Subskrypcja JoVE jest wymagana do oglądania tego materiału. Zaloguj się lub rozpocznij bezpłatny okres próbny.

Artykuł metodologiczny

Dozymetria do napromieniania komórek przy użyciu aparatury rentgenowskiej o ortonapięciu (40-300 kV)

4.9K wyświetleń

⸱

DOI:

10.3791/61645

⸱

20 lutego 2021

 ,  ,  ,  , 
1Department of RAdiobiology and Regenerative MEDicine (SERAMED), Laboratory of Radiobiology of Accidental Exposures (LRAcc), Institute for Radiological Protection and Nuclear Safety (IRSN), 2Department of RAdiobiology and Regenerative MEDicine (SERAMED), Laboratory of MEDical Radiobialogy (LRMed), Institute for Radiological Protection and Nuclear Safety (IRSN), 3Department of DOSimetry (SDOS), Ionizing Radiation Dosimetry Laboratory (LDRI), Institute for Radiological Protection and Nuclear Safety (IRSN)

W tym artykule

Podsumowanie

Ten dokument opisuje nowy protokół dozymetryczny dla napromieniania komórek za pomocą niskoenergetycznego sprzętu rentgenowskiego. Pomiary wykonywane są w warunkach w miarę możliwości symulujących rzeczywiste warunki napromieniowania komórek.

Streszczenie

Znaczenie protokołów i standardów dozymetrycznych dla badań radiobiologicznych jest oczywiste. Zaproponowano kilka protokołów określania dawki przy użyciu niskoenergetycznych urządzeń rentgenowskich, ale w zależności od konfiguracji napromieniowania, próbek, materiałów lub jakości wiązki, czasami trudno jest określić, który protokół jest najbardziej odpowiedni do zastosowania. W związku z tym proponujemy protokół dozymetryczny do napromieniania komórek przy użyciu niskoenergetycznego aparatu rentgenowskiego. Celem tej metody jest oszacowanie dawki na poziomie monowarstwy komórki, tak aby była ona jak najbardziej zbliżona do rzeczywistych warunków napromieniania komórek. Poszczególne etapy protokołu są następujące: określenie parametrów napromieniowania (wysokie napięcie, intensywność, pojemnik ogniwa itp.), określenie wskaźnika jakości wiązki (para warstw wysokiego napięcia - połowa wartości), pomiar dawki za pomocą komory jonizacyjnej skalibrowanej w warunkach kermy powietrznej, kwantyfikacja tłumienia i rozpraszania pożywki do hodowli komórkowej za pomocą folii radiochromowych EBT3, i określenie wielkości dawki na poziomie komórkowym. Metodologię tę należy przeprowadzić dla każdej nowej konfiguracji napromieniania komórek, ponieważ modyfikacja tylko jednego parametru może mieć duży wpływ na rzeczywiste osadzanie dawki na poziomie monowarstwy ogniwa, szczególnie w przypadku promieniowania rentgenowskiego o niskiej energii.

Wprowadzenie

Celem radiobiologii jest ustalenie powiązań między dostarczoną dawką a efektami biologicznymi; dozymetria jest kluczowym aspektem w projektowaniu eksperymentów radiobiologicznych. Od ponad 30 lat podkreśla się znaczenie standardów dozymetrycznych i harmonizację praktyk1,2,3,4,5. Aby ustalić odniesienie do dawki dawki, istnieje kilka protokołów6,7,8,9,10; jednakże, jak pokazują Peixoto i Andreo11 , mogą występować różnice do 7% w zależności od ilości dozymetrycznej użytej do określenia dawki dawki. Co więcej, nawet jeśli istnieją protokoły, czasami trudno jest określić, który protokół jest najbardziej odpowiedni dla konkretnego zastosowania, jeśli w ogóle, ponieważ szybkość dawki dla komórek zależy od takich parametrów, jak na przykład pojemnik na komórki, ilość pożywki do hodowli komórkowych lub jakość wiązki. Rozpraszanie i rozpraszanie wsteczne dla tego rodzaju napromieniowania jest również bardzo ważnym parametrem, który należy wziąć pod uwagę. Rzeczywiście, dla promieniowania rentgenowskiego o niskiej i średniej energii, w protokole referencyjnym AAPM TG-6110, dawka pochłonięta w wodzie jest mierzona na powierzchni fantomu wodnego. Biorąc pod uwagę bardzo specyficzne warunki napromieniania komórek, mała objętość pożywki do hodowli komórkowych otoczona powietrzem jest bliższa warunkom kerma niż te określone dla dawki pochłoniętej z dużym fantomem równoważnym z wodą, jak w protokole TG-61. W związku z tym zdecydowaliśmy się użyć kermy w wodzie jako ilości dozymetrycznej w celach informacyjnych, a nie dawki wchłoniętej w wodzie. W związku z tym proponujemy nowe podejście, aby zapewnić lepsze określenie rzeczywistej dawki dostarczanej do komórek.

Ponadto, kolejnym kluczowym aspektem dla badań radiobiologicznych jest pełne raportowanie metod i protokołów stosowanych do napromieniania, aby móc odtwarzać, interpretować i porównywać wyniki eksperymentalne. W 2016 roku Pedersen i wsp.12 zwrócili uwagę na niewystarczające raportowanie dozymetrii w przedklinicznych badaniach radiobiologicznych. Większe niedawne badanie przeprowadzone przez Draeger et al.13 podkreśliło, że chociaż niektóre parametry dozymetryczne, takie jak dawka, energia lub rodzaj źródła, są raportowane, brakuje dużej części parametrów fizycznych i dozymetrycznych, które są niezbędne do prawidłowego odtworzenia warunków napromieniowania. Ten obszerny przegląd, obejmujący ponad 1000 publikacji obejmujących ostatnie 20 lat, wykazuje znaczny brak raportowania warunków fizycznych i dozymetrycznych w badaniach radiobiologicznych. W związku z tym pełny opis protokołu i metody stosowanej w badaniach radiobiologicznych jest obowiązkowy w celu przeprowadzenia solidnych i powtarzalnych eksperymentów.

Biorąc pod uwagę te różne aspekty, dla eksperymentów radiobiologicznych przeprowadzanych w IRSN (Instytut Ochrony przed Promieniowaniem i Bezpieczeństwa Jądrowego), wdrożono rygorystyczny protokół napromieniania komórek w obiekcie ortonapięciowym. Ten protokół dozymetryczny został opracowany w celu jak największej symulacji rzeczywistych warunków napromieniania komórek, a tym samym określenia rzeczywistej dawki dostarczanej do komórek. W tym celu wymieniono wszystkie parametry napromieniowania, a wskaźnik jakości wiązki oceniono poprzez pomiar warstwy o połowie wartości (HVL), dla której dokonano pewnych adaptacji, ponieważ standardowe zalecenia z protokołu AAPM 10 nie mogą być przestrzegane. Pomiar bezwzględnej mocy dawki przeprowadzono następnie w komorze jonizacyjnej wewnątrz pojemnika komórkowego używanego do naświetlania komórek, a tłumienie i rozpraszanie pożywki do hodowli komórkowych również określono ilościowo za pomocą filmów radiochromowych EBT3. Ze względu na to, że modyfikacja tylko jednego parametru protokołu może mieć znaczący wpływ na oszacowanie dawki, dla każdej konfiguracji napromieniania komórek przeprowadza się dedykowaną dozymetrię. Ponadto wartość HVL musi być obliczona dla każdej kombinacji napięcie-filtr. W niniejszej pracy zastosowano napięcie 220 kV, natężenie 3 mA oraz filtrację wewnętrzną i dodatkową odpowiednio 0,8 mm i 0,15 mm berylu i miedzi. Wybraną konfigurację napromieniania komórek umieszcza się w kolbie T25, gdzie komórki napromieniowano 5 ml pożywki do hodowli komórkowych.

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Protokół

1. Platforma do naświetlania i wyznaczanie parametrów naświetlania

  1. Należy użyć platformy do napromieniania dostarczającej promieni rentgenowskich o niskiej lub średniej energii. W celu zapewnienia rzetelności i powtarzalności eksperymentu radiobiologicznego należy określić następujące parametry: napięcie wysokiego napięcia, natężenie, filtrację (wbudowaną i dodatkową), warstwę połowiczną (HVL), energię efektywną, detektor użyty do pomiarów dosymetrycznych, odległość od źródła do próbki (SSD), pole napromieniania (kształt, rozmiar, geometria), wielkość dosymetryczną, metodę dosymetrii, moc dawki, pojemnik na komórki oraz ilość pożywki hodowlanej. Wszystkie parametry zastosowane w niniejszym protokole zostały podane w Tabeli 1.

2. Indeks jakości wiązki: oznaczenie warstwy połowicznej

UWAGA: HVL jest definiowane jako grubość attenuatora (zazwyczaj miedzi lub aluminium) niezbędna do zmniejszenia natężenia wiązki dwukrotnie w stosunku do wartości pierwotnej.

  1. Przygotuj sprzęt (podpórkę, kolimator, przysłonę, komorę jonizacyjną) wewnątrz obudowy do napromieniania, postępując zgodnie z instrukcjami zamieszczonymi na Rysunku 1. Na tym etapie nie stosuje się materiału tłumiącego.
  2. Upewnij się, że wszystkie odległości podane na Rysunku 1 są prawidłowe. Zmierz je za pomocą miary taśmowej.
  3. Umieść komorę jonizacyjną w pozycji poziomej. W tej pracy zastosowano cylindryczną komorę jonizacyjną model 31002 (odpowiednik 31010) skalibrowaną w kermie powietrza.
  4. Przeprowadź wstępne napromienianie komory jonizacyjnej przez 5 min i zmierz tło (krok ten można wykonać bez kolimatora).
  5. Wykonaj 10 pomiarów po 1 min każdy w trybie zbierania ładunku, odpowiadających wartości Mraw (wyrażonej w kulombach).
  6. Zmierz temperaturę i ciśnienie za pomocą odpowiedniego skalibrowanego sprzętu umieszczonego wewnątrz obudowy do napromieniania (jeśli nie jest to możliwe, umieść go w pobliżu stanowiska doświadczalnego). Skoryguj odczyt Mraw na elektrometrze za pomocą współczynnika korekcyjnego temperatury i ciśnienia zgodnie z poniższym wzorem:
    Wzór termodynamiczny: schemat równania \(K_{T,p}\) do analizy zależności temperatury od ciśnienia.
    gdzie: T (°C) i P (hPa) to odpowiednio aktualna temperatura i ciśnienie. Tref i Pref to temperatura i ciśnienie referencyjne z momentu kalibracji jonizacji w laboratorium wzorcowym. Ciśnienie i temperaturę należy mierzyć przyrządami skalibrowanymi. Wartość uzyskana w trybie ładunku stanowi średnią wartość referencyjną M (w kulombach).
    UWAGA: Krok ten nie jest ściśle wymagany do pomiaru HVL, ale jest zalecany.
  7. Umieść tłumik o określonej grubości nad przysłoną. Zestaw do pomiaru HVL składa się z folii o różnych grubościach (0,02, 0,05, 0,1, 0,2, 0,5, 1, 2, 5 i 10 mm miedzi) o wymiarach umożliwiających pokrycie całej wiązki (tutaj 80 x 80 mm).
  8. Wykonaj pomiar trwający 1 min (Mraw skorygowane o KT,P zgodnie z opisem powyżej).
    1. Jeśli moc dawki zmniejszyła się dwukrotnie w stosunku do wartości początkowej, wyznaczono wartość HVL. Wykonaj 5 pomiarów po 1 min, aby oszacować średnią moc dawki.
    2. Jeśli moc dawki nie zmniejszyła się dwukrotnie w stosunku do wartości początkowej, zwiększ lub zmniejsz grubość tłumika i wykonaj kolejny pomiar. Dostosuj grubość tłumika w razie potrzeby.
  9. Po znalezieniu grubości tłumika, która zmniejsza intensywność wiązki dwukrotnie, wykonaj 5 pomiarów po 1 min, aby potwierdzić HVL.
    UWAGA: W większości przypadków dokładnej grubości tłumika nie można dobrać z dostępnych folii. W takim przypadku należy zastosować metodę bisekcji i interpolować wartość HVL.

3. Ocena pola naświetlania (bez szacowania dawki)

  1. Umieść folię EBT3 na podłożu używanym do napromieniowania.
  2. Naświetl folię tak, aby uzyskać wyraźnie zaznaczone pole napromieniowania (co najmniej 2 Gy).
  3. Zeskanuj folię EBT3 za pomocą dedykowanego skanera.
  4. Wykreśl profil dawki w programie Image J, korzystając z opcji Analyze, a następnie Plot Profile (Rysunek 2).
  5. Wyznacz rozmiar pola napromieniowania wykorzystywanego do irradiacji (obszar jednorodny, z wyłączeniem obszarów półcienia, patrz Rysunek 2).
  6. Zaznacz na podłożu używanym do napromieniowania punkty, które zapewnią prawidłowe ustawienie pojemnika z komórkami.
    UWAGA: Na tym etapie wyznacza się rozmiar pola napromieniowania, a nie szacuje dawki. Pełna procedura odczytu i analizy folii została przedstawiona w sekcji 5. Należy również zachować marginesy, aby uniknąć błędów wynikających z pozycjonowania pojemnika z komórkami.

4. Pomiar mocy dawki za pomocą komory jonizacyjnej

  1. Należy wziąć pojemnik z komórkami i uszkodzić niewielki fragment na boku lub na dnie (w zależności od konkretnego pojemnika i użytej komory jonizacyjnej), aby móc umieścić komorę jonizacyjną wewnątrz (Rysunek 3, górna sekcja) lub poniżej (Rysunek 3, dolna sekcja) pojemnika. Przykłady przedstawiono na Rysunku 3 z użyciem różnych komór jonizacyjnych (cylindrycznych lub płaskich równoległych) oraz pojemników z komórkami. W tym przypadku użyto kolby T25 (Rysunek 3, czerwona ramka).
    UWAGA: lutownica lub podgrzany skalpel stanowią dobrą alternatywę do wykonywania otworów w wyrobach z tworzywa sztucznego
  2. Umieść pojemnik wewnątrz obudowy na wsporniku używanym do naświetlania (tutaj płyta węglowa).
  3. Włóż komorę jonizacyjną do pojemnika (Rysunek 3, czerwona ramka) w odpowiedniej pozycji i podłącz ją do elektrometru.
  4. Upewnij się, że wszystkie parametry naświetlania wymienione w sekcji 1 są poprawne (wysokie napięcie, natężenie, dodatkowa filtracja, odległość źródła od próbki itp.).
  5. Przeprowadź wstępne naświetlanie komory jonizacyjnej przez 5 min i wykonaj zerowanie elektrometru.
  6. Wykonaj 10 pomiarów trwających 1 min, aby wyznaczyć średnią moc dawki w powietrzu (air kerma) (Gy.min-1). Wyznaczenie mocy dawki Kair oblicz w następujący sposób:
    Równanie dla równowagi statycznej, zawierające K_air = M × N_Kair × K_Q.
    gdzie M jest odczytem dozymetru skorygowanym o temperaturę, ciśnienie, efekt polaryzacji, rekombinację jonów oraz kalibrację elektrometru. NKair oraz Kq to czynniki kalibracyjne i korekcyjne dla jakości promieniowania, których wartości są specyficzne dla każdej komory jonizacyjnej.

5. Pomiar tłumienia i rozpraszania ośrodków hodowli komórkowych

UWAGA: Przez cały czas trwania procedury należy obchodzić się z filmami EBT3 w rękawiczkach.

  1. Przygotowanie eksperymentu
    1. Wyciąć małe kawałki folii EBT3 co najmniej 24 h przed napromienianiem.
    2. Określić rozmiar folii w zależności od naczynia hodowlanego używanego w eksperymentach radiobiologicznych (np. 4 x 4 cm dla kolby T25).
      Wyciąć dwa zestawy folii radiochromowych: jeden zestaw do krzywych kalibracyjnych, składający się z trzech kawałków folii radiochromowej EBT3 na dawkę lub punkt czasowy (łącznie dziewięć punktów w niniejszej pracy) oraz jeden zestaw do ilościowego oznaczenia tłumienia przez pożywki do hodowli komórkowych, również po trzy kawałki na punkt.
    3. Ponumerować wszystkie folie w celu ich identyfikacji (tutaj w prawym górnym rogu) i zeskanować je w tej samej pozycji na skanerze.
    4. Przechowywać folie w ciemności.
    5. Przygotować naczynie hodowlane używane do pomiarów folii EBT3 i, jeśli to konieczne, wyciąć fragment, aby umieścić wewnątrz folię (przykład z kolbą T25 przedstawiono na Rysunku 4).
  2. Szacowanie mocy dawki
    1. Zmierzyć moc dawki dla konfiguracji opisanej w poprzedniej sekcji.
    2. Zachować tę konfigurację podczas napromieniania folii radiochromowych EBT3 i używać tego samego typu naczynia hodowlanego.
  3. Konstrukcja krzywej kalibracyjnej
    1. Pobrać wstępnie docięte folie EBT3 do krzywej kalibracyjnej.
    2. Nie napromieniać trzech kawałków (0 Gy).
    3. Umieścić pierwszą folię w naczyniu hodowlanym w tej samej konfiguracji, co w przypadku napromieniania komórek.
    4. Napromieniać ją, aby uzyskać pierwsze punkty dawki.
    5. Powtórzyć tę operację, aby uzyskać trzy kawałki folii EBT3 napromieniowane tą samą dawką.
    6. Wykonać to dla każdego punktu dawki (w niniejszej pracy dziewięć punktów dawki (0, 0.25, 0.5, 0.75, 1, 1.5, 2, 2.5 i 3 Gy), jak zilustrowano na Rysunku 5).
  4. Ocena tłumienia przez pożywki do hodowli komórkowych oraz rozpraszania.
    1. Wybrać taki sam czas napromieniania dla wszystkich irradiacji (np. 60 s).
    2. Napromieniać trzy kawałki folii EBT3 w naczyniu bez wody.
    3. Napromieniać trzy kawałki folii EBT3 w naczyniu z wodą w następujący sposób:
      1. Umieścić folię wewnątrz naczynia.
      2. Wypełnić naczynie dokładną ilością wody reprezentującą pożywkę do hodowli komórkowej (tutaj 5 mL). Użyć małych kawałków taśmy, jeśli folie nie pozostają prawidłowo zanurzone.
      3. Umieścić naczynie hodowlane wewnątrz obudowy i upewnić się, że folia jest prawidłowo zanurzona.
      4. Po zakończeniu napromieniowania wyjąć folie EBT3, osuszyć je papierem chłonnym i przechowywać w ciemności.

6. Odczyt radiochromicznych folii EBT3

  1. Odczyt filmów EBT3 należy przeprowadzić co najmniej 24 h po naświetlaniu.
  2. Skanowanie filmów należy wykonać na dedykowanym skanerze.
  3. Parametry skanera należy ustawić następująco: 48-bitowy format TIFF RGB (red-green-blue), 150 dpi w trybie transmisji, bez korekcji obrazu.
  4. Rozgrzewanie skanera należy przeprowadzić w następujący sposób:
    1. Umieścić nienaświetlony film w skanerze.
    2. Uruchomić podgląd skanowania.
    3. Uruchomić stoper i odczekać 30 s.
    4. Uruchomić skanowanie.
    5. Po zakończeniu skanowania uruchomić stoper i odczekać 90 s.
    6. Jednocześnie zarejestrować skan, otworzyć obraz w programie ImageJ, wyznaczyć kwadratowy obszar ROI (zawsze o tej samej wielkości i w tej samej pozycji) i zmierzyć średni poziom czerwieni pikseli w tym obszarze.
    7. Po upływie 90 s powtórzyć procedurę od kroku 2 (nie dotykając filmu wewnątrz skanera).
    8. Powtórzyć tę czynność co najmniej 30 razy, aby rozgrzać i ustabilizować skaner (do momentu braku zmian w średnim poziomie czerwieni pikseli w obszarze wybranym na nienaświetlonych filmach). Jeśli skaner, tj. średnia wartość czerwieni pikseli, nie ulegnie stabilizacji, należy kontynuować procedurę.
  5. Skanowanie filmów EBT3:
    1. Umieścić pierwszy film w centrum platformy skanera. Wyznaczyć obszar, aby zawsze umieszczać film w tym samym miejscu i w tej samej orientacji.
    2. Uruchomić podgląd skanowania.
    3. Uruchomić stoper i odczekać 30 s.
    4. Uruchomić skanowanie.
    5. Po zakończeniu skanowania uruchomić stoper i odczekać 90 s. W ciągu tych 90 s należy wymienić film EBT3.
      UWAGA: Analiza radiochromowych filmów EBT3 została przeprowadzona przy użyciu własnego programu napisanego w języku C++. Do analizy filmów EBT3 można zastosować różne metody, takie jak metoda kanału czerwonego lub metoda trzech kanałów14,15. W tym przypadku zastosowano metodę kanału czerwonego bez odejmowania tła, a obrazy zostały przekształcone w gęstości optyczne, a następnie w dawkę przy użyciu naszego programu. Ponieważ metoda ta jest już dobrze zdefiniowana, nasz program C++ nie został tutaj dołączony. Ponadto do analizy filmów EBT3 można wykorzystać dedykowane oprogramowanie16.

7. Wyznaczenie mocy dawki na poziomie monowarstwy komórek

  1. Przelicz średnią moc dawki uzyskaną za pomocą komory jonizacyjnej, skorygowaną o tłumienie i rozpraszanie przez pożywkę hodowlany komórek (K), na kerma w wodzie, wykorzystując stosunek średniego masowego współczynnika absorpcji energii dla wody do powietrza wyznaczony dla widma strumienia fotonów (μen/ρ).
    Schemat równania równowagi statycznej, Kwater=K×(μen/ρ)air dla badania środowiskowego.
    Do obliczenia widma energii fotonów w powietrzu bez fantoma wykorzystano dedykowane oprogramowanie17, a do obliczenia średniego masowego współczynnika absorpcji energii posłużono się tabelą NIST18.

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Wyniki

W niniejszej pracy wykorzystano platformę przeznaczoną do napromieniowania małych zwierząt19; platforma ta może być jednak stosowana do napromieniowania innych rodzajów próbek, np. komórek. Źródłem promieniowania jest lampa rentgenowska Varian (NDI-225-22) z wbudowaną filtracją z berylu o grubości 0.8 mm, dużą wielkością plamki ogniskowej wynoszącą 3 mm, zakresem wysokiego napięcia od około 30 do 225 kV oraz maksymalną intensywnością 30 mA.

Parametry zastosowane w ninie...

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Dyskusja

W pracy przedstawiono protokół stosowany i wdrażany do napromieniania komórek za pomocą niskoenergetycznego aparatu rentgenowskiego. Obecnie wiele eksperymentów radiobiologicznych przeprowadza się przy użyciu tego typu promiennika, ponieważ są one łatwe w użyciu, opłacalne i mają bardzo niewiele ograniczeń w zakresie ochrony przed promieniowaniem, w porównaniu na przykład ze źródłem kobaltu. Chociaż te konfiguracje mają wiele zalet, ponieważ wykorzystują źródło energii o niskim poziomie promieniowania rentgenowskiego, mo...

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Oświadczenia

Autorzy nie mają nic do ujawnienia.

Materiały

Lista materiałów użytych w tym artykule
NazwaFirmaNumer katalogowyKomentarze
31010 komora jonizacyjnaPTWjonizacja Promieniowanie, Detektory wraz z kodeksem postępowania, katalog 2019/2020, strona 14https://www.ptwdosimetry.com/fileadmin/user_upload/DETECTORS_Cat_en_16522900_12/blaetterkatalog/index.html?startpage=1#page_14
Folie radiochromowe EBT3Meditestzapytanie ofertowehttps://www.meditest.fr/produit/ebt3-8x10/
elektrometr UNIDOSEweblineKatalog online PTW, zapytanie ofertowehttps://www.ptwdosimetry.com/en/products/unidos-webline/?type=3451&downloadfile=1593&
cHash=
6096ddc2949f8bafe5d556e931e6c865
Materiał HVL (filtr, membrana)KatalogPTW, strona 70, zapytanie ofertowegrubość folii: 0,02, 0,05, 0,1, 0,2, 0,5, 1, 2, 5 i 10 mm miedzi, https://www.ptwdosimetry.com/fileadmin/user_upload/Online_Catalog/Radiation_Medicine_Cat_en_
58721100_11/blaetterkatalog/index.html#page_70
skaner do folii radiochromowychZapytanieofertoweEpson Epson V700, seiko Epson corporation, Suwa, Japonia
pomiary temperatury i ciśnienia, Lufft OPUS20zapytanie ofertowehttps://www.lufft.com/products/in-room-measurements-291/opus-20-thip-1983/
online

Bibliografia

  1. Zoetelief, J., Broerse, J. J., Davies, R. W. Protocol for X-ray dosimetry EULEP. Report No. Report EUR 9507. Commission of the European Communities. , (1985).
  2. Zoetelief, J., et al. Protocol for X-ray dosimetry in radiobiology. International Journal of Radiation Biology. 77 (7), 817-835 (2001).
  3. Zoetelief, J., Jansen, J. T. Calculated energy response correction factors for LiF thermoluminescent dosemeters employed in the seventh EULEP dosimetry intercomparison. Physics in Medicine and Biology. 42 (8), 1491-1504 (1997).
  4. Coleman, C. N., et al. Education and training for radiation scientists: radiation research program and American Society of Therapeutic Radiology and Oncology Workshop, Bethesda, Maryland. Radiation Research. 160 (6), 729-737 (2003).
  5. Desrosiers, M., et al. The importance of dosimetry standardization in radiobiology. Journal of Research of National Institute of Standards and Technology. 118, 403-418 (2013).
  6. DIN. Klinische Dosimetrie: Teil 4. Anwendung von Röntgenstrahlen mit Röhrenspannungen von 10 bis 100 kV in der Strahlentherapie und in der Weichteildianostik. , Report No. DIN 6809 (1988).
  7. DIN. Klinische Dosimetrie: Teil 5. Anwendung von Röntgenstrahlen mit Röhrenspannungen von 100 bis 400 kV in der Strahlentherapie. , Report No. DIN 6809-5 (1996).
  8. NCS. Dosimetry of low and medium energy x-rays: A code of practice for use in radiotherapy and radiobiology. NCS. , Report No. 10 (1997).
  9. International Atomic Energy Agency. Absorbed Dose Determination in External Beam Radiotherapy. International Atomic Energy Agency. , (2000).
  10. Ma, C. M., et al. AAPM protocol for 40-300 kV x-ray beam dosimetry in radiotherapy and radiobiology. Medical Physics. 28 (6), 868-893 (2001).
  11. Peixoto, J. G., Andreo, P. Determination of absorbed dose to water in reference conditions for radiotherapy kilovoltage x-rays between 10 and 300 kV: a comparison of the data in the IAEA, IPEMB, DIN and NCS dosimetry protocols. Physics in Medicine and Biology. 45 (3), 563-575 (2000).
  12. Pedersen, K. H., Kunugi, K. A., Hammer, C. G., Culberson, W. S., DeWerd, L. A. Radiation biology irradiator dose verification survey. Radiation Research. 185 (2), 163-168 (2016).
  13. Draeger, E., et al. A dose of reality: how 20 years of incomplete physics and dosimetry reporting in radiobiology studies may have contributed to the reproducibility crisis. International Journal of Radiation Oncology, Biology, Physics. 106 (2), 243-252 (2020).
  14. Devic, S., et al. Precise radiochromic film dosimetry using a flat-bed document scanner. Medical Physics. 32 (7), 2245-2253 (2005).
  15. Micke, A., Lewis, D. F., Yu, X. Multichannel film dosimetry with nonuniformity correction. Medical Physics. 38 (5), 2523-2534 (2011).
  16. Filmqa Software. GAF Chromic.com. , Available from: http://www.gafchromic.com/filmqa-software/filmqapro/index.asp (2020).
  17. Poludniowski, G., Landry, G., DeBlois, F., Evans, P. M., Verhaegen, F. SpekCalc: a program to calculate photon spectra from tungsten anode x-ray tubes. Physics in Medicine and Biology. 54 (19), 433-438 (2009).
  18. Hubbell, J. H., Seltzer, S. M. X-Ray mass attenuation coefficients - Tables of X-ray mass attenuation coefficients and mass energy-absorption coefficients 1 keV to 20 MeV for elements Z = 1 to 92 and 48 additional substances of dosimetric interest (version 1.4). NIST Standard Reference Database. , 126(1995).
  19. Wong, J., et al. High-resolution, small animal radiation research platform with x-ray tomographic guidance capabilities. International Journal of Radiation Oncology, Biology, Physics. 71 (5), 1591-1599 (2008).
  20. Trompier, F., et al. Investigation of the influence of calibration practices on cytogenetic laboratory performance for dose estimation. International Journal of Radiation Biology. , 1-9 (2016).
  21. Dos Santos, M., et al. Importance of dosimetry protocol for cell irradiation on a low X-rays facility and consequences for the biological response. International Journal of Radiation Biology. , 1-29 (2018).
  22. Noblet, C., et al. Underestimation of dose delivery in preclinical irradiation due to scattering conditions. Physica Medica. 30 (1), 63-68 (2014).
  23. Paixao, L., et al. Monte Carlo derivation of filtered tungsten anode X-ray spectra for dose computation in digital mammography. Radiologia Brasileira. 48 (6), 363-367 (2015).

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Przedruki i uprawnienia

Przeglądaj więcej artykułów

Dozymetria promieniowania rentgenowskiego niskich energiipomiar dawki napromieniowania komórekkalibracja kermy w powietrzuradiochromiczna folia EBT3protokół komory jonizacyjnejwyznaczanie warstwy połowicznejtłumienie przez pożywkę hodowli komórkowejsamowywołująca się folia dozymetrycznaobliczanie mocy dawkiocena pola promieniowania
Dozymetria do napromieniania komórek przy użyciu aparatury rentgenowskiej o ortonapięciu (40-300 kV)
Skontaktuj się z nami
Poleć bibliotece

Prywatność

Warunki korzystania z usługi

Zasady

Prawa autorskie © 2026 MyJoVE Corporation. Wszelkie prawa zastrzeżone.