .
      4. Rozpocznij szew od dwóch szwów kończynowych z polipropylenu izotaktycznego 7-0 (patrz tabela materiałów), zszywając dwie końcówki gastrotomii z kończynami enterotomii.
      5. Następnie, tymi samymi nitkami, które zostały użyte do wykonania dwóch szwów kończyny, należy wykonać dwa szwy biegowe z każdej strony zespolenia. W razie potrzeby przywróć zespolenie, aby ułatwić manewr. Zadbaj o jakość zespolenia, zakładając ścisłe szwy, co najmniej siedem lub osiem z każdej strony zespolenia.
      6. Weź surowiczę o szerokości 1 mm w każdym ściegu. Unikaj pobierania błony śluzowej w ściegu, aby delikatnie zanurzyć błonę śluzową jelit i żołądka wewnątrz szwu.
        UWAGA: Wynikiem tego jest zespolenie końcowo-boczne gastrojejunalne z kończyną żółciowo-trzustkową po lewej stronie i trawienną (AL)/CL po prawej. Upewnij się, że zespolenie jest przepuszczalne, delikatnie uciskając worek żołądkowy.
  5. Zamknięcie i natychmiastowa opieka
    1. Przepłukać jamę otrzewnową 0,9% roztworem NaCl i ręcznie ustawić narządy jamy brzusznej w ich fizjologicznych pozycjach.
    2. Zamknąć ścianę brzuszną jednym szwem biegowym z plecionego szwu poliestrowego 2-0 (patrz Tabela Materiałów) za pomocą klasycznego uchwytu na igły.
    3. Zamknąć skórę jednym ciągłym szwem z poliglaktyny 910 4-0 (patrz tabela materiałów).
    4. Wykonaj dwa wstrzyknięcia ciemieniowe lidokainy 1% z każdej strony laparotomii. Podawać całkowitą dawkę 1 ml/kg lidokainy 1% w rozcięgno mięśnia prostego brzucha.

4. Opieka pooperacyjna

  1. Wykonać wstrzyknięcie domięśniowe 20 000 jednostek/kg penicyliny G.
  2. Wykonać podskórne wstrzyknięcie 10 ml izotonicznego roztworu polijonowego potasu (2 g KCl/L, 4 g NaCl/L i 50 g glukozy/L). W tym wstrzyknięciu można mieszać z odpowiednimi lekami przeciwbólowymi, takimi jak buprenorfina (0,1 mg/kg) i meloksykam (2 mg/kg).
  3. Umieść szczury w oddzielnych klatkach ogrzanych przez lampę, aż w pełni się obudzą.
  4. Często badaj zwierzęta w celu zastosowania leczenia pooperacyjnego z odpowiednią przeciwbólem i nawodnieniem (izotoniczny roztwór polijonowy).
  5. Odpowiedni lek przeciwbólowy, buprenorfinę (0,1 mg/kg) i meloksykam (2 mg/kg), wstrzykiwać podskórnie od bezpośredniego okresu pooperacyjnego do 4. dnia, co 12 godzin.
  6. Trzymaj szczury ze swobodnym dostępem do wody w ciągu 1 dnia. W 2/3 dniu zapewnij im bezpłatny dostęp do diety płynnej. W 4 dniu zapewnij im ad libitum dostęp do normalnej diety.

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Wyniki

Niniejszy protokół jest powtarzalny i odwzorowuje procedurę OAGB stosowaną u ludzi. Bezpieczeństwo tego protokołu jest potwierdzone w opublikowanych danych23,24, przy niskim wskaźniku śmiertelności wynoszącym od 12% do 25%. Protokół ten był stosowany przez różnych chirurgów w zespole badawczym, uzyskując podobny wskaźnik śmiertelności.

Niemniej jednak nauka chirurgii gry...

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Dyskusja

Protokół ten ma tę zaletę, że naśladuje OAGB praktykowany rutynowo u ludzi. Jego bezpieczeństwo i odtwarzalność u szczurów wykazano w wynikach klinicznych i metabolicznych.

Zespolenie w tym protokole stanowi trudność techniczną i jest głównym krokiem krytycznym. W tym celu konieczne jest użycie specjalnych narzędzi mikrochirurgicznych, takich jak uchwyt na igłę do mikrochirurgii lub szkła powiększające. Aby uzyskać zespolenie hermetyczne bez zwężenia, konieczne jest wykonanie co najmniej siedm...

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Oświadczenia

Autorzy nie mają nic do ujawnienia.

Podziękowania

Autorzy chcieliby podziękować Jeanowi Pierre'owi Marmuse za jego nieustanną pomoc i wsparcie; Eglantine Voitellier, Jean-Baptiste Cavin i Houneyda El Jindi za ustawienie modeli i ilustracji; Anne-Charlotte Jarry i Andrei Goncalves za pomoc przy tworzeniu filmów; Sara J. Zaat za redakcję tekstu w języku angielskim. Matthieu A. Siebert i Lara Ribeiro-Parenti byli sponsorami Fondation pour la recherché médicale (FRM) i Association française de chirurgie (AFC).

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Materiały

Lista materiałów użytych w tym artykule
NazwaFirmaNumer katalogowyKomentarze
Dieta wysokotłuszczowa, 45 % tłuszczu Genestil, Royaucourt, FrancjaC 1090-45http://www.genestil.com/
Metzenbaum ScissorsWorld Precision instrument, Sarasota, USA501739https://www.wpi-europe.com
Dumont TweezersWorld Precision instrument, Sarasota, US14098https://www.wpi-europe.com
Iris ForcepsWorld Precision instrument, Sarasota, US15915https://www.wpi-europe.com
Iris Scissors 10cmWorld Precision instrument, Sarasota, US14218
https://www.wpi-europe.com Uchwyt na igłęInstrument World Precision, Sarasota, US14110https://www.wpi-europe.com
Samozatrzymujący się retraktorAlm Instrument World Precision, Sarasota, US14240https://www.wpi-europe.com
Kleszcze hemostatyczne Baby Mixter,  PrzyrządRight Angle World Precision, Sarasota, US501240https://www.wpi-europe.com
Sterylne waciki z włókninyLCH Medical Products, Paryż, FrancjaSN40-0755www.lch-medical.com
Lupa lornetkowa Galileusz 2,5xPrzyrząd World Precision, Sarasota, USA504056https://www.wpi-europe.com
Nici trawienne: Polipropylen izotaktyczny, monofil Prolene 7-0& nbsp;Ethicon, Issy les  Moulineaux, FrancjaEH7813Ewww.ethicon.com
Gwint ciemieniowy : Pleciony poliester powlekany Ti-Cron 2-0Covidien, Mannsfield, MA, USA3003-52www.covidien.com
Gwint skórny : Poliglaktyna, VICRYL RAPIDE 4-0 Ethicon, Issy les  Moulineaux, FrancjaVR3100www.ethicon.com
Zszywacz ETS-Flex 35 mmEthicon, Issy les  Moulineaux, FrancjaATS45www.ethicon.com
Zszywacze wielokrotnego ładowania ProximateEthicon, Issy les  Moulineaux, FrancjaXR30Vwww.ethicon.com
TA-DST 30mm-3.5mmEthicon, Issy les  Moulineaux, FrancjaTX30Bwww.ethicon.com
Alkohol 5% BetadineMEDA Pharma, Merignac, Francja41085www.medapharma.fr
LIDOKAINA AGUETTANT 20 mg/mlLABORATOIRE AGUETTANT, Lyon, Francja3400940000000.0https://www.aguettant.fr
Penicylina G 5MUIPanpharma, Luitre, Francja3.40E+12https://www.panpharma.eu/fr
Bionolit G5 ; Chlorek sodu 0,4%, glukoza 5%, chlorek potasu 0,2%)Baxter, Maurepas, Francja
Dieta płynnaGenestil, Royaucourt, FrancjaC-0200Thttp://www.genestil.com/
Isoflurane 100%Centravet, Plancoet, FrancjaISO007http://cooperative.centravet.net

Bibliografia

  1. Ogden, C. L., et al. Prevalence of overweight and obesity in the United States, 1999-2004. Journal of American Medical Association. 295, 1549-1555 (2006).
  2. Buchwald, H. Consensus Conference Panel. Consensus conference statement bariatric surgery for morbid obesity: health implications for patients, health professionals, and third-party payers. Surgery for Obesity and Related Disease. 1, 371-381 (2005).
  3. Mingrone, G., et al. Bariatric-metabolic surgery versus conventional medical treatment in obese patients with type 2 diabetes: 5 year follow-up of an open-label, single-centre, randomised controlled trial. Lancet. 386, 964-973 (2015).
  4. Nguyen, N. T., Varela, J. E. Bariatric surgery for obesity and metabolic disorders: state of the art. Nature Reviews. Gastroenterology & Hepatology. 14, 160-169 (2017).
  5. Rutledge, R. The mini-gastric bypass: experience with the first 1,274 cases. Obesity Surgery. 11, 276-280 (2001).
  6. Lee, W. J., et al. Laparoscopic Roux-en-Y vs. mini-gastric bypass for the treatment of morbid obesity: a 10-year experience. Obesity Surgery. 22, 1827-1834 (2012).
  7. Victorzon, M. Single-anastomosis gastric bypass: better, faster, and safer? Scandinavia Journal of Surgery. 104, 48-53 (2015).
  8. Magouliotis, D. E., Tasiopoulou, V. S., Tzovaras, G. One anastomosis gastric bypass versus Roux-en-Y gastric bypass for morbid obesity: a meta-analysis. Clinical Obesity. 8, 159-169 (2018).
  9. Seyfried, F., le Roux, C. W., Bueter, M. Lessons learned from gastric bypass operations in rats. Obesity Facts. 4 Suppl 1, 3-12 (2011).
  10. Wang, F. G., Yu, Z. P., Yan, W. M., Yan, M., Song, M. M. Comparison of safety and effectiveness between laparoscopic mini-gastric bypass and laparoscopic sleeve gastrectomy: A meta-analysis and systematic review. Medicine (Baltimore). 96, e8924(2017).
  11. Hong, J., Park, S., Menzo, E. L., Rosenthal, R. Midterm outcomes of laparoscopic sleeve gastrectomy as a stand-alone procedure in super-obese patients. Surgery for Obesity and Related Disease. 14 (3), 297-303 (2017).
  12. Abellan, I., et al. The influence of the percentage of the common limb in weight loss and nutritional alterations after laparoscopic gastric bypass. Surgery for Obesity Related Disease. 10, 829-833 (2014).
  13. Nora, M., Morais, T., Almeida, R., Guimarães, M., Monteiro, M. P. Should Roux-en-Y gastric bypass biliopancreatic limb length be tailored to achieve improved diabetes outcomes? Medicine (Baltimore). 96, e8859(2017).
  14. Madan, A. K., Harper, J. L., Tichansky, D. S. Techniques of laparoscopic gastric bypass: on-line survey of American Society for Bariatric Surgery practicing surgeons. Surgery for Obesity and Related Disease. 4, 166-173 (2008).
  15. Himpens, J. M., Vilallonga, R., Cadière, G. B., Leman, G. Metabolic consequences of the incorporation of a Roux limb in an omega loop (mini) gastric bypass: evaluation by a glucose tolerance test at mid-term follow-up. Surgical Endoscopy. 30, 2935-2945 (2016).
  16. Parmar, C. D., et al. Mini Gastric Bypass: first report of 125 consecutive cases from United Kingdom. Clinical Obesity. 6, 61-67 (2016).
  17. Chevallier, J. M., et al. One thousand single anastomosis (omega loop) gastric bypasses to treat morbid obesity in a 7-year period: outcomes show few complications and good efficacy. Obesity Surgery. 25, 951-958 (2015).
  18. Kular, K. S., Manchanda, N., Rutledge, R. A 6-year experience with 1,054 mini-gastric bypasses-first study from Indian subcontinent. Obesity Surgery. 24, 1430-1435 (2014).
  19. Tacchino, R. M. Bowel length: measurement, predictors, and impact on bariatric and metabolic surgery. Surgery for Obesity Related Disease. 11, 328-334 (2015).
  20. Bruinsma, B. G., Uygun, K., Yarmush, M. L., Saeidi, N. Surgical models of Roux-en-Y gastric bypass surgery and sleeve gastrectomy in rats and mice. Nature Protocols. 10, 495-507 (2015).
  21. Jeppsson, B., Mangell, P., Thorlacius, H. Use of probiotics as prophylaxis for postoperative infections. Nutrients. 3, 604-612 (2011).
  22. Cavin, J. B., et al. Differences in Alimentary Glucose Absorption and Intestinal Disposal of Blood Glucose After Roux-en-Y Gastric Bypass vs Sleeve Gastrectomy. Gastroenterology. 150, 454-464 (2016).
  23. Bruzzi, M., et al. Long-Term Evaluation of Biliary Reflux After Experimental One-Anastomosis Gastric Bypass in Rats. Obesity Surgery. 27, 1119-1122 (2017).
  24. Cavin, J. B., et al. Malabsorption and intestinal adaptation after one anastomosis gastric bypass compared with Roux-en-Y gastric bypass in rats. American Journal of Physiology-Gastrointestinal and Liver Physiology. 311, G492-G500 (2016).
  25. Jacob, P. S., et al. Isocaloric intake of a high-fat diet promotes insulin resistance and inflammation in Wistar rats. Cell Biochemistry and Function. 31, 244-253 (2013).

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Przedruki i uprawnienia

Tagi

Model szczurzy OAGBprotokół chirurgii bariatrycznejtworzenie woreczka żołądkowegotechnika gastrojejunostomiiodcinek biliopankreatycznydługość wspólnego odcinkadieta wysokotłuszczowaszczury Wistarzastosowanie zszywacza chirurgicznego