$$\rightleftharpoonup{xx}$$
$$\longleftharp{xx}$$,
$$\longrightharp{xx}$$,
Modyfikacje posttranslacyjne histonów (hPTM) są centralnymi regulatorami organizacji chromatyny i ekspresji genów. Ich zaburzenia regulacji są związane z rozwojem, rakiem i starzeniem się. Chociaż spektrometria mas jest metodą wyboru do badania hPTM, większość protokołów jest przeznaczona dla próbek masowych i nie jest w stanie rozwiązywać zmienności między komórkami. Rozszerzenie analizy PTM histonów do poziomu pojedynczych komórek jest więc niezbędne, ale technicznie wymagające, ponieważ histony są niską ilością, bogate w lizynę i silnie modyfikowane.
Tutaj opisujemy zautomatyzowany workflow proteomiki jednokomórkowej do analizy PTM histonów z wykorzystaniem nano-cieczy obsługiwającej cieczy. System umożliwia przetwarzanie pojedynczych komórek na skalę nanolitrową przy minimalnym obsłudze i wysokiej powtarzalności. Workflow obejmuje trawienie za pomocą proteazy ArgC Ultra, która rozszczepia reszty argininy i eliminuje konieczność wykonywania etapów derytacji blokujących lizynę, typowych dla proteomiki histonów. Aby umożliwić ilościowe porównanie między stanami, stosujemy strategię znakowania dwu-plexowego z bezwodkiem propionowym i jego deuterowanym odpowiednikiem, anhydrydem propionowym-d10. To połączenie automatycznego przygotowania próbki, izotopowego multipleksowania oraz trawienia ArgC Ultra skutkuje uprościonym i czułym protokołem analizy PTM histonów pojedynczych komórek.
Metoda pozwala badać heterogeniczność chromatyny oraz wpływ perturbacji epigenetycznych w rozdzielczości pojedynczej komórki. Aby zademonstrować ten proces, wygenerowaliśmy sferoidy z komórek raka wątrobowokomórkowego HepG2/C3A i potraktowaliśmy je mięczanianem sodu, inhibitorem deacetylazy histonowej indukującym hiperacetylację.