Hydroksylowy Safflower Yellow A (HSYA) łagodzi chorobę zwyrodnieniową stawów kolana poprzez wspomaganie autofagii i proliferacji chondrocytów, jednocześnie hamując apoptozę i stan zapalny poprzez hamowanie szlaku HIF-1α/BNIP3.
Subskrypcja JoVE jest wymagana do oglądania tego materiału. Zaloguj się lub rozpocznij bezpłatny okres próbny.
Artykuł badawczy
Hydroksylowy Safflower Yellow A (HSYA) łagodzi chorobę zwyrodnieniową stawów kolana poprzez wspomaganie autofagii i proliferacji chondrocytów, jednocześnie hamując apoptozę i stan zapalny poprzez hamowanie szlaku HIF-1α/BNIP3.
Redukcja autofagii w tkance chrząstki jest ściśle powiązana z rozwojem choroby zwyrodnieniowej stawów kolana (KOA), jednak mechanizmy, dzięki którym hydroksylowy żółty A (HSYA) wywiera działanie ochronne, pozostają niedo do końca poznane. W tym badaniu wyizolowano ludzkie chondrocyty KOA i przypisano do różnych grup leczenia, w tym do kontroli normalnej, modelu pustego, HSYA, inhibitora czynnika hipoksyjnego-1α (HIF-1α), induktora autofagii, HSYA w połączeniu z inhibitorem HIF-1α oraz HSYA w połączeniu z induktorem autofagii. Prozapalne cytokiny (IL-1β, TNF-α, IL-6) zostały zmierzone za pomocą ELISA, ekspresja białek HIF-1α, BNIP3 oraz markerów związanych z autofagią została zbadana metodą Western blotting, a autofagiczne pęcherzyki w mitochondriach oceniono za pomocą barwienia monodansylkadawerynowego i transmisyjnej mikroskopii elektronowej. W porównaniu z kontrolą kontrolną w formie normalnej, grupa z modelem bez danych wykazała istotnie podwyższone poziomy IL-1β, TNF-α, IL-6 i HIF-1α, wraz z wyższymi wskaźnikami apoptozy, zmniejszoną proliferacją oraz obniżeniem poziomu białek związanych z autofagią (P < 0,05). Leczenie HSYA, inhibitorem HIF-1α lub induktorem autofagii znacząco zwiększyło ekspresję białek związanych z autofagią oraz obniżyło poziom cytokiny zapalnej. Ponadto HSYA w połączeniu z inhibitorem HIF-1α lub induktorem autofagii wywołała najbardziej wyraźne efekty, z wyraźnym zmniejszeniem uwalniania cytokin i apoptozy, a także zwiększoną proliferacją chondrocytów i formowaniem mitochondrialnych pęcherzyków autofagicznych (P < 0,05). Wyniki te pokazują, że HSYA wywiera działanie chondrogprotekcyjne u KOA, przynajmniej częściowo, poprzez hamowanie szlaku HIF-1α/BNIP3, co sprzyja autofagii i łagodzi uszkodzenia zapalne w chondrocytach.
Jako powszechna przewlekła choroba ortopedyczna, choroba zwyrodnieniowa stawów kolana (KOA) dotyka osoby w średnim i starszym wieku, znacząco wpływając na ich jakość życia 1,2. Pomimo powszechnego występowania, dokładna etiologia i mechanizmy patofizjologiczne leżące u podstaw KOA pozostają niew w pełni poznane. Ponadto zarówno profilaktyka, jak i leczenie lecznicze podkreśla pilność rozwikłania złożonych patologicznych podstaw tego schorzenia. Jednym z obszarów rosnącego zainteresowania jest rola autofagii w homeostazie chrząstki, a coraz więcej dowodów sugeruje, że zmniejszona autofagia w tkance chrząstki przyczynia się do jej degeneracji w KOA 3,4.
Autofagia, proces degradacji komórkowej niezbędny do utrzymania homeostazy komórkowej, ma ogromne znaczenie w utrzymaniu i naprawie chrząstki. W mikrośrodowisku hipoksyjnym dominującym w chrząstce stawowej, szlak sygnalizacyjny czynnika 1α (HIF-1α)/adenowirusa E1B 19 kDa (BNIP3) oddziałującego na białko 3 (BNIP3) pojawia się jako kluczowy regulator autofagii. Zaobserwowano podwyższoną ekspresję HIF-1α u pacjentów z KOA, co sugeruje, że zaburzenia regulacji tego szlaku mogą przyczyniać się do zaburzeń autofagii i późniejszej degeneracji chrząstki 5,6,7.
Akupunktura, moksybustia, zioła i masaż to cztery klasyczne metody tradycyjnej medycyny chińskiej w leczeniu zapalenia stawów kolan. Obecne leczenie, takie jak niesteroidowe leki przeciwzapalne, zastrzyki z kwasem hialuronowym oraz artroplastyka, okazały się skuteczne, ale również wiązały się z pewnymi skutkami ubocznymi8. Ponadto nie zaleca się rutynowego leczenia choroby zwyrodnieniowej stawów kolan. Z biegiem czasu, jako powszechna terapia uzupełniająca KOA, Tradycyjna Medycyna Chińska (TCM) opracowała liczne ziołowe środki, które wykazują obiecujące szanse w leczeniuKOA 9. Wśród nich Hydroxyl safflower Yellow A zyskał znaczną uwagę ze względu na swoje właściwości przeciwzapalne i modulujące autofagię10,11. Jednak dokładne mechanizmy, dzięki którym HSYA wywiera swój terapeutyczny wpływ na chorobę zwyrodnieniową stawów kolana (KOA), szczególnie w zakresie regulacji autofagii poprzez szlak HIF-1α/BNIP3, pozostają niejasne. Dlatego badamy mechanizm terapeutycznych efektów HSYA w KOA, koncentrując się na jego wpływie na autofagię chondrocytów oraz interakcji z szlakiem HIF-1α/BNIP3. Hipotezujemy, że HSYA łagodzi chorobę zwyrodnieniową stawów kolana poprzez wzmacnianie autofagii i proliferacji chondrocytów, jednocześnie hamując apoptozę i stan zapalny poprzez hamowanie szlaków HIF-1α/BNIP3.
Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.
Wszystkie procedury z udziałem próbek ludzkich zostały zatwierdzone przez Komisję Etyki Centralnego Szpitala Ludowego w Zhanjiang (Z. Zatwierdzenia nr KY-YS-2021-09). Przed pobraniem próbki uzyskano pisemną świadomą zgodę wszystkich uczestników. Odczynniki i używany sprzęt są wymienione w Tabeli Materiałów.
1. Pacjenci i projekt badań
Zrekrutowano trzydziestu pacjentów z diagnozą zwyrodnieniowego stawów kolana (KOA) i poddawanych całkowitej artroplastyce kolana. W grupie było 14 mężczyzn i 16 kobiet w wieku 52-75 lat (średnia ± SD: 64,3 ± 12,6 lat), wszyscy spełniający kryteria KOA American College of Rheumatology12. Pacjenci byli wykluczeni, jeśli otrzymali niesteroidowe leki przeciwzapalne lub sterydy w ciągu 2 tygodni przed operacją lub w ciągu miesiąca iniekcji śródstawowych.
2. Pierwotna hodowla chondrocytów
Chrząstka stawowa była pobierana w warunkach sterylnych bezpośrednio po operacji i umieszczana w zimnym PBS. Za pomocą sterylnych skalpeli chrząstkę pocięto na fragmenty o grubości ~1 mm³ na lodowato zimnej szklanej płycie i przenoszono do 50 mL rurki wirówki zawierającej 10 mL 0,25% trypsyny-EDTA. Rurka była inkubowana w wodnej kąpieli wodnej o temperaturze 37 °C z częstotliwością 80 obr./min przez 30 minut, a następnie delikatnie odwracana co 5 minut, aby ułatwić trawienie. Supernatant był zasysany, a granulka tkankowa była myta raz PBS i wirowana w 200 × g przez 5 minut. Następnie pellet był ponownie zawieszany w 10 mL kolagenazy typu II o stężeniu 0,02% i trawiony w 37 °C przez 4 godziny przy wstrząsaniu. Zawieszenie było podsuwane i opuszczane co 30 minut, aby wspomóc dysocjację, przechodziło przez sitko o średnicy 70 μm, a następnie ponownie wirowało w 200 × g przez 5 minut. Powstały pellet został ponownie zawieszony w DMEM uzupełnionym o 10% FBS, 100 U/mL penicyliny oraz 100 μg/mL streptomycyny i zasiewany do koleb T25. Komórki inkubowano w temperaturze 37 °C z 5%CO2, podłoże wymieniano co 2-3 dni, a komórki z przepustek 1-2 wykorzystywano do eksperymentów. Grupy eksperymentalne obejmowały kontrolę w formie normalnej, model pusty, HSYA (100 μmol/L), inhibitor HIF-1α YC-1 (10 μmol/L), rapamycynę (10 nmol/L), HSYA + YC-1 oraz HSYA + rapamycynę.
3. Stuknięcie HIF-lα, BNIP3 pośredniczone przez siRNA
Pierwotne chondrocyty były zasiewane na płytkach 6-dołków w dawce 2-5 ×10 5 komórek /dołek i hodowane w temperaturze 37 °C, aż osiągnęły łączność 30%-50%. Dla każdej dołki rozcieńczono 5 μL siRNA 20 μM w 250 μL Opti-MEM, a 5 μL odczynnika transfekcyjnego opartego na lipidach rozcieńczono osobno w 250 μL Opti-MEM. Oba roztwory były delikatnie mieszane i inkubowane w temperaturze pokojowej przez 15-20 minut, tworząc kompleksy. Pożywka hodowlana została zastąpiona 1,5 mL świeżego DMEM z 10% FBS, a kompleks siRNA-lipidowy (500 μL) został dodany kropelo wzdłuż ściany studni z delikatnym wirowaniem. Komórki inkubowano przez 6 godzin, podłoże zastąpiono kompletnym podłożem, a hodowla kontynuowano przez 48-72 godziny. Skuteczność skalibracji została zweryfikowana za pomocą qRT-PCR oraz Western blot przed dalszymi zabiegami.
4. ELISA
Pobrano supernatanty hodowli komórkowych, wirowano w dawce 200 × g przez 5 minut i rozcieńczono w 1:2 w buforze testowym, gdy było to konieczne. Zestawy ELISA dla IL-1β, TNF-α i IL-6 były stosowane zgodnie z protokołem producenta. Standardy, puste egzemplarze i próbki były testowane w trzech egzemplarzach. Po reakcji substratowej absorbancję zmierzono na poziomie 450 nm za pomocą czytnika mikropłyt w ciągu 15 minut.
5. Test MTT
Chondrocyty były zasiewane na płytkach 96-dołkowatych o objętości 5 000 komórek/dołek w 100 μL kompletnego nośnika i inkubowane przez 0 godzin, 24 godziny, 48 godzin lub 72 godziny. W każdym momencie czasowym bezpośrednio do każdego odwiertu dodawano 20 μL roztworu MTT (5 mg/mL w PBS), a płytki inkubowano w temperaturze 37 °C przez 30 minut, aż na dnie otworów pojawiły się fioletowe kryształy formazonu. Supernatant był ostrożnie wsysany, nie naruszając kryształów, do każdego dołku dodawano 150 μL DMSO, a płytki umieszczano na wstrząsance przy 100 obr./min na 10 minut, aby całkowicie rozpuścić kryształy. Absorpcję zmierzono na poziomie 490 nm za pomocą czytnika mikropłyt. Krótki czas inkubacji został wybrany, aby uniknąć nasycenia sygnałem w komórkach o wysokiej aktywności metabolicznej.
6. Cytometria przepływowa
Komórki były pobierane trypsynizacją, wirowane w stężeniu 200 × g przez 5 minut i dwukrotnie myte zimnym PBS. Zostały one ponownie zawieszone w 500 μL buforu wiążącego przy ~1 × 106 komórek /mL, a następnie dodano 5 μL Annexin V-FITC i 5 μL PI. Po delikatnym mieszaniu komórki były inkubowane przez 15 minut w temperaturze pokojowej w ciemności. Próbki zostały przeanalizowane na cytometrze przepływowym, z co najmniej 10 000 zdarzeń zebranych na próbkę (wzbudzenie 488 nm, emisja FITC 530/30 nm, PI > 600 nm). Komórki apoptotyczne były ilościowe za pomocą standardowego oprogramowania.
7. Western blotting
Komórki były dwukrotnie płukane zimnym PBS i lizowane w buforze 200 μL RIPA zawierającym inhibitory proteazy na lodzie przez 30 minut. Komórki były skrobane plastikowym skrobakiem, podsuwane i opuszczane pipetą w celu zmniejszenia lepkości oraz wirowane w dawce 12 000 × g przez 10 minut w temperaturze 4 °C. Zbierano supernatanty, a stężenia białek mierzono za pomocą testu BCA. Równe ilości białka (30 μg) były mieszane z buforem obciążającym 5×, podgrzewane w 95 °C przez 5 minut i rozdzielane na żelach SDS-PAGE o stężeniu 10%-12%. Elektroforeza była wykonywana przy napięciu 80 V przy układaniu i 120 V przy separacji, a białka były przenoszone na membrany PVDF przy napięciu 300 mA przez 90 minut. Błony były blokowane w mleku o stężeniu 5% bez tłuszczu przez 1 godzinę w temperaturze pokojowej i inkubowane przez noc w temperaturze 4 °C z użyciem przeciwciał podstawowych (1:1 000). Po trzech płukaniach TBST błony były inkubowane przeciwciałami wtórnymi sprzężonymi z HRP (1:5 000) przez 1 godzinę w temperaturze pokojowej. Pasma białkowe były wizualizowane za pomocą substratu ECL i obrazowane za pomocą systemu detekcji chemiluminescencji przy ekspozycji 30-120 sekund. Intensywności pasmowe były kwantyfikowane za pomocą ImageJ, a GAPDH używano jako kontroli obciążenia.
8. Barwienie monodansylkadaweryną (MDC)
Bezpośrednio przed użyciem przygotowywano roztwór roboczy MDC o pojemności 50 μM, z roztworu zapasowego. Komórki były utrwalane 1 mL 4% paradehydu przez 10 minut w temperaturze pokojowej, dwukrotnie myto PBS i inkubowano w roztworze roboczego MDC o stężeniu 500 μL przez 30 minut w temperaturze 37 °C w ciemności. Po dwóch płukaniach PBS, pokrywki zostały zamontowane z medium antyfade i obserwowane pod mikroskopem fluorescencyjnym (wzbudzenie 355 nm, emisja 512 nm).
9. Transmisyjny mikroskop elektronowy (TEM)
Komórki były pobierane i granulowane przez wirowanie w stężeniu 200 × g przez 5 minut, a następnie utrwalano w 2% glutaraldehydu w temperaturze 4 °C na noc. Próbki były myte trzykrotnie PBS przez 5 minut każdy, a następnie utrwalane w 1% czterotlenku osmu przez 1 godzinę w temperaturze 4 °C w okapie spalającego. Odwodnienie przeprowadzano poprzez stopniową serię acetonów obejmującą 30%, 50%, 70%, 90% i 100% przez 10 minut każda. Próbki były infiltrowane żywicą acetonową/epoksydową 1:1 przez godzinę, a następnie przez noc czystą żywicą. Osadzenie przeprowadzono w świeżej żywicy i polimeryzowano w temperaturze 60 °C przez 48 godzin. Ultracienkie przekroje o średnicy 50-70 nm były cięte ultramikrotomem, montowane na miedzianych kratkach o średnicy 200 siatek, barwione 2% octanem uranilu przez 30 minut, następnie cytrynianem ołowiu przez 15 minut, myte wodą destylowaną, suszone na powietrzu i badane pod transmisyjnym mikroskopem elektronowym przy napięciu 80 kV. Dla bezpieczeństwa, glutaraldehyd i czterotlenek osmu są toksyczne i lotne i należy je obchodzić wyłącznie w okapie oparowym, rękawiczkach i okularach ochronnych. Odpady powinny być utylizowane w wyznaczonych pojemnikach niebezpiecznych zgodnie z procedurami bezpieczeństwa instytucjonalnego.
10. Analiza statystyczna
Wszystkie eksperymenty przeprowadzono w trzech egzemplarzach. Dane wyrażane są jako średnia ± SD. Istotność statystyczna oceniono za pomocą jednokierunkowej ANOVA, a następnie testu LSD post hoc, przy czym P < 0,05 uznano za istotne.
Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.
Wpływ HSYA na ekspresję prozapalnych cytokin chondrocytów (IL-1β, TNF-α, IL-6)
W porównaniu z grupą kontrolną w normie, wszystkie pozostałe grupy wykazały istotnie podwyższone poziomy cytokin prozapalnych (IL-1β, TNF-α i IL-6) (P < 0,05, Tabela 1, rysunek 1A-G). Leczenie HSYA, inhibitorem HIF-1α, induktorem autofagii, inhibitorem HSYA + HIF-1α lub induktorem HSYA + autofagii istotnie obniżyło poziom cytokin w porównani...
Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.
Choroba zwyrodnieniowa stawów (OA), powszechna choroba przewlekła, znacząco pogarsza jakość życia pacjentów. Spośród różnych podtypów OA, KOA jest najczęstszy, przyczyniając się do globalnego obciążenia chorobami. Pomimo wysokiej częstości występowania, dokładna etiologia i podstawowe mechanizmy patofizjologiczne KOA pozostają nieuchwytne. Złożona interakcja między procesami mechanicznymi i biochemicznymi w chrząstce stawowej, szczególnie regulacja funkcji chondrocytów, jest kluczowa w patogenezie KOA. Warto zauważyć, że...
Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.
Autorzy deklarują brak konkurencyjnych interesów.
Prace te były wspierane przez Biuro Medycyny Chińskiej prowincji Guangdong
(Grant nr 20221446).
Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.
| Nazwa | Firma | Numer katalogowy | Komentarze |
|---|---|---|---|
| 1% czterotlenku osmu | Nauki o mikroskopii elektronowej | 19150 | Dalsze poprawki i barwienia próbek do analizy TEM |
| 2% glutaraldehydu | Sigma-Aldrich | G5882 | Fiksuje komórki do przygotowania próbek TEM |
| 4% paradehydu | Servicebio | G1101 | Utrwala komórki do barwienia MDC i przygotowania próbek TEM |
| AG1478 | Selleck Corporation | S1005 | 20 mg/kg dożylnie, inhibitor kinazy receptora ErbB w modelu szczura |
| Zestaw do wykrywania apoptozy Annexin V-FITC/PI | Biobagno | BS3030 | Barwi komórki apoptotyczne do wykrywania cytometrii przepływowej |
| Induktor autofagii (RAPA) | Sigma Corporation | R0395 | Rapamycyna, induktor autofagii, stosowana przy 10 nmol/L w eksperymentach z chondrocytami |
| Przeciwciało Beclin1 | Santa Cruz Biotechnology | SC-48341 | Główne przeciwciało do wykrywania zachodniego blotu białka Beclin1 związanego z autofagią |
| Przeciwciało BNIP3 | Santa Cruz Biotechnology | SC-517348 | Główne przeciwciało do wykrywania zachodniej plamy BNIP3 |
| Inkubator dwutlenku węgla | Yiheng | BPN-150CW | do hodowli komórek |
| Dimetylsulfotlenek (DMSO) | Sigma-Aldrich | D2650 | Rozpuszcza kryształy formazonu w teście MTT |
| DMEM | Beyotime | C0001 | Podłoże do hodowli komórkowych, uzupełnione 10% FBS do hodowli chondrocytów |
| Czytnik mikropłyt ELISA | Thermo Fisher Scientific | Multiskan FC | Mierzy wartości OD w testach ELISA i MTT |
| Reagent o zwiększonej chemiluminescencji (ECL) | Thermo Fisher Scientific | 32106 | Wizualizuje pasma białek w Western Blot |
| Żywica epoksydowa (EPON812) | Nauki o mikroskopii elektronowej | 14120 | Osadza próbki do sekcjonowania TEM |
| FBS | Beyotime | C0205 | Serum krówego płodu, dodane do DMEM dla odżywiania chondrocytów |
| Cytometr przepływowy | Beckman (wspomniany za apoptozę) | CytoFLEX S | Wykrywa tempo apoptozy chondrocytów oraz markery komórkowe |
| Mikroskop fluorescencyjny | Olympus | IX73 | Obserwuje pęcherzyki autofagiczne barwione MDC |
| System obrazowania żelowego | Bio-Rad | ChemiDoc XRS+ | Uchwyca i ilościowo określa pasma białkowe z Western blot |
| HIF-1α Przeciwciało | Santa Cruz Biotechnology | SC-13515 | Główne przeciwciało do wykrywania zachodniej plamy HIF-1 i alfa; |
| HIF-1α inhibitor (YC-1) | Selleck Corporation | S1047 | HIF-1α inhibitor szlaku, stosowany w 10 & mu; mol/L w eksperymentach komórkowych |
| Wysokoobrotowa chłodzona wirówka | Eppendorf | 5430R | Używane do rozdzielania składników |
| Przeciwciało wtórne sprzężone z HRP | Jackson ImmunoResearch | 115-035-003 | Wiąże pierwotne przeciwciała do wzmacniania sygnału w Western blot |
| IL-1β Zestaw ELISA | Biologia Shenggong | C5236 | Quantifies IL-1β poziomy w supernatantach komórkowych za pomocą ELISA |
| Zestaw IL-6 ELISA | Biologia Shenggong | C5237 | Ilościowo określa poziomy IL-6 w supernatantach komórkowych za pomocą ELISA |
| Przeciwciało LC3 | Santa Cruz Biotechnology | SC-398822 | Główne przeciwciało do wykrywania zachodniego blotu białka LC3 związanego z autofagią |
| Lipofektamin 3000 odczynnik | Thermo Fisher Scientific | L3000001 | Lipidowy odczynnik transfekcyjny do tansfekcji |
| Monodansylkadaweryna (MDC) | Sigma-Aldrich | D4008 | 0,05 mol/L, barwi pęcherzyki autofagiczne do mikroskopii fluorescencyjnej |
| MTT Reagent | Beyotime | C0009 | 0,5 mg/mL, stosowane w testie MTT do oceny proliferacji chondrocytów |
| NanoDrop 2000 | Thermo Fisher Scientific | ND-1000 | Określ stężenie RNA |
| Zestaw NRG1 ELISA | Abcam (Wielka Brytania) | ab213961 | Mierzy stężenie NRG1 w tkankach serca za pomocą ELISA |
| Przeciwciało P62 | Santa Cruz Biotechnology | SC-28359 | Główne przeciwciało do wykrywania zachodniego blotu białka P62 związanego z autofagią |
| Przeciwciało fosforylowane ErbB4 (p-ErbB4) | Powinowactwo | AF3445 | Główne przeciwciało do wykrywania zachodniej plamy aktywowanego ErbB4 |
| PrimeScript RT Reagent Kit | Takara | RR047A | Odwrotna transkrypcja RNA w celu dostarczenia szablonów do eksperymentu qPCR |
| System PCR w czasie rzeczywistym ilościowy | Bio-Rad | CFX96 | do detekcji RT-PCR |
| Rekombinowany ludzki NRG1 (rh-NRG1) | R& D Systems | 396-HB | Iniekcja dożylna 5 mg/kg w celu aktywacji szlaku NRG1/ErbB4 w modelu szczura |
| Bufor RIPA | Meilunbio | MA0151 | Bufor lizowy z inhibitorami proteazy/fosfatazy do ekstrakcji białek |
| Żółty A (HSYA) | Chengdu Mansit Biotechnology Co., Ltd. | Must-160601 | Składnik bioaktywny z Carthamus tinctorius L., stosowany w wieku 100 i mu; mol/l w leczeniu chondrocytów |
| Sprzęt SDS-PAGE | Bio-Rad | Mini-PROTEAN Tetra | Rozdziela białka według masy cząsteczkowej w Western blot |
| TB Green Premix Ex Taq II | Takara | RR820A | dla eksperymentu qPCR |
| TNF-α Zestaw ELISA | Biologia Shenggong | C5238 | Ilościowo określa TNF i alfa; poziomy w supernatantach komórkowych za pomocą ELISA |
| Całkowite przeciwciało ErbB4 | Proteintech | 19943-1-AP | Główne przeciwciało do wykrywania całkowitego ErbB4 przez Western blot |
| Transmisyjny mikroskop elektronowy (TEM) | Hitachi (wspomniane dla pęcherzyków autofagicznych) | H-7650 | Obserwuje pęcherzyki autofagiczne w mitochondriach na poziomie ultrastrukturalnym |
| Odczynnik Trizol | Thermo Fisher Scientific | 15596026 | do ekstrakcji RNA |
| Trypsin-EDTA | Gibco (Thermo Fisher) | 25200056 | Wykorzystywany do enzymatycznego trawienia chrząstki stawowej w celu izolowania chondrocytów |
| Kolagenaza typu II (0,02%) | Worthington Biochemical | CLS-2 | Trawi tkankę chrząstki w celu izolacji chondrocytów |
| β-przeciwciało katenowe | Santa Cruz Biotechnology | SC-7963 | Wewnętrzne przeciwciało referencyjne do normalizacji Western blot |
Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.