$$\rightleftharpoonup{xx}$$
$$\longleftharp{xx}$$,
$$\longrightharp{xx}$$,
Wszystkie prace wykonane w ramach tego badania zostały podjęte zgodnie z wytycznymi etycznymi określonymi w brytyjskiej ustawie o zwierzętach (procedury naukowe) z 1986 r. i dyrektywie Parlamentu Europejskiego 2010/63/UE w sprawie ochrony zwierząt wykorzystywanych do celów naukowych. Eksperymenty zostały zatwierdzone przez Ministerstwo Spraw Wewnętrznych (mysz: PPL 30/2967 i PFDAAF77F, świnka morska: PPL PF75E5F7F) oraz instytucjonalne komisje rewizyjne na Uniwersytecie w Birmingham (mysz) i King's College London (świnka morska). Szczegółowe metody zbierania surowych danych, które zostały tutaj przeanalizowane, można znaleźć w naszych poprzednich publikacjach5,6,14,19.
Główny interfejs, z którego sterowany jest ElectroMap, jest pokazany w Rysunek 1A. Kroki niezbędne do analizy zestawu danych są kontrolowane głównie przez przyciski Załaduj obrazy, Przetwarzaj obrazy i Utwórz mapy i są wyróżnione odpowiednio na zielono, niebiesko i czerwono w Rysunek 1A. Rysunek 1B-D przedstawia operacje, które są wykonywane po wybraniu każdego z tych przycisków. Polecenie Wczytaj obrazy stosuje opcje progowania obrazów wybrane przez użytkownika (Rysunek 1B), podczas gdy narzędzie Przetwarzaj obrazy (Rysunek 1C) stosuje filtrowanie i korekcję linii bazowej. Na koniec Produce Maps najpierw uśrednia dane zgodnie z oknem czasowym i ustawieniami segmentacji (chyba że wybrana jest segmentacja pojedynczego uderzenia), a następnie przeprowadzi analizy opisane powyżej.
Kluczowym aspektem ElectroMap jest jego elastyczność w odniesieniu do typu kamery i modelu eksperymentalnego. Ma to kluczowe znaczenie dla użyteczności oprogramowania do mapowania optycznego ze względu na odrębne cechy EP serca i anatomiczne, które istnieją między powszechnie stosowanymi modelami. Rysunek 2A na przykład pokazuje morfologię potencjału czynnościowego mysich przedsionków w porównaniu z komorą świnki morskiej, zarejestrowaną przy użyciu barwników wrażliwych na napięcie, jak wcześniej podano6,14. Pomimo wyraźnego kształtu potencjału czynnościowego i zastosowania dwóch oddzielnych kamer do mapowania optycznego o różnej liczbie klatek na sekundę i rozmiarach pikseli, ElectroMap może być wykorzystany do skutecznej analizy obu zestawów danych. Wymaga to jednak modyfikacji niektórych parametrów w interfejsie użytkownika (Rysunek 2B). Należy zauważyć, że przedłużony potencjał czynnościowy świnki morskiej wymaga większego okna czasowego. Dodatkowo, aby zapobiec niefizjologicznej modyfikacji optycznie zarejestrowanych sygnałów przez korekcję linii podstawowej cylindra, należy zwiększyć jej długość w czasie, tak aby była większa niż przebieg czasowy potencjału czynnościowego.
ElectroMap oferuje wiele opcji przetwarzania, które pomagają poprawić SNR sygnałów rejestrowanych optycznie, które mogą być wymagane do skutecznego odzyskania parametrów EP. Przykładem jest automatyczne grupowe uśrednianie szczytów po segmentacji danych. Rysunek 3A-C pokazuje, w jaki sposób zastosowanie uśredniania zespołowego, zamiast innych metod, może poprawić SNR z izolowanych mysich lewych przedsionków (n = 13). Zmniejsza to niejednorodność pomiarów i prawdopodobieństwo niepowodzenia analizy (Rysunek 3D). Na przykład zmiana częstotliwości stymulacji z 3 Hz na 10 Hz nie zmieniła APD50, gdy nie przeprowadza się uśredniania zespołu, ale > spadek APD50 przy 10 Hz, gdy mierzono go na podstawie danych uśrednionych dla zespołu (Rysunek 3E).
Rysunek 4 pokazuje skuteczność i użyteczność automatycznego wykrywania częstotliwości stymulacji i segmentacji oferowanego przez ElectroMap. W tym przypadku lewe przedsionki myszy (n = 5) były poruszane w tempie cyklu o długości 120 ms, a długość cyklu była stopniowo skracana o 10 ms, aż osiągnęła 50 ms. ElectroMap automatycznie zidentyfikował długość cyklu stymulacji i odpowiednio pogrupował uśrednione piki tkanek (Rysunek 4A). Udało się to osiągnąć z dużą dokładnością we wszystkich zestawach danych (Rysunek 4B). Zautomatyzowana segmentacja danych pozwoliła na prostą i wysokoprzepustową analizę spowolnienia prędkości przewodzenia wraz ze zwiększoną częstotliwością stymulacji/skróconą długością cyklu (Rysunek 4C,D). Jednocześnie skrócono APD50 (Rysunek 4E) i interwał rozkurczowy (Rysunek 4F). Amplituda optycznie mierzonych pików zmniejszyła się, a czas do osiągnięcia piku wydłużył się (Rysunek 4G,H). Są to ponownie oczekiwane reakcje restytucyjne w tkance serca29,30, a zastosowanie ElectroMap może zatem pomóc w wyjaśnieniu zmian w odpowiedzi na częstotliwość stymulacji w obecności środków farmakologicznych, modyfikacji genetycznych lub stanów chorobowych.
Ważną kwestią przy korzystaniu z oprogramowania takiego jak ElectroMap jest obecność artefaktów w danych źródłowych. Rysunek 5, na przykład pokazuje, że artefakty ruchu (zniekształcenie optycznie zarejestrowanego sygnału przez ruch tkanki) mogą uniemożliwić dokładne pomiary aktywacji, a zwłaszcza repolaryzacji w ElectroMap. Zobacz Dyskusja, aby uzyskać więcej informacji.

Rysunek 1: Główne etapy przetwarzania ElectroMap. (A) Graficzny interfejs użytkownika ElectroMap, z podświetlonymi przyciskami Załaduj obrazy (zielony), Przetwarzaj obrazy (niebieski) i Utwórz mapy (czerwony). (B) Opcje progowania obrazu, które można zastosować po wybraniu opcji Wczytaj obrazy. (C) Opcje przetwarzania sygnału dostępne dla użytkownika obejmują filtrowanie przestrzenne i czasowe oraz korekcję linii bazowej i można je zastosować do stosu obrazów, naciskając przycisk Przetwarzaj obrazy. (D) Uśrednianie zespołu i kwantyfikacja parametrów (pokazany pomiar APD), które są aktywowane przez wybranie opcji Twórz mapy. Rysunek zaczerpnięty z O'Shea et al., 201913. Kliknij tutaj, aby zobaczyć większą wersję tego rysunku.

Rysunek 2: Analiza danych dotyczących myszy i świnek morskich za pomocą ElectroMap. (A) Optycznie zarejestrowany potencjał czynnościowy z przedsionków myszy i komór świnki morskiej, wraz z pierwszym (df/dt), jak i drugim (d2f/dt2) pochodnym tych sygnałów. Podkreślono różne definicje czasów aktywacji i repolaryzacji, które można zastosować w ElectroMap. (B) Zrzuty ekranu przedstawiające ustawienia przetwarzania obrazu i sygnału wykorzystywane w interfejsie ElectroMaps. Czerwone pola podświetlają ustawienia, które wymagały modyfikacji między analizami danych myszy i świnki morskiej. Rysunek zaczerpnięty z O'Shea et al., 201913. Kliknij tutaj, aby zobaczyć większą wersję tego rysunku.

Rysunek 3: Uśrednianie zespołów w celu rozwiązania zmian APD. (A) Mapa APD50 i przykładowy sygnał pojedynczego piksela z potencjałów czynnościowych pojedynczych uderzeń. (B) Mapa APD50 i przykładowy sygnał pojedynczego piksela z optycznych potencjałów czynnościowych generowany przez zespołowe uśrednianie 10 kolejnych uderzeń (metoda szczytowa). (C) SNR pojedynczego uderzenia w porównaniu z 10 uśrednionymi sygnałami. (D) Niejednorodność APD50 (i) i liczba niepowodzeń pomiaru (ii) w funkcji SNR dla map APD50 z pojedynczym uderzeniem i 10 uderzeniami uśrednionych. (E) APD50 przy częstotliwości stymulacji 3 i 10 Hz, mierzonej na podstawie map pojedynczych uderzeń i 10 uderzeń. (Dane przedstawione jako średnia ± błędem standardowym, n = 13 lewych przedsionków, ****p < 0,001 za pomocą sparowanego testu t-Studenta). Kliknij tutaj, aby zobaczyć większą wersję tego rysunku.

Ryc. 4: Wykorzystanie oprogramowania ElectroMap do badania odpowiedzi częstotliwościowych stymulacji w tkance serca. (A) Przykładowy zrzut ekranu ElectroMap przedstawiający stymulację, rozpoznawanie częstotliwości i segmentację. (B) Porównanie znanych i zmierzonych przez ElectroMap długości cykli stymulacji. (C) Mapy aktywacji przy długości cyklu stymulacji 120 ms i 60 ms. (D-H) Zgrupowane dane prędkości przewodzenia (D), APD50 (E), interwału rozkurczowego (F), amplitudy (G) i czasu do szczytu (H) w funkcji długości cyklu stymulacji zmniejszającej się ze 120 ms do 60 ms w krokach co 10 ms. (Dane przedstawione jako średnia ± błąd standardowy, n = 5 lewe przedsionki) Kliknij tutaj, aby zobaczyć większą wersję tego rysunku.

Rysunek 5: Wpływ artefaktów ruchu. (A) Mapa APD50. (B) Mapa aktywacji. (C) Przykładowe sygnały z miejsc oznaczonych (krzyżykami) na mapach APD i aktywacji. W obszarze tkanki oznaczonej czerwonym krzyżykiem skurcz nie został pomyślnie rozprzężony, co zniekształciło mierzony sygnał optyczny. Kliknij tutaj, aby zobaczyć większą wersję tego rysunku.