Aby opracować nowy biomateriał o właściwościach przeciwbakteryjnych do ortopedycznych zabiegów chirurgicznych, kluczowe znaczenie ma stworzenie eksperymentalnego modelu zwierzęcego zakażeń związanych z implantami, który ściśle naśladuje stan patologiczny. Dodatkowo wymagane jest porównanie ilościowe z próbkami kontrolnymi w celu oceny tworzenia się biofilmu na materiałach. Jednak obecne modele zwierzęce, które polegają na wszczepieniu każdemu osobnikowi jednego materiału, mogą dawać niespójne wyniki ze względu na niejednorodność statusu infekcji wśród badanych. Co więcej, dokładne ilościowe określenie powstawania biofilmu w materiałach in vivo pozostaje wyzwaniem, a wyniki mogą być niewiarygodne. Aby rozwiązać te problemy, w badaniu tym zademonstrowano unikalny mysi model infekcji związanej z implantem, który umożliwia jednoczesną inkubację dwóch implantów z bakteriami w zamkniętym środowisku w obrębie jednej myszy, tworząc zamknięty ropień podskórny. Dojrzała torebka powietrzna została początkowo utworzona pod skórą pleców. Dwa druty ze stali nierdzewnej zostały połączone i umieszczone w torebce, a następnie zaszczepiono Xen 36, bioluminescencyjny szczep Staphylococcus aureus. Po 14 dniach od inokulacji wokół drutów utworzył się ropień podskórny. Biofilm został całkowicie usunięty z powierzchni każdego drutu, a rozpuszczone zawiesiny bakteryjne zostały dokładnie zmierzone przy użyciu zoptymalizowanych metod w celu oceny tworzenia biofilmu na implancie, określenia jednostek tworzących kolonie i przeprowadzenia ilościowej analizy reakcji łańcuchowej polimerazy. Wykorzystując operon luksa bakterii bioluminescencyjnych, wykorzystano względne poziomy ekspresji luxA i 16S rRNA do określenia obciążenia bakteryjnego w biofilmie na każdym drucie. To zoptymalizowane porównawcze podejście analityczne umożliwia precyzyjną ocenę tworzenia się biofilmu na dwóch przewodach w jednolitych warunkach infekcji w ramach jednego modelu mysiego i może ułatwić rozwój biomateriałów o właściwościach przeciwbakteryjnych.