Subskrypcja JoVE jest wymagana do oglądania tego materiału. Zaloguj się lub rozpocznij bezpłatny okres próbny.

Artykuł metodologiczny

Wyciszanie iskry: edycja genomu CRISPR/Cas9 u ryb o słabym natężeniu elektrycznym

9.5K wyświetleń

⸱

DOI:

10.3791/60253

⸱

27 października 2019

 ,  ,  ,  , 

W tym artykule

Podsumowanie

Tutaj przedstawiono protokół do produkcji i hodowli ryb elektrycznych z nokautem genomu CRISPR/Cas9. Szczegółowo przedstawiono wymagane wymagania z zakresu biologii molekularnej, hodowli i hodowli zarówno dla żywiciela, jak i mormyryda, a także techniki iniekcji w celu wytworzenia larw indelu F0 indukowanych przez Cas9.

Streszczenie

Elektrorecepcja i elektrogeneza zmieniły się w ewolucyjnej historii kręgowców. Istnieje uderzający stopień konwergencji w tych niezależnie wyprowadzonych fenotypach, które mają wspólną architekturę genetyczną. Być może najlepszym tego przykładem są liczne zbieżne cechy gymnotiformes i mormyridów, dwóch bogatych gatunkowo kladów teleostowych, które wytwarzają i wykrywają słabe pola elektryczne i nazywane są rybami słabo elektrycznymi. W ciągu 50 lat od odkrycia, że słabo elektryczne ryby wykorzystują elektryczność do wyczuwania otoczenia i komunikowania się, rosnąca społeczność naukowców uzyskała ogromny wgląd w ewolucję rozwoju, systemy i obwody, neurobiologię, fizjologię komórkową, ekologię, biologię ewolucyjną i zachowanie. Ostatnio nastąpił wzrost zasobów genomowych ryb elektrycznych. Wykorzystanie tych zasobów umożliwiło już uzyskanie ważnych informacji na temat związku między genotypem a fenotypem u tych gatunków. Główną przeszkodą w integracji danych genomicznych z danymi fenotypowymi ryb o słabym natężeniu elektrycznym jest obecny brak funkcjonalnych narzędzi genomicznych. Przedstawiamy tutaj pełny protokół przeprowadzania mutagenezy CRISPR/Cas9, który wykorzystuje endogenne mechanizmy naprawy DNA u ryb o słabym natężeniu elektrycznym. Wykazaliśmy, że protokół ten jest równie skuteczny zarówno w przypadku gatunku mormyrydów Brienomyrus brachyistius, jak i gimnastyki Brachyhypopomus gauderio, wykorzystując CRISPR / Cas9 do celowania w indele i mutacje punktowe w pierwszym eksonie genu kanału sodowego scn4aa. Korzystając z tego protokołu, uzyskano zarodki obu gatunków i poddano je genotypowaniu, aby potwierdzić, że przewidywane mutacje w pierwszym eksonie kanału sodowego scn4aa były obecne. Fenotyp sukcesu nokautu został potwierdzony nagraniami wykazującymi zmniejszone amplitudy wyładowań elektrycznych narządów w porównaniu z niewstrzykniętymi kontrolami o dopasowanej wielkości.

Wprowadzenie

Elektrorecepcja i elektrogeneza zmieniły się w ewolucyjnej historii kręgowców. Dwie linie ryb teleostowych, osteoglossiformes i siluriformes, rozwijały elektrorecepcję równolegle, a pięć linii teleostów (gymnotiformes, mormyrids i rodzaje Astroscopus, Malapterurus i Synodontis) ewoluowało równolegle. Istnieje uderzający stopień zbieżności w tych niezależnie wywodzących się fenotypach, które mają wspólną architekturę genetyczną1,2,3.

To jest być może najlepszym przykładem liczne zbieżne cechy gymnotiform i mormyridów, dwóc....

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Protokół

Wszystkie opisane tutaj metody zostały zatwierdzone przez Instytucjonalny Komitet ds. Opieki i Użytkowania Zwierząt (IACUC) Uniwersytetu Stanowego Michigan.

1. Wybór celów sgRNA

UWAGA: W kroku 1.1 przewidziano protokół do ręcznego projektowania sgRNA. Zostało to wykorzystane do wyboru celu scn4aa. W celu ułatwienia tego procesu (krok 1.2) udostępniono dodatkowy protokół z wykorzystaniem portalu internetowego EFISHGENOMICS. Zaleca się, aby użytkownicy wybrali protokół 1.2, który zawiera kilka automatycznych "kontroli", aby zapewnić sukces w projektowaniu sgRNA dla niestandardowych celów.

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Wyniki

Miejsca docelowe sgRNA zidentyfikowano w eksonie 1 genu scn4aa u obu gatunków, B. gauderio i B. brachyistius, zgodnie z opisem w sekcji 1. sgRNA wygenerowano zgodnie z opisem w sekcji 2. Po pomyślnym wyborze i syntezie sgRNA (Rycyna 1), przetestowano cięcie in vitro (Rycina 2). Następnie wybrano sgRNA wykazujące zdolność do cięcia in vitro do mikroiniekcji pojedynczych komórek.

Dorosłe ryby poddano kondycjon.......

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Dyskusja

Bogactwo fenotypowe ryb o słabym natężeniu elektryczności, wraz z niedawnym rozpowszechnieniem zasobów genomicznych, motywuje silne zapotrzebowanie na funkcjonalne narzędzia genomiczne w modelu ryb o słabym natężeniu elektryczności. System ten jest szczególnie atrakcyjny ze względu na zbieżną ewolucję licznych cech fenotypowych w równoległych liniach ryb, które można łatwo przechowywać w laboratorium.

Opisany tutaj protokół demonstruje skuteczność techniki CRISPR/Cas9 w liniach słabo elektrycz.......

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Oświadczenia

Autorzy nie mają nic do ujawnienia.

Podziękowania

Autorzy dziękują bohaterskim wysiłkom Moniki Lucas, Katherine Shaw, Ryana Taylora, Jareda Thompsona, Nicole Robichaud i Hope Healey za pomoc w hodowli ryb, zbieraniu danych i wczesnym rozwoju protokołu. Chcielibyśmy również podziękować trzem recenzentom za sugestie dotyczące manuskryptu. Uważamy, że produkt końcowy jest lepszej jakości po ustosunkowaniu się do ich uwag. Praca ta została sfinansowana dzięki wsparciu Narodowej Fundacji Nauki #1644965 i #1455405 dla JRG oraz grantu DG Rady ds. Nauk Przyrodniczych i Inżynierii (Natural Sciences and Engineering Research Council) dla VLS.

....

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Materiały

Lista materiałów użytych w tym artykule
NazwaFirmaNumer katalogowyKomentarze
20 mg / ml glikogen klasy RNAThermo ScientificR0551
50 pz drabinka DNANEBN3236L
Kapilara ze szkła borokrzemianowego z włóknemSutter InstrumentBF100-58-10(średnica zewnętrzna 1,0 mm, średnica wewnętrzna 0,58 mm, długość 10 cm)
Białko Cas9 z NLS; 1 mg / mlPNA BiologyCP01
Dneasy Blood & Zestaw chusteczekhigienicznych Qiagen69506
Eppendorf FemptoJet 4i MikrowtryskiwaczFisher ScientificE5252000021
Eppendorf Microloader Końcówki do pipetFisher Scientific
HamiltonFisher Scientific14-824-654określana w protokole jako "precyzyjna szklana strzykawka"
KimwipeFisher Scientific06-666określany jako "delikatne czyszczenie zadaniowe" w protokole
MEGAscript T7 Zestaw do transkrypcjiInvitrogenAM1334
NEBuffer 3 NEBB7003Sużywany do testu rozszczepienia in vitro
Zestaw DNA OneTaqNEBM0480L
OvaprimSyndel USAhttps://www.syndel.com/ovaprim-ovammmlu010.htmlokreślany jako "czynnik tarłowy" w protokole
ParafilmFisher ScientificS37440określany jako "termoplastyczny" w protokole
Ściągacz do pipetWPISU-P97marki
sutter Zestaw do oczyszczania QIAquick PCRQiagen28106
Igła wielokrotnego użytku - wymaga dostosowaniaFisher Scientific7803-02Dostosuj do długości 0,7 cala; styl punktowy 4 i kąt 25
Polimeraza DNA T4NEBM0203LUżywaj z 10x buforem NEB, który jest dołączony
narzędzi pokrytych teflonembonefolder.comT-SPATULA4PIECEokreślanych w protokole jako "politetrafluoroeten"
Strzykawka 10289651 do

Bibliografia

  1. Gallant, J. R., et al. Genomic basis for the convergent evolution of electric organs. Science. 344 (6191), 1522-1525 (2014).
  2. Zakon, H. H., Lu, Y., Zwickl, D. J., Hillis, D. M.

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Przedruki i uprawnienia

Przeglądaj więcej artykułów

Edycja genówtechnika mikroiniekcjiwyładowanie organu elektrycznegogen kanału sodowegogenomika porównawczawalidacja funkcjonalnainiekcja zarodkówzarodki mutanty