$$\rightleftharpoonup{xx}$$
$$\longleftharp{xx}$$,
$$\longrightharp{xx}$$,
Protokół badań na zwierzętach został zatwierdzony przez Komitet ds. Opieki i Wykorzystania Zwierząt Uniwersytetu Medycznego w Chongqing (IACUC-CQMU-2025-10073).
Przygotowanie frakcji wzbogaconej laktonem seskwiterpenem (SLEL)
Suszone materiały lecznicze Eupatorium lindleyanum DC. zostały rozdrobnione i poddane ekstrakcji refluksu dwukrotnie z użyciem 70% (V/V) etanolu pod obniżonym ciśnieniem. Każda ekstrakcja przeprowadzono z stosunkiem rozpuszczalnika do materiału 10:1 (v/w) przez 2 godziny. Połączone ekstrakty były filtrowane, koncentrowane pod obniżonym ciśnieniem w temperaturze ≤60 °C, a następnie liofilizowane próżniowo, aby uzyskać surowy proszek z ekstraktu etanolowego.
Wysuszony ekstrakt został całkowicie rozpuszczony w wodzie destylowanej (końcowe stężenie: 100 mg/mL) i poddano kolejno chromatografii żywicy poliamidowej, a następnie przeprowadzono chromatografię z żywicy makroporowej D101 w celu wzbogacenia laktonów seskwiterpenowych. Po osiągnięciu równowagi adsorpcyjnej żywica D101 była myta wodą destylowaną, aby usunąć zanieczyszczenia polarne, a następnie eluowana bezwodnym etanolem. Po elucii etanolu zebrana frakcja była koncentrowana pod obniżonym ciśnieniem i poddawana liofilizacji, aby uzyskać frakcję SLEL, przechowywaną w temperaturze −20 °C do czasu użycia.
Separację przeprowadzono na platformie UPLC wykorzystującej binarny system fazy komórkowej z acetonitrylem i 0,1% (v/v) kwasu mrówkowego w wodzie. Program gradientu obejmował początkowe 25-minutowe utrzymanie izokratyczne przy niskiej zawartości organicznej, krótki liniowy etap do 70% acetonitrylu, fazę krokową o wysokiej zawartości organicznej przy 90% acetonitrylu oraz ostatni krok równoważenia powrotu do warunków początkowych. System działał przy napięciu 0,25 mL·min⁻1 przy temperaturze kolumny 35 °C i objętości wtrysku 0,1 μL (Ilustracja uzupełniająca S1).
Zwierzęta
W tym badaniu wykorzystano łącznie 36 samców szczurów Sprague–Dawley (200 ± 20 g) oraz 36 samców myszy BALB/c (20 ± 2 g). Zwierzęta były trzymane w ustandaryzowanych warunkach (22 ± 2 °C, 55 ± 5% wilgotności, 12-godzinny cykl światła/ciemności) z bezpłatnym dostępem do jedzenia i wody. Zwierzęta były aklimatyzowane przez 7 dni przed eksperymentami i codziennie monitorowane pod kątem ogólnego stanu zdrowia. Wszystkie procedury przeprowadzono w celu minimalizacji cierpienia zwierząt, a przed pobraniem krwi i pobraniem tkanek zastosowano znieczulenie.
Obrzęk ucha wywołany ksylenem u myszy
Model obrzęku ucha myszy został ustanowiony zgodnie z opisaniem9. Po aklimatyzacji myszy zostały losowo podzielone na sześć grup (n = 6 na grupę): grupy kontrolne (CG), modelowe (MG), deksametazon (DEX, 10 mg/kg) oraz SLEL w dawce niskiej dawki (75 mg/kg), średniej dawce (150 mg/kg) oraz grupy wysokich dawek (300 mg/kg). Wszystkie terapie były podawane doustnie raz dziennie przez 7 kolejnych dni (ostateczna dawka: 10 mL/kg). Po 1,5 godziny po ostatecznym podaniu zapalenie wywołano przez równomierne nałożenie 30 μL ksylenu na obie powierzchnie prawego ucha, z wyjątkiem grupy kontrolnej. Trzydzieści minut później myszy zostały znieczulone, pobrano próbki krwi i uzyskano 8 mm okrągłe ciosy w uszach z identycznych pozycji anatomicznych obu uszu.
Obrzęk łapy wywołany karagenem u szczurów
Model obrzęku łapy szczura został opracowany przy użyciu karagenanu, jak opisanowcześniej 10. Szczury zostały losowo przydzielone do sześciu grup (n = 6 na grupę): grupy z CG, MG, DEX (5 mg/kg) i SLEL w dawce niskiej dawki (50 mg/kg), średniej dawki (100 mg/kg) oraz wysokiej dawki (200 mg/kg). Leczenie podawano doustnie raz dziennie przez 7 dni (10 mL/kg). Bazowe objętości łap mierzono przed ostatecznym podaniem gry. Trzydzieści minut po ostatnim podaniu wstrzyknięto podskórnie 0,1 mL roztworu 1% (w/v) karagenianu do powierzchni podeszwowej prawej tylnej łapy. Objętość łapy mierzono po 1, 2, 3 i 4 godzinach po wstrzyknięciu za pomocą pletysmometru. Obrzęk łapy obliczono jako:
Obrzęk łapy (%) = (Vt − V0) / V0 × 100%
Badanie histologiczne
Tkanki uszu i łapy pobrano bezpośrednio po ocenie funkcjonalności. Tkanki były utrwalane w 10% neutralnej buforowanej formalinie przez 72 godziny w temperaturze pokojowej, osadzane w parafinie, pocięte (5 μm) i barwione H&E zgodnie ze standardowymi protokołami11.
Test immunosorbentny związany z enzymami (ELISA)
Próbki surowicy pobierano przez wirowanie w 3 000 × g przez 10 minut w temperaturze 4 °C. Poziomy TNF-α, IL-6 i IL-1β były ilościowo określane za pomocą komercyjnie dostępnych zestawów ELISA zgodnie ze standardowymi protokołami.
Analiza zachodniej plamy
Całkowite ekstrakty białkowe przygotowywano z tkanek uszu i łapy przy użyciu buforu lizy RIPA wzbogaconego o inhibitory proteazy i fosfatazy. Stężenia białek zostały ilościowo określone za pomocą testu BCA, a równe ilości białka (30 μg na próbkę) zostały rozdzielone za pomocą SDS-PAGE i przeniesione na błony PVDF. Błony były blokowane 5% mlekiem beztłuszczowym przez 1 godzinę w temperaturze pokojowej, po czym nastąpiła inkubacja z przeciwciałami pierwotnymi w temperaturze 4 °C przez noc oraz przeciwciałami wtórnymi sprzężonymi z HRP przez 1 godzinę w temperaturze pokojowej. Pasma immunoreaktywne wykryto za pomocą zwiększonej chemiluminescencji i zmierzono ilościowo za pomocą oprogramowania ImageJ.
Ilościowe PCR w czasie rzeczywistym (qRT-PCR)
Całkowite RNA zostało wyizolowane z tkanek uszu i łapy przy użyciu odczynnika ekstrakcyjnego RNA wymienionego w Tabeli Materiałów. Jeden mikrogram całkowitego RNA został przepisany odwrotnie do cDNA przy użyciu komercyjnego zestawu do transkrypcji odwróconej zgodnie z instrukcjami producenta. Ilościowe PCR wykonano przy użyciu chemii SYBR Green z zapalnikami specyficznymi dla genów (Tabela 1) w objętości reakcji 10 μL według protokołu amplifikacji dwuetapowej. Szczegółowe warunki transkrypcji odwrotnej oraz parametry cykliczne PCR znajdują się w sekcji Protokoł. Względne poziomy transkrypcji obliczono metodą 2⁻ΔΔCT , przy czym Gapdh użyto jako wewnętrznego genu referencyjnego.
Dane i analiza statystyczna
Dane wyrażane są jako średnia ± SD. Porównania statystyczne między dwiema grupami przeprowadzono za pomocą niesparowanego testu Student's t, natomiast jednokierunkowy ANOVA zastosowano do analiz obejmujących więcej niż dwie grupy. Istotność statystyczna została zdefiniowana jako p < 0,05. Istotność oznaczana jest jako # p < 0,05 oraz ## p < 0,01 w porównaniu do grupy kontrolnej (CG), oraz * p < 0,05 i ** p < 0,01 względem grupy modelowej (MG).