Artykuł badawczy

Analiza różnicowa zawartości składników odżywczych i metabolizmu kamelii oleifera w różnych okresach wzrostu

158 wyświetleń

⸱

DOI:

10.3791/69560

⸱

17 marca 2026

 ,  ,  ,  ,  , 
1College of Resources and Environmental Engineering, West Anhui University, 2Anhui Provincial Engineering Laboratory for Conservation and Sustainable Utilization of Traditional Chinese Medicine Resources, West Anhui University, 3Anhui Key Laboratory of Biomimetic Sensing and Detection Technology, West Anhui University, 4College of Forestry and Landscape Architecture, Anhui Agricultural University, 5College of Life Sciences, Anhui Agricultural University, 6Traditional Chinese Medicine Institute of Anhui Dabie Mountain, West Anhui University

W tym artykule

Podsumowanie

Niniejszy artykuł przedstawia protokół mający na celu dostarczenie pierwszego raportu dotyczącego zawartości składników odżywczych i powiązanych szlaków metabolicznych liści C. oleifera na trzech etapach wzrostu i rozwoju oraz stanowi podstawę do zrozumienia molekularnego mechanizmu starzenia się liści.

Streszczenie

Aby wskazać zmiany w zawartości składników odżywczych, ekspresji genów związanych z metamorfozą azotu oraz metabolizmie skrobi i sacharozy u C. oleifera w różnych okresach wzrostu, liście odmiany C. oleifera 'Dabieshan 1' zostały zebrane w okresie młodocianym ( 2-letni C. oleifera), wczesnym stadium owocowania (6-letni C. oleifera) oraz szczytowym stadium owocowania (10-letni C. oleifera)), które zostały wybrane jako materiały eksperymentalne. Określenie zawartości składników odżywczych oraz analiza sekwencjonowania transkryptomu przeprowadzono na próbkach liści we wczesnym stadium kwitnienia, systematycznie badając zawartość składników odżywczych i powiązanych szlaków metabolicznych C. oleifera w różnych okresach wzrostu. Wyniki wyróżniły 9 homologicznych genów związanych z metabolizmem azotu oraz 24 związane z metabolizmem skrobi i sacharozy, odpowiednio, po porównaniu liści C. oleifera zebranych zarówno w okresie młodości, jak i szczytu owocowania w bazie danych KEGG. Wraz ze wzrostem starzenia drzew zmieniają się metabolizm azotu oraz szlaki metaboliczne skrobi i sacharozy w liściach C. oleifera. C. oleifera wzmacniałaby zarówno szlak amoniako-liazy fenylalaninowej, jak i biosyntezę sacharozy. Ostatecznie doprowadziły one do zwiększonego poziomu rozpuszczalnych białek i cukrów rozpuszczalnych w liściach C. oleifera . Badanie to dostarcza nowych informacji na temat mechanizmów zmian metabolizmu azotu, metabolizmu skrobi i sacharozy oraz zawartości składników odżywczych podczas przemiany C. oleifera z wzrostu wegetatywnego w rozrodczy. Oferuje teoretyczne źródła do zrozumienia okresu owocowania oraz stosowania nawozów liściowych dla roślin w celu wspomagania kwitnienia i owocowania.

Wprowadzenie

W okresie młodocianym C. oleifera zazwyczaj posiada niepodzielny główny pęd i głównie podlega wzrostowi wegetatywnemu, nie mając zdolności do procesów rozrodczych, takich jak różnicowanie pąków kwiatowych i kwitnienie1. Podczas szczepienia siewek C. oleifera powszechną praktyką jest wykorzystanie wiosennych pędów wchodzących w dorosłe stadium jako odczółków, ponieważ mają zdolność do wywoływania kwitnienia 2,3,4. Jednak we wczesnym stadium sadzenia C. oleifera w stadium młodocianym może mieć trudności z tworzeniem pąków kwiatowych i przechodzić różnicowanie pąków kwiatowych z powodu intensywnego wzrostu wegetatywnego, ponieważ warunki środowiskowe mogą ograniczać tworzenie pąków kwiatowych. Niemniej jednak, gdy C. oleifera przechodzi przez stadium młodociane do okresu pierwotnego owocowania, a ostatecznie osiąga szczyt owocowania, stopniowo rozwija zdolność do normalnego tworzenia pąków kwiatowych i kwitnienia. C. oleifera cechuje się złożonym kształtem, jednoczesnymi owocami i kwiatami5. W początkowym stadium owocowania C. oleifera może wydać kilka kwiatów, ale gdy wchodzi w szczytowy etap owocowania, wydaje się ich więcej kwiatów. Na szczytowym etapie owocowania C. oleifera dominuje wzrost rozrodczy, któremu towarzyszy zwiększone zapotrzebowanie na światło, temperaturę, wodę i składniki odżywcze. Jest oczywiste, że drzewa drzewiaste, takie jak C. oleifera, mają długi okres wzrostu wegetatywnego przed kwitnięciem, co ogranicza możliwość skrócenia cyklu uprawy i osiąga wczesną wysoką produktywność6.

Azot jest niezwykle ważny dla wzrostu i rozwoju roślin. Różne typy roślin mają różne ilości azotu, a nawet w obrębie tego samego gatunku występują znaczące różnice w zawartości azotu w różnych okresach wzrostu. W miarę przechodzenia roślin w fazę wzrostu rozrodczego azot stopniowo gromadzi się w narządach takich jak kwiaty, owoce i nasiona7. Azot jest niezbędny dla enzymów, białek, specyficznych hormonów, kwasów nukleinowych i innych niezbędnych substancji, co organizuje aktywność metaboliczną8. Proces różnicowania pąków kwiatowych stanowi kluczowy punkt zwrotny, przechodzący rośliny z fazy wegetatywnej do fazy rozrodczej i obejmuje złożony proces rozwojowy. Gromadzenie składników odżywczych stanowi podstawową podstawę różnicowania pąków kwiatowych roślin9. Obecny konsensus zakłada, że skuteczna różnicacja pąków kwiatowych zależy od akumulacji węglowodanów10. W trakcie różnicowania pąków kwiatowych drzew owocowych, wahania zawartości rozpuszczalnego cukru bezpośrednio lub pośrednio wpływają na ten proces10. Badania wykazały ścisłą korelację między poziomem węglowodanów w liściach Prunus salicina a różnicowaniem pąków kwiatowych, ponieważ poziom rozpuszczalnego cukru jest wyższy w fazie fizjologicznej różnicowania pąków kwiatowych niż w okresie morfologicznym różnicowania pąków kwiatowych, ponieważ P. salicina przechodziła szybkie wyczerpanie węglowodanów podczas różnicowania pąków kwiatowych11. Niemniej jednak istnieją doniesienia wskazujące, że nie zaobserwowano istotnych wahań zawartości skrobi rozpuszczalnej u Ficus carica podczas różnicowania pąków kwiatowych12. Rośliny wiecznie zielone gromadzą skrobię w jajniku podczas wiosennego okresu różnicowania pąków kwiatowych, podczas gdy rośliny opadające liście magazynują skrobię podczas okresu spoczynku pąków13. Na podstawie powyższych informacji możemy stwierdzić, że występują różnice w trajektoriach zmian zawartości węglowodanów między różnymi gatunkami podczas różnicowania pąków kwiatowych. Ying i in.14 analizowali wzorce ekspresji kluczowych genów enzymów związanych z podstawowymi procesami szlaków meteorologicznych, takimi jak metabolizm azotu oraz metabolizm sacharozy i skrobi, na dwóch różnych etapach różnicowania pąków kwiatowych u Vernicia fordii. Analiza ta została połączona z dynamicznymi zmianami w fizjologicznych i biochemicznych wskaźnikach pąków kwiatowych drzewa tungowego, dostarczając szczegółowego wyjaśnienia akumulacji, wykorzystania, transportu i rozmieszczenia składników odżywczych podczas różnicowania pąków kwiatowych drzewa tungowego 8,14. Badania Lai Chengchuna i in. wykazały, że usunięcie dwóch liści może modulować ekspresowane geny: syntazę fosforanową sacharozy (SPS), bezkręgową obojętną (NI), bezkręgową błonę komórkową (CWI) oraz α-amylazę (AMY), co sprzyja syntezie sacharozy i późniejszemu gromadzeniu skrobi, zapewniając niezbędne ramy żywieniowe niezbędne do dojrzewania owoców, kiełkowania pędów i kwitnienia13,15.

Jednak badania dotyczące zmian zawartości składników odżywczych, metabolizmu azotu oraz metabolizmu skrobi i sacharozy u C. oleifera na różnych etapach były rzadko publikowane. Większość badań koncentrowała się na tworzeniu map polimorfizmu pojedynczego nukleotydu (SNP), opracowywaniu markerów SSR oraz analizie fizjologicznych i molekularnych odpowiedzi C. oleifera w warunkach niskich lub wysokich temperatur 16,17,18,19,20. Dlatego w tym badaniu wybrano popularną odmianę C. oleifera "Dabieshan 1", a próbki liści wiosennych pędów w różnych okresach wzrostu (stadium młodociane, początkowe owocowanie i szczytowe stadium owocowania) C. oleifera zostały zebrane do analizy sekwencjonowania składników odżywczych i transkryptomowych. Celem było zidentyfikowanie różnic w zawartości składników odżywczych, metabolizmie azotu oraz metabolizmie ekspresji genów sacharozy i skrobi w różnych fazach procesu wzrostu i rozwoju obserwowanych w liściach C. oleifera. Wyjaśnienie szlaków metabolizmu azotu, sacharozy i skrobi oraz ich relacji z powiązanymi składnikami odżywczymi może położyć fundament do badania mechanizmu różnicowania pąków kwiatowych C. oleifera oraz rzucić światło na molekularne mechanizmy leżące u podstaw kwitnienia C. oleifera.

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Protokół

1. Materiały eksperymentalne

Liście C. oleifera 'Dabieshan 1' zbierano na trzech kluczowych etapach rozwoju: stadium młodociane, około 2. roku życia; Osoba przechodzi w wczesną fazę owocowania około 6 lat, a szczyt osiąga około 10 lat. Wszystkie rośliny C. oleifera na powyższych trzech etapach rozwojowych zostały posadzone przy użyciu sadzonek hodowanych w pojemnikach o tej samej specyfikacji co C. oleifera 'Dabieshan 1'. Właściwości fizyczne i chemiczne gleby na terenach leśnych C. oleifera przedstawiono w Tabeli 1.

2. Przegląd miejsca kolekcji

Materiały eksperymentalne zebrano w mieście Heping, położonym w sercu prowincji Anhui. Powiat Shucheng leży w centralnym regionie prowincji, należąc do peryferyjnego obszaru Gór Dabie. Współrzędne to 31°11′N, 116°47′E, ze średnią wysokością nad poziomem 90 m. Gleba klasyfikowana jest jako żółto-brązowa. Region charakteryzuje się wilgotnym subtropikalnym klimatem monsunowym, utrzymującym średnią roczną temperaturę 15,6 °C i zazwyczaj około 1 100 mm opadów rocznie, cieszy się około 1 969 godzinami słońca rocznie oraz okresem wolnym od przymrozków trwającym 224 dni.

3. Pobieranie próbek i wstępne przetwarzanie

Próbki zostały wybrane w okresie przedkwitnienia (koniec września). Na każdy etap rozwoju wybrano rośliny C. oleifera o podobnym, spójnym i silnym przyrostzie. Z każdej rośliny usuwano trzeci liść od góry do dołu, który umiarkowanie wyrastał wiosenne pędy ze wschodu, zachodu, południa i północy zewnętrznej części korony C. oleifera . Próbki oznaczono literami seryjnymi i numerami: YAT1, YAS2 i YAT3 dla liści C. oleifera w stadium młodocianym, badany przechodzi odpowiednio do wczesnej fazy owocowania oraz okresu szczytowego owocowania. Były one zbierane i przechowywane w ciekłym azocie. Z każdego etapu wybrano pięć losowych drzew próbek jako jedno biologiczne replikowanie, a trzy biologiczne replikacje zostały utworzone we wszystkich etapach. Wybrane okazy zostały tego samego dnia przywiezione do laboratorium i zachowane w temperaturze -80 °C.

4. Określanie indeksu fizjologicznego

Zawartość rozpuszczalnego cukru była określana metodą kolorymetryczną antronu21. Zawartość węgla organicznego została określona metodą utleniania dichromianu potasu – miarkowania siarczanem żelaza22. Zawartość rozpuszczalnego białka uzyskano metodą Coomassie brilliant blue23. Całkowite stężenie azotu zostało zmierzone metodą Kjeldahla22.

5. Przeprowadzono izolację kompletnego RNA, po czym zbudowano bibliotekę komplementarnego DNA (cDNA) i przeprowadzono sekwencjonowanie

Całkowite RNA było pozyskiwane z liści C. oleifera na różnych etapach za pomocą zestawu do ekstrakcji RNA roślin. Całkowite stężenie RNA zostało określone za pomocą spektrofotometru widzialnego w pełnym spektrum światła ultrafioletowego. Integralność i klarowność RNA zostały określone przez analizator biologiczny. Po stworzeniu i weryfikacji biblioteki cDNA przeprowadzono sekwencjonowanie transkrypomiczne z wykorzystaniem platformy sekwencjonowania po sekwencjonowaniu o wysokiej przepustowości. Procedura sekwencjonowania dała pojedyncze odczyty, z których każdy obejmował 100 par zasad24, 25, 26. Wyniki wyrównania procesów sekwencyjnych zostały poddane analizie statystycznej przy użyciu oprogramowania RSEM27. Geny różnicowej ekspresji (DEG) na różnych etapach rozwoju C. oleifera zostały zidentyfikowane za pomocą oprogramowania do analizy różniczkowej DESeq28,29.

6. De novo assembly i adnotacje UniGene

Do filtrowania surowych danych używano SeqPrep http://github.com/jstjohn/SeqPrep) oraz Sickle (http://github.com/najoshi/sickle), w tym usuwając sekwencje niskiej jakości i skażone adaptery. Następnie czyste odczyty uzyskane z każdej próbki były składane za pomocą oprogramowania Trinity30,31. Wszystkie zebrane transkrypcje zostały poddane wyrównaniu BLASTX względem Swiss-Prot, klastrów grup ortologicznych dla kompletnych genomów eukariotycznych oraz baz danych KEGG w kolejności sekwencyjnej. Typowa wartość E (Cut-off E-value <10−5) była ustawiana do pobierania adnotacji funkcji. KEGG został zastosowany do analizy powiązanych szlaków metabolicznych32.

7. Funkcjonalna adnotacja genów i analiza genów różnicowo ekspresowanych

Statystycznie analizowano obfitość genów i izoform za pomocą oprogramowania RSEM27. Ustalono próg (P < 0,05, FDR < 0,01, |log2FC|>1) w celu identyfikacji genów różnicowo ekspresyjnych (DEGs). Oczekiwana liczba fragmentów na kb transkrypcji na milion zmapowanych fragmentów (FPKM) jest obecnie najczęściej stosowaną metodą szacowania poziomu ekspresji genów28. Obliczono wartości FPKM wszystkich genów z trzech różnych etapów wzrostu i rozwoju (YAT1, YAS2 i YAT3). Przeprowadzono hierarchiczną analizę klasteryzacji w celu zbadania różnic poziomów ekspresji genów. Tymczasem szlak KEGG został przygotowany do identyfikacji DEG istotnie wzbogaconych w szlaki metaboliczne przy P skorygowanym Bonferronim ≤ 0,05 w porównaniu do całego transkryptomu przy użyciu KOBAS29.

8. Metody analityczne

Dane zostały przedstawione w Excelu do obliczenia wartości średnich i odchyleń standardowych. Analiza wariancji (ANOVA) została wykorzystana do analizy statystycznej przez oprogramowanie SPSS, a test wielokrotnego zakresu Duncana został wykorzystany do oceny istotnych różnic w zawartości składników odżywczych między trzema etapami. Następnie istotne różnice między grupami zostały określone za pomocą wielokrotnych porównań post-hoc metodą Najmniej Istotnej Różnicy (LSD). Wykresy i wykresy były generowane za pomocą oprogramowania Origin do wizualizacji wyników eksperymentalnych i analitycznych. Nie oznaczono istotności statystycznej jako 'ns' (P > 0,05). Statystycznie istotne różnice oznaczano odpowiednio jako '*' (P < 0,05), '**' (P < 0,01), '***' (P < 0,001) i '****' (P < 0,0001).

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Wyniki

Porównanie zawartości związków azotowych w liściach C. oleifera w różnych okresach wzrostu

Azot odgrywał kluczową rolę w wspomaganiu wzrostu i rozwoju roślin, wywierając głęboki wpływ na ich procesy rozrodcze. W związku z tym zrozumienie ogólnej zawartości azotu w roślinach ma duże znaczenie dla badań naukowych. Całkowita zawartość azotu w liściach C. oleifera wykazywała stopniowe spadki, gdy roślina dojrzewała od stadium m...

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Dyskusja

Rozpuszczalne cukry służą jako niezbędne źródła energii i składniki strukturalne roślin, napędzając różne aktywności fizjologiczne i procesy biosyntetyczne10. Zmiany w zawartości rozpuszczalnego cukru bezpośrednio lub pośrednio wpływają na proces przekształcania pąków wegetatywnych w pąki kwiatowe na drzewach owocowych10. Niektóre badania wykazały, że konieczność obfitości rozpuszczalnych cukrów była przyczyną różnicowania pąków kwiatowych drzew owocowych3...

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Podziękowania

Prace te były wspierane przez Prowincjonalną Fundację Nauk Przyrodniczych Anhui dla Młodych Naukowców (2008085QC135), projekt badawczy Postdoktorat Research Workstation Kolegium Wanxi (WXBSH2020003), Program Badań Podoktorskich Prowincji Anhui (2024A767), Program Delegacji Przedsiębiorców Naukowych Anhui Sci-Tech (2024jsqygz79) oraz Projekt Badań i Innowacji Leśnych Prowincji Anhui, Dokument nr 4 [2024].

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Materiały

Lista materiałów użytych w tym artykule
NazwaFirmaNumer katalogowyKomentarze
Bioanalizator 2100Agilent Technologies, Inc. (USA)—Wykorzystywane do oceny integralności i klarowności RNA
Oprogramowanie DESeqKod źródłowy3.2Wykorzystywane do analizy różniczkowej ekspresji
Zestaw EASYspin Plus (całkowita izolacja RNA)Aidlab Biotechnology Co., Ltd. (Chiny)RN 28 (Aidlab)Wykorzystywany do całkowitej ekstrakcji RNA z liści C. oleifera
Platforma sekwencjonowania HiSeq 2000Illumina (Chiny)—Używany do sekwencjonowania transkryptomu, długość odczytu 100 bp
Metoda Kjeldahla/Kjeltec 2300Foss Tecator (Szwecja)—Dla całkowitego stężenia azotu (Bao 2007)
Metoda określania białek rozpuszczalnychSkoncentrowany kwas siarkowy6104-58-1 (Aladyn)Metoda opracowana przez Chen Jianxuna (Chen i in. 2015)
Metoda określania cukru rozpuszczalnegoAnthrone90-44-8 (Macklin)Zhang Zhilang' s (Zhang i in. 2003)
Utlenianie dichromianu potasu – metoda miareczkowania siarczanem żelazaDichromian potasu, siarczan żelazaNA (Aladyn) 7782-63-0(Aladyn)Dla wyznaczania węgla organicznego (Bao 2007)
Oprogramowanie RSEMKod źródłowy1.2.3Wykorzystywane do analizy statystycznej wyrównania sekwencji
Spektrofotometr Thermo Scientific NanoDrop 2000C  ABI (USA)—Wykorzystywane do określania stężenia RNA

Bibliografia

  1. Cao, Z. H., Shu, Q. L., Dong, C. Y., Zhang, X. Variation in physiological and chemical characteristics at developmental stage in different disease-resistant varieties of Camellia oleifera. Pak J Bot. 46 (1), 207-212 (2014).
  2. Hu, J. J., et al. Comparison of dynamic changes in endogenous hormone level, water content, and water-soluble sugars in Camellia oleifera of different ages. Pak J Bot. 49 (1), 25-32 (2017).
  3. Hu, J. J., et al. Morphological, physiological and biochemical responses of Camellia oleifera to low-temperature stress. Pak J Bot. 48 (3), 899-905 (2016).
  4. Zhuang, R. L. Chinese Camellia oleifera. , China Forestry Press. Beijing. (2008).
  5. Li, Z. R., et al. Mechanics vibration model of fruit tree analysis and generalized coordinate system establishment for Camellia oleifera branches. For Mach Woodw Equip. 53 (2), 70-74 (2025).
  6. Wu, W., et al. Study on the chemical components of shoots and leaves of Camellia oleifera from different elevations. Pak J Bot. 47 (3), 1111-1114 (2015).
  7. Tan, B. Z., Close, D. C., Quin, P. R., Swarts, N. D. Nitrogen use efficiency, allocation, and remobilization in apple trees: uptake is optimized with pre-harvest N supply. Front Plant Sci. 12, 657070(2021).
  8. Luo, J., et al. Net fluxes of ammonium and nitrate in association with H⁺ fluxes in fine roots of Populus popularis. Planta. 237, 919-931 (2013).
  9. Zhang, Y. H., Liu, B. H., Kong, F. J., Chen, L. Y. Nutrient-mediated modulation of flowering time. Front Plant Sci. 14, 1101611(2023).
  10. Zhang, W. N., Li, J. J., Zhang, W. L., Njie, A., Pan, X. J. The changes in C/N, carbohydrate, and amino acid content in leaves during female flower bud differentiation of Juglans sigillata. Acta Physiol Plant. 44, 1-12 (2022).
  11. Lee, H. B., Jeong, S. J., Lim, N. H., An, S. K., Kim, K. S. Correlation between carbohydrate contents in the leaves and inflorescence initiation in Phalaenopsis. Sci Hortic. 265, 265109270(2020).
  12. Wan, X., et al. Auxin and carbohydrate control flower bud development in Anthurium andraeanum during early stage of sexual reproduction. BMC Plant Biol. 24 (1), 159(2024).
  13. Mesejo, C., Martínez-Fuentes, A., Reig, C., Agustí, M. The flower to fruit transition in Citrus is partially sustained by autonomous carbohydrate synthesis in the ovary. Plant Sci. 285, 224-229 (2019).
  14. Sun, Y., Liu, R., Luo, M., Li, J. A. Molecular response of Tunglfy gene to exogenous hormones in flower buds differentiation period. J Cent South Univ For Technol. 34 (4), 25-29 (2014).
  15. Lai, C. C., et al. Effect of shoot pinching on growth, sucrose and starch metabolism in 'Kyoho' grape. J Trop Subtrop Bot. 30 (5), 623-635 (2022).
  16. Cao, R. L., et al. Identification of NAC gene in Camellia oleifera and analysis of its response to drought stress. Acta Agric Univ Jiangxi. 43 (6), 1357-1370 (2021).
  17. Lin, P., Wang, K. L., Yao, X. H., Ren, H. D. Development of DNA molecular ID in Camellia oleifera germplasm based on transcriptome-wide SNPs. Sci Agric Sin. 56 (2), 217-235 (2023).
  18. Song, J. M., Li, X. Y., Zhang, S. H., Lai, H. Development and evaluation of SSR markers based on transcriptome sequencing of Camellia in Hainan Province. Mol Plant Breed. 20 (20), 6791-6801 (2022).
  19. Tang, R. Y., Sun, M. H., Wu, L. L., Li, J. A., Wang, N., Xiong, L. Alleviating effect of different exogenous substances on floral organs of Camellia oleifera under low temperature stress. Plant Physiol. 59 (1), 219-230 (2023).
  20. Guo, H. Y., Tan, X. J., Tian, F., Zhong, Q. P. The relationship between floral initiation and spring-shoot growth in Camellia oleifera. For Res. 35 (3), 123-130 (2022).
  21. Zhang, Z. L., Qu, W. J. Plant Physiology Laboratory Manual. , Higher Education Press. Beijing. (2003).
  22. Bao, S. D. Soil Chemical Analysis. , China Agricultural Press. Beijing. (2007).
  23. Chen, J. X., Wang, X. F. Plant Physiology Laboratory Manual. , South China University of Technology Press. Guangzhou. (2015).
  24. Himanshu, S., et al. Identification and cross-species transferability of 112 novel unigene-derived microsatellite markers in tea (Camellia sinensis). Am J Bot. 133, e133-e138 (2011).
  25. Knight, M. R., Knight, H. Low-temperature perception leading to gene expression and cold tolerance in higher plants. New Phytol. 195 (4), 737-751 (2012).
  26. Weiser, C. Cold resistance and injury in woody plants: knowledge of hardy plant adaptations to freezing stress may help us to reduce winter damage. Science. 169 (3952), 1269-1278 (1970).
  27. Iseli, C., Jongeneel, C. V., Bucher, P. ESTScan: A program for detecting, evaluating, and reconstructing potential coding regions in EST sequences. Intell Syst Mol Biol. 99, 138-148 (1999).
  28. Sung, S., Amasino, R. M. Vernalization in Arabidopsis thaliana is mediated by the PHD finger protein VIN3. Nature. 427 (6970), 159-164 (2004).
  29. Xie, C., et al. KOBAS 2.0: A web server for annotation and identification of enriched pathways and diseases. Nucleic Acids Res. 39 (suppl_2), W316-W322 (2011).
  30. Zhang, Y., Liu, Q. L. Research progress on the molecular mechanisms of plant flower development. Chin Bull Bot. 20 (5), 589-601 (2003).
  31. Schmitz, R. J., Hong, L., Michaeles, S., Amasino, R. M. FRIGIDA-ESSENTIAL 1 interacts genetically with FRIGIDA and FRIGIDA-LIKE 1 to promote the winter-annual habit of Arabidopsis thaliana. Development. 132, 5471-5478 (2005).
  32. Kanehisa, M., Goto, S. KEGG: Kyoto Encyclopedia of Genes and Genomes. Nucleic Acids Res. 27 (1), 29-34 (1999).
  33. Fan, W. G., et al. Study on the changes of endogenous hormones, carbohydrate and nitrogen nutrition at the flower bud differentiation stage of Rosa roxburghii. J Fruit Sci. 20 (1), 40-43 (2003).
  34. Chen, J. Z. Southern Version of Pomology Cultivation Theories. , 4th Edition, China Agriculture Press. Beijing. (2003).
  35. Liu, Z. L., Lin, S. Q., Chen, H. B. Dynamics of protein during flower-bud formation in Eriobotrya japonica. Subtrop Plant Sci. 37 (2), 6(2008).
  36. Poorter, L., Bongers, F. Leaf traits are good predictors of plant performance across 53 rain forest species. Ecology. 87 (7), 1733-1743 (2006).
  37. Lv, Q., Chen, Y. Y., Yu, Z. D., Ma, J. L. Functional traits and stoichiometric analysis of Camellia osmantha at the early fruiting stage. Mol Plant Breed. , 1-12 (2023).
  38. Li, J. X., Huang, H. L., Zhao, Y. C., Qiao, X. Y. Status of Camellia oleifera germplasm resources and breeding directions in Guangdong. Guangdong Agric Sci. 38 (20), 34-35 (2011).
  39. Li, W. Q., Fan, X. L., Lin, C. H. Effects of nitrogen on flowering of fruit trees. Chin J Soil Sci. (06), 1203-1207 (2007).
  40. Thiele, J., Jørgensen, R. B., Hauser, T. P. Flowering does not decrease vegetative competitiveness of Lolium perenne. Basic Appl Ecol. 10 (4), 340-348 (2009).
  41. Peña, L., et al. Constitutive expression of ArabidopsisLEAFY or APETALA1 genes in citrus reduces their generation time. Nat Biotechnol. 19 (3), 263-267 (2001).
  42. Pillitteri, L. J., Lovatt, C. J., Walling, L. L. Isolation and characterization of LEAFY and APETALA1 homologues from Citrus sinensis L. Osbeck 'Washington'. J Am Soc Hortic Sci. 129 (6), 846-856 (2004).

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Przedruki i uprawnienia

Poproś o pozwolenie na ponowne wykorzystanie tekstu lub ilustracji tego artykułu JoVE

Poproś o pozwolenie

Tagi

Metabolizm azotumetabolizm skrobimetabolizm sacharozyekspresja gen wsekwencjonowanie transkryptomubia ka rozpuszczalnecukry rozpuszczalne

Powiązane artykuły