-1::1
Simple Hit Counter
Skip to content

Products

Solutions

×
×
Sign In

PL

EN - EnglishCN - 简体中文DE - DeutschES - EspañolKR - 한국어IT - ItalianoFR - FrançaisPT - Português do BrasilPL - PolskiHE - עִבְרִיתRU - РусскийJA - 日本語TR - TürkçeAR - العربية
Sign In Start Free Trial

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

Behavior
Biochemistry
Bioengineering
Biology
Cancer Research
Chemistry
Developmental Biology
View All
JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

Biological Techniques
Biology
Cancer Research
Immunology
Neuroscience
Microbiology
JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduate courses

Analytical Chemistry
Anatomy and Physiology
Biology
Cell Biology
Chemistry
Civil Engineering
Electrical Engineering
View All
JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

Advanced Biology
Basic Biology
Chemistry
View All
JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

Biology
Chemistry

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

Accounting
Finance
Macroeconomics
Marketing
Microeconomics

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Authors

Teaching Faculty

Librarians

K12 Schools

Biopharma

Products

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduates

JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Solutions

Authors
Teaching Faculty
Librarians
<<<<<<< HEAD
K12 Schools
Biopharma
=======
K12 Schools
>>>>>>> dee1fd4 (fixed header link)

Language

pl_PL

EN

English

CN

简体中文

DE

Deutsch

ES

Español

KR

한국어

IT

Italiano

FR

Français

PT

Português do Brasil

PL

Polski

HE

עִבְרִית

RU

Русский

JA

日本語

TR

Türkçe

AR

العربية

    Menu

    JoVE Journal

    Behavior

    Biochemistry

    Bioengineering

    Biology

    Cancer Research

    Chemistry

    Developmental Biology

    Engineering

    Environment

    Genetics

    Immunology and Infection

    Medicine

    Neuroscience

    Menu

    JoVE Encyclopedia of Experiments

    Biological Techniques

    Biology

    Cancer Research

    Immunology

    Neuroscience

    Microbiology

    Menu

    JoVE Core

    Analytical Chemistry

    Anatomy and Physiology

    Biology

    Cell Biology

    Chemistry

    Civil Engineering

    Electrical Engineering

    Introduction to Psychology

    Mechanical Engineering

    Medical-Surgical Nursing

    View All

    Menu

    JoVE Science Education

    Advanced Biology

    Basic Biology

    Chemistry

    Clinical Skills

    Engineering

    Environmental Sciences

    Physics

    Psychology

    View All

    Menu

    JoVE Lab Manual

    Biology

    Chemistry

    Menu

    JoVE Business

    Accounting

    Finance

    Macroeconomics

    Marketing

    Microeconomics

Start Free Trial
Loading...
Home
JoVE Science Education
Environmental Sciences
Hodowla i liczenie bakterii z próbek gleby
Hodowla i liczenie bakterii z próbek gleby
JoVE Science Education
Environmental Microbiology
A subscription to JoVE is required to view this content.  Sign in or start your free trial.
JoVE Science Education Environmental Microbiology
Culturing and Enumerating Bacteria from Soil Samples

2.13: Hodowla i liczenie bakterii z próbek gleby

188,470 Views
10:57 min
February 23, 2015
AI Banner

Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.

Overview

Źródło: Laboratoria dr Iana Peppera i dr Charlesa Gerby - Uniwersytet Arizony
Autorzy: Bradley Schmitz i Luisa Ikner

Gleby powierzchniowe są niejednorodną mieszaniną cząstek nieorganicznych i organicznych, które łączą się ze sobą, tworząc agregaty wtórne. Wewnątrz i pomiędzy agregatami znajdują się puste przestrzenie lub pory, które wizualnie zawierają zarówno powietrze, jak i wodę. Takie warunki tworzą idealny ekosystem dla bakterii, więc wszystkie gleby zawierają ogromne populacje bakterii, zwykle ponad 1 milion na gram gleby.

Bakterie to najprostsze mikroorganizmy, znane jako prokariota. W tej grupie prokariotycznej znajdują się drobnoustroje nitkowate znane jako promieniowce. Promieniowce są w rzeczywistości bakteriami, ale często uważa się je za wyjątkową grupę w klasyfikacji bakterii ze względu na ich nitkowatą strukturę, która składa się z wielu komórek nawleczonych ze sobą, tworząc strzępki. W tym eksperymencie wykorzystano pożywkę z glicerolem, która wybiera kolonie promieniowców podczas rozcieńczania i posiewu. Zazwyczaj promieniowce stanowią około 10% całej populacji bakterii. Bakterie i promieniowce występują w każdym środowisku na Ziemi, ale obfitość i różnorodność tych mikroorganizmów w glebie nie ma sobie równych. Drobnoustroje te są również niezbędne dla życia człowieka i wpływają na to, co ludzie jedzą, piją, oddychają lub dotykają. Ponadto istnieją gatunki bakterii, które mogą zarażać ludzi i powodować choroby, a także bakterie, które mogą wytwarzać naturalne produkty zdolne do leczenia ludzi. Promieniowce są szczególnie ważne w produkcji antybiotyków, takich jak streptomycyna. Bakterie mają kluczowe znaczenie dla obiegu składników odżywczych, wzrostu roślin i degradacji zanieczyszczeń organicznych.

Bakterie są bardzo zróżnicowane pod względem liczby gatunków, które można znaleźć w glebie, częściowo dlatego, że są zróżnicowane fizjologicznie i metabolicznie. Bakterie mogą być heterotroficzne, co oznacza, że wykorzystują związki organiczne, takie jak glukoza, do żywności i energii, lub autotroficzne, co oznacza, że wykorzystują związki nieorganiczne, takie jak siarka elementarna, do żywności i energii. Mogą być również tlenowe, wykorzystujące tlen do oddychania lub beztlenowe, wykorzystujące do oddychania połączone formy tlenu, takie jak azotany lub siarczany. Niektóre bakterie mogą wykorzystywać tlen lub połączone formy tlenu i są znane jako fakultatywne beztlenowce.

Procedure

1. Przygotowanie rozcieńczeń glebowych

  1. Aby rozpocząć procedurę, odważ 10 g próbki gleby i dodaj do 95 ml wody dejonizowanej. Dobrze wstrząsnąć zawiesiną i oznaczyć jako "A".
  2. Zanim gleba opadnie, usuń 1 ml zawiesiny sterylną pipetą i przenieś ją do 9 ml ślepej próbki wody dejonizowanej. Dokładnie odwiruj i oznacz jako "B".
  3. Powtórzyć ten etap rozcieńczania trzy razy, za każdym razem z 1 ml poprzedniej zawiesiny i 9 ml ślepej próby wody dejonizowanej. Oznacz je kolejno jako probówki C, D i E. Powoduje to seryjne rozcieńczenia od 10-1 do 10-5 gramów gleby na ml

2. Wykonywanie płytek do hodowli bakterii

  1. Aby wyhodować kolonie bakterii, weź trzy wstępnie przygotowane płytki agarowe z peptonem i drożdżami i oznacz je jako C, D i E. Próbki wirów C, D i E i odpipetuj 0,1 ml na każdą płytkę. Zwiększa to wartość rozcieńczenia jeszcze bardziej dziesięciokrotnie (C = 10-3, D = 10-4, E = 10-5).
  2. Następnie zanurz szklany rozsiewacz w etanolu. Umieść rozsiewacz w płomieniu na kilka sekund, aby zapalił się i spalił etanol. Spowoduje to wysterylizowanie rozsiewacza.
  3. Trzymaj rozsiewacz nad pierwszą płytą, aż płomień zgaśnie. Szybko otwórz talerz, trzymając pokrywkę blisko siebie. Przyłóż rozsiewacz do agaru z dala od inokulum (Inoculum = komórki użyte do rozpoczęcia hodowli) do ostygnięcia, a następnie rozprowadź kroplę inokulum po powierzchni agaru, aż znikną ślady wolnego płynu. Załóż pokrywę płyty.
  4. Ponownie podpal rozsiewacz i powtórz proces z następną płytką, pracując szybko, aby nie zanieczyścić agaru organizmami unoszącymi się w powietrzu
  5. Inkubuj płytki bakteryjne w temperaturze pokojowej przez 1 tydzień. Upewnij się, że płytki są odwrócone podczas inkubacji, aby krople wilgoci z kondensatu nie spadały na powierzchnię agaru.

3. Wykonywanie płytek do smarowania promieniowców

  1. Aby wyhodować promieniowce, weź trzy wstępnie przygotowane płytki glicerolu-kazeiny i oznacz je jako B, C i D. Korzystając z technik pokazanych wcześniej, rozprowadź płytkę 0,1 ml z zawiesin B, C i D. Niższe rozcieńczenia są stosowane, ponieważ promieniowce są zwykle obecne jako 1/10th populacji bakterii (B = 10-2, C = 10-3, D = 10-4).
  2. Inkubować płytki promieniowców (odwrócone) w temperaturze pokojowej przez 2 tygodnie.

4. Liczba bakterii i promieniowców

  1. Po inkubacji dokładnie zbadaj wszystkie płytki bakterii i zwróć uwagę na różnice w wielkości i kształcie kolonii. Uprawiane na agarze bakterie wytwarzają śluzowate kolonie od bezbarwnych do jasnopomarańczowych, żółtych lub różowych. Natomiast kolonie promieniowców są kredowe, jędrne, skórzaste i pękają pod naciskiem, podczas gdy inne kolonie bakteryjne będą się rozmazywać. Pozwala to na odróżnienie kolonii przez dotyk za pomocą sterylnej pętli.
  2. Policzyć i zapisać liczbę kolonii bakteryjnych, w tym promieniowców. Licz tylko płytki z 30-200 koloniami na płytkę.

5. Izolacja czystych kultur

  1. Wybierz poszczególne kolonie bakteryjne z dowolnej płytki. Można wybrać więcej kolonii, jeśli istnieje szczególne zainteresowanie glebą. Użyj płytki o wysokim rozcieńczeniu, ponieważ ma ona tendencję do posiadania czystych kolonii, które są dobrze oddzielone. Wybieraj tylko kolonie, które są dobrze oddzielone od sąsiednich kolonii i wyglądają morfologicznie różnie od siebie.
  2. Wysterylizuj pętlę, zanurzając ją w alkoholu i paląc. Szybko otwórz interesującą Cię szalkę Petriego i dotknij pętli w pustym miejscu w agarze aby ją schłodzić. Następnie usuń niewielką ilość interesującej nas kolonii na pętlę.
  3. Biorąc świeży talerz peptonowo-drożdżowy, zrób smugę o długości kilku centymetrów z jednej strony. Ponownie wysterylizuj i ostudzić, a następnie utwórz smugę, która przecina początkową smugę tylko przy pierwszym przejściu. Powtórz ten proces jeszcze dwa razy w ten sam sposób. To smugowe "rozcieńczenie" powoduje, że komórki na pętli są oddzielane od siebie. Umieść płytkę w ciemnym miejscu, aby inkubować w temperaturze pokojowej przez dwa tygodnie.

Określenie dokładnej liczby bakterii środowiskowych ma kluczowe znaczenie dla oceny stanu ekosystemu glebowego. Można to osiągnąć poprzez hodowlę kolonii bakteryjnych z odpowiednimi rozcieńczeniami.

Bakterie glebowe są ważną częścią zdrowego ekosystemu glebowego, odgrywając rolę w rozkładzie, wiązaniu azotu i obiegu składników odżywczych. Gleby powierzchniowe są substratem cząstek organicznych i nieorganicznych tworzących złożoną matrycę otaczającą pory, które wypełniają się powietrzem lub wodą. Takie warunki tworzą idealny ekosystem dla bakterii, a gleby powierzchniowe zazwyczaj zawierają ponad milion bakterii na gram.

Ze względu na tak wysokie stężenie bakterii konieczne jest rozcieńczenie przed posiewem na pożywce wzrostowej. Seryjne rozcieńczenia mogą zmniejszyć stężenie pierwotnej próbki gleby do poziomów wystarczająco niskich, aby pojedyncze kolonie mogły być hodowane na płytkach pożywki, co pozwala na obliczenie początkowej liczby bakterii w próbce gleby.

Ten film pokaże, jak przygotować seryjne rozcieńczenia próbek gleby, jak płytkować te próbki bakteryjne i jak obliczyć liczbę bakterii w glebie na płytkach rozcieńczających.

Bakterie to proste organizmy prokariotyczne, ale bardzo zróżnicowane pod względem gatunkowym i ekosystemowym. Actinomycetes to podzbiór bakterii, które są często uważane za wyjątkową grupę ze względu na ich nitkowatą strukturę, w której rosną nawleczone razem, tworząc strzępki.

Zazwyczaj promieniowce stanowią 10% całkowitej populacji bakterii w glebie. Bakterie i promieniowce występują obficie w prawie każdym środowisku na Ziemi, ale w glebie występują w niezrównanej różnorodności i obfitości.

Bakterie glebowe są liczone, a następnie potencjalnie hodowane i identyfikowane przez rozcieńczanie. Tutaj próbka gleby jest seryjnie rozcieńczana w wodzie, a następnie rozpraszana na płytkach do wzrostu agaru. Powstałe kolonie są następnie liczone. Wartość ta, wraz ze współczynnikiem rozcieńczenia, służy do wyjaśnienia początkowego stężenia bakterii w glebie.

Posiewanie rozcieńczające jest powszechną, niedrogą i prostą metodą oznaczania liczby bakterii, ale ma kilka wad. Nie należy dopuścić do osiadania gleby podczas rozcieńczeń, co może prowadzić do stronniczego wzrostu. Niektóre bakterie glebowe nie rozmnażają się na płytkach lub rosną zbyt wolno, aby można je było zaobserwować. Dodatkowo metoda ta zakłada, że kolonie powstają z jednej bakterii, ale mogą powstawać z kępek wielu komórek.

Niektóre gatunki bakterii rosną lepiej na różnych podłożach wzrostowych. Powszechnym substratem do hodowli szerokiej gamy bakterii jest płytka drożdżowa agarowo-peptonowa. Promieniowce preferencyjnie rosną na płytkach na bazie glicerolu i kazeiny, które lepiej pasują do wzrostu tych bakterii nitkowatych.

Teraz, gdy rozumiesz koncepcję oznaczającą liczenie bakterii, zobaczmy, jak ten proces przebiega w laboratorium.

Aby rozpocząć procedurę, odważ 10 g próbki gleby i dodaj do 95 ml wody dejonizowanej. Dobrze wstrząsnąć zawiesiną i oznaczyć jako "A". Zanim gleba opadnie, należy usunąć 1 ml zawiesiny sterylną pipetą i przenieść ją do 9 ml wody dejonizowanej. Dokładnie odwiruj i oznacz jako "B".

Powtórzyć ten etap rozcieńczania 3 razy, za każdym razem z 1 ml poprzedniej zawiesiny i 9 ml wody dejonizowanej. Oznacz je kolejno jako probówki C, D i E. Powoduje to seryjne rozcieńczenia od 10-1 do 10-5 gramów gleby na ml.

Aby wyhodować kolonie bakterii, weź 3 wstępnie przygotowane płytki agarowe z peptonem i drożdżami i oznacz je jako C, D i E. Zmieszaj odpowiednie próbki i odpipetuj 0,1 ml na każdą płytkę. Ponieważ CFU są podawane na ml, użycie 0,1 ml dodatkowo zwiększa rozcieńczenie dziesięciokrotnie.

Następnie zanurz szklany rozsiewacz w etanolu. Umieść rozsiewacz w płomieniu na kilka sekund, aby zapalił się i spalił etanol. Spowoduje to wysterylizowanie rozsiewacza.

Trzymaj rozsiewacz nad pierwszą płytą, aż płomień zgaśnie. Szybko otwórz talerz, trzymając pokrywkę blisko siebie. Przyłóż rozsiewacz do agaru z dala od inokulum, aby ostygł, a następnie rozprowadź kroplę inokulum po powierzchni, aż znikną ślady wolnego płynu. Załóż pokrywę płyty.

Ponownie zapal rozsiewacz i powtórz proces z następną płytą, pracując szybko, aby nie zanieczyścić płytki organizmami unoszącymi się w powietrzu. Odwróć płytki, aby krople wilgoci nie spadały na agar i inkubuj płytki w temperaturze pokojowej przez tydzień.

Aby wyhodować promieniowce, weź trzy wstępnie przygotowane płytki glicerolu-kazeiny i oznacz je jako B, C i D. Korzystając z technik pokazanych wcześniej, rozprowadź płytkę 0,1 ml z zawiesin B, C i D. Stosuje się niższe rozcieńczenia, ponieważ promieniowce są zwykle obecne jako 1/10 populacji bakterii.

Na koniec odwróć te płytki i przechowuj w temperaturze pokojowej przez dwa tygodnie.

Po inkubacji dokładnie zbadaj wszystkie płytki bakterii i zwróć uwagę na różnice w wielkości i kształcie kolonii. Uprawiane na agarze bakterie wytwarzają śluzowate kolonie od bezbarwnych do jasnopomarańczowych, żółtych lub różowych. Natomiast kolonie promieniowców są kredowe, jędrne, skórzaste i pękają pod naciskiem, podczas gdy inne kolonie bakteryjne będą się rozmazywać. Pozwala to na odróżnienie kolonii przez dotyk za pomocą sterylnej pętli.

Policzyć i zapisać liczbę kolonii bakteryjnych, w tym promieniowców. Licz tylko płytki z 30-200 koloniami na płytkę.

Aby wyhodować kultury określonych pojedynczych bakterii, wybierz dyskretne kolonie z dowolnej płytki, wybierając kolonie, które są dobrze oddzielone od sąsiednich kolonii. Wysterylizuj pętlę do rozprowadzania, a następnie otwórz płytkę i dotknij pętli w pustym miejscu, aby ostygła. Następnie wybierz niewielką ilość interesującej Cię kolonii do pętli.

Biorąc świeży talerz peptonowo-drożdżowy, zrób smugę o długości kilku centymetrów z jednej strony. Ponownie wysterylizuj i ostudzić, a następnie utwórz smugę, która przecina początkową smugę tylko przy pierwszym przejściu. Powtórz ten proces jeszcze dwa razy w ten sam sposób. To smugowe "rozcieńczenie" powoduje, że komórki na pętli są oddzielane od siebie. Umieść płytkę w ciemnym miejscu, aby inkubować w temperaturze pokojowej przez dwa tygodnie.

Na podstawie liczby kolonii bakterii i promieniowców można określić jednostki tworzące kolonie na gram gleby. Liczba kolonii na gram gleby jest równa liczbie kolonii zliczonych na płytce, pomnożonej przez odwrotność rozcieńczenia na płytce. Na przykład, jeśli 46 kolonii zostanie policzonych na płytce rozcieńczającej 10-5 z inokulantem o pojemności 0,1 ml, to CFU na gram gleby jest równe 10-6 przez 46 lub 46 milionów CFU na gram gleby.

Przeprowadzanie zliczania i hodowli bakterii jest kluczowym pierwszym krokiem w wielu badaniach naukowych lub protokołach.

Zdrowa gleba zawiera od 106 do 108 bakterii na gram. Liczenie bakterii w glebie może być wykorzystane do określenia stanu gleby będącej przedmiotem zainteresowania, a liczba mniej niż 106 i 108 bakterii na gram wskazuje na niezdrową lub ubogą glebę. Może to być spowodowane brakiem składników odżywczych lub materii organicznej, stresem abiotycznym spowodowanym ekstremalnym pH gleby lub zanieczyszczeniem gleby.

Wiele rodzajów antybiotyków stosowanych obecnie w medycynie zostało po raz pierwszy zidentyfikowanych na podstawie bakterii lub grzybów żyjących w glebie. Wyizolowanie czystych szczepów z kultur glebowych może potencjalnie pomóc naukowcom w identyfikacji nowych związków antybiotykowych. W tym przypadku badane bakterie lub wyizolowane związki będące przedmiotem zainteresowania można dodać do talerzy uprawianych na trawnikach bakteryjnych, a ich wpływ na wzrost trawnika zarejestrować. Wyraźne plamy na trawnikach bakteryjnych, na których wzrost został zahamowany przez badane bakterie lub związek, mogą wskazywać na aktywność antybiotykową.

Rośliny strączkowe, w tym groch i fasola, opierają się na symbiotycznych związkach z bakteriami wiążącymi azot. Bakterie te żyją swobodnie w glebie lub w guzkach systemu korzeniowego i wytwarzają związki azotu, które są wykorzystywane przez roślinę. Na ubogich glebach uzupełnienie roślin strączkowych hodowanymi bakteriami wiążącymi azot z gleby może poprawić wzrost i zdrowie roślin. Może to skutkować większymi, bardziej odpornymi roślinami, co z kolei daje większe plony.

Właśnie obejrzałeś wprowadzenie JoVE do liczenia bakterii. Powinieneś teraz zrozumieć, jak przeprowadzać rozcieńczania próbek gleby, jak platerować do liczenia kolonii i izolacji kolonii oraz jak obliczać liczbę bakterii w próbkach gleby. Dzięki za oglądanie!

Transcript

Określenie dokładnej liczby bakterii środowiskowych ma kluczowe znaczenie dla oceny stanu ekosystemu glebowego. Można to osiągnąć poprzez hodowlę kolonii bakteryjnych z odpowiednimi rozcieńczeniami.

Bakterie glebowe są ważną częścią zdrowego ekosystemu glebowego, odgrywając rolę w rozkładzie, wiązaniu azotu i obiegu składników odżywczych. Gleby powierzchniowe są substratem cząstek organicznych i nieorganicznych tworzących złożoną matrycę otaczającą pory, które wypełniają się powietrzem lub wodą. Warunki te tworzą idealny ekosystem dla bakterii, a gleby powierzchniowe zazwyczaj zawierają ponad milion bakterii na gram.

Ze względu na tak wysokie stężenie bakterii, przed posiewem na pożywce wzrostowej konieczne jest rozcieńczenie. Seryjne rozcieńczenia mogą zmniejszyć stężenie pierwotnej próbki gleby do poziomów wystarczająco niskich, aby pojedyncze kolonie mogły być hodowane na płytkach pożywki, co pozwala na obliczenie początkowej liczby bakterii w próbce gleby.

Ten film pokaże, jak przygotować seryjne rozcieńczenia próbek gleby, jak płytkować te próbki bakteryjne i jak obliczyć liczbę bakterii w glebie na płytkach rozcieńczających.

Bakterie to proste organizmy prokariotyczne, ale bardzo zróżnicowane pod względem gatunkowym i ekosystemowym. Actinomycetes to podzbiór bakterii, które są często uważane za wyjątkową grupę ze względu na ich nitkowatą strukturę, w której rosną nawleczone razem, tworząc strzępki.

Zazwyczaj promieniowce stanowią 10% całkowitej populacji bakterii w glebie. Bakterie i promieniowce występują obficie w prawie każdym środowisku na Ziemi, ale w glebie występują w niezrównanej różnorodności i obfitości.

Bakterie glebowe są liczone, a następnie potencjalnie hodowane i identyfikowane przez rozcieńczanie. Tutaj próbka gleby jest seryjnie rozcieńczana w wodzie, a następnie rozpraszana na płytkach do wzrostu agaru. Powstałe kolonie są następnie liczone. Wartość ta, wraz ze współczynnikiem rozcieńczenia, służy do wyjaśnienia początkowego stężenia bakterii w glebie.

Posiewanie rozcieńczające jest powszechną, niedrogą i prostą metodą oznaczania liczby bakterii, ale ma kilka wad. Nie należy dopuścić do osiadania gleby podczas rozcieńczeń, co może prowadzić do stronniczego wzrostu. Niektóre bakterie glebowe nie rozmnażają się na płytkach lub rosną zbyt wolno, aby można je było zaobserwować. Dodatkowo metoda ta zakłada, że kolonie powstają z jednej bakterii, ale mogą powstawać z kępek wielu komórek.

Niektóre gatunki bakterii rosną lepiej na różnych podłożach wzrostowych. Powszechnym substratem do hodowli szerokiej gamy bakterii jest płytka drożdżowa agarowo-peptonowa. Promieniowce preferencyjnie rosną na płytkach na bazie glicerolu i kazeiny, które lepiej pasują do wzrostu tych bakterii nitkowatych.

Teraz, gdy rozumiesz koncepcję oznaczającą liczenie bakterii, zobaczmy, jak ten proces przebiega w laboratorium.

Aby rozpocząć procedurę, odważ 10 g próbki gleby i dodaj do 95 ml wody dejonizowanej. Dobrze wstrząsnąć zawiesiną i oznaczyć jako "A". Zanim gleba opadnie, należy usunąć 1 ml zawiesiny sterylną pipetą i przenieść ją do 9 ml wody dejonizowanej. Dokładnie odwiruj i oznacz jako "B".

Powtórzyć ten etap rozcieńczania 3 razy, za każdym razem z 1 ml poprzedniej zawiesiny i 9 ml wody dejonizowanej. Oznacz je kolejno jako probówki C, D i E. Powoduje to seryjne rozcieńczenia od 10-1 do 10-5 gramów gleby na ml.

Aby wyhodować kolonie bakterii, weź 3 wstępnie przygotowane płytki agarowe z peptonem i drożdżami i oznacz je jako C, D i E. Zmieszaj odpowiednie próbki i odpipetuj 0,1 ml na każdą płytkę. Ponieważ CFU są podawane na ml, użycie 0,1 ml dodatkowo zwiększa rozcieńczenie dziesięciokrotnie.

Następnie zanurz szklany rozsiewacz w etanolu. Umieść rozsiewacz w płomieniu na kilka sekund, aby zapalił się i spalił etanol. Spowoduje to wysterylizowanie rozsiewacza.

Trzymaj rozsiewacz nad pierwszą płytą, aż płomień zgaśnie. Szybko otwórz talerz, trzymając pokrywkę blisko siebie. Przyłóż rozsiewacz do agaru z dala od inokulum, aby ostygł, a następnie rozprowadź kroplę inokulum po powierzchni, aż znikną ślady wolnego płynu. Załóż pokrywę płyty.

Ponownie zapal rozsiewacz i powtórz proces z następną płytą, pracując szybko, aby nie zanieczyścić płytki organizmami unoszącymi się w powietrzu. Odwróć płytki, aby krople wilgoci nie spadały na agar i inkubuj płytki w temperaturze pokojowej przez tydzień.

Aby wyhodować promieniowce, weź trzy wstępnie przygotowane płytki glicerolu-kazeiny i oznacz je jako B, C i D. Korzystając z technik pokazanych wcześniej, rozprowadź płytkę 0,1 ml z zawiesin B, C i D. Stosuje się niższe rozcieńczenia, ponieważ promieniowce są zwykle obecne jako 1/10 populacji bakterii.

Na koniec odwróć te płytki i przechowuj w temperaturze pokojowej przez dwa tygodnie.

Po inkubacji dokładnie zbadaj wszystkie płytki bakterii i zwróć uwagę na różnice w wielkości i kształcie kolonii. Uprawiane na agarze bakterie wytwarzają śluzowate kolonie od bezbarwnych do jasnopomarańczowych, żółtych lub różowych. Natomiast kolonie promieniowców są kredowe, jędrne, skórzaste i pękają pod naciskiem, podczas gdy inne kolonie bakteryjne będą się rozmazywać. Pozwala to na odróżnienie kolonii przez dotyk za pomocą sterylnej pętli.

Policzyć i zapisać liczbę kolonii bakteryjnych, w tym promieniowców. Licz tylko płytki z 30-200 koloniami na płytkę.

Aby wyhodować kultury określonych pojedynczych bakterii, wybierz dyskretne kolonie z dowolnej płytki, wybierając kolonie, które są dobrze oddzielone od sąsiednich kolonii. Wysterylizuj pętlę do rozprowadzania, a następnie otwórz płytkę i dotknij pętli w pustym miejscu, aby ostygła. Następnie wybierz niewielką ilość interesującej Cię kolonii do pętli.

Biorąc świeży talerz peptonowo-drożdżowy, zrób smugę o długości kilku centymetrów z jednej strony. Ponownie wysterylizuj i ostudzić, a następnie utwórz smugę, która przecina początkową smugę tylko przy pierwszym przejściu. Powtórz ten proces jeszcze dwa razy w ten sam sposób. To smugowe "rozcieńczenie" powoduje, że komórki na pętli są oddzielane od siebie. Umieść płytkę w ciemnym miejscu, aby inkubować w temperaturze pokojowej przez dwa tygodnie.

Na podstawie liczby kolonii bakterii i promieniowców można określić jednostki tworzące kolonie na gram gleby. Liczba kolonii na gram gleby jest równa liczbie kolonii zliczonych na płytce, pomnożonej przez odwrotność rozcieńczenia na płytce. Na przykład, jeśli 46 kolonii zostanie policzonych na płytce rozcieńczającej 10-5 z inokulantem o pojemności 0,1 ml, to CFU na gram gleby jest równe 10-6 na 46, czyli 46 milionów CFU na gram gleby.

Przeprowadzanie zliczania i hodowli bakterii jest kluczowym pierwszym krokiem w wielu badaniach naukowych lub protokołach.

Zdrowa gleba zawiera od 106 do 108 bakterii na gram. Liczenie bakterii w glebie może być wykorzystane do określenia stanu gleby będącej przedmiotem zainteresowania, a liczba bakterii poniżej 106 i 108 bakterii na gram wskazuje na niezdrową lub ubogą glebę. Może to być spowodowane brakiem składników odżywczych lub materii organicznej, stresem abiotycznym spowodowanym ekstremalnym pH gleby lub zanieczyszczeniem gleby.

Wiele rodzajów antybiotyków stosowanych obecnie w medycynie zostało po raz pierwszy zidentyfikowanych na podstawie bakterii lub grzybów żyjących w glebie. Wyizolowanie czystych szczepów z kultur glebowych może potencjalnie pomóc naukowcom w identyfikacji nowych związków antybiotykowych. W tym przypadku badane bakterie lub wyizolowane związki będące przedmiotem zainteresowania można dodać do talerzy uprawianych na trawnikach bakteryjnych, a ich wpływ na wzrost trawnika zarejestrować. Wyraźne plamy na trawnikach bakteryjnych, na których wzrost został zahamowany przez badane bakterie lub związek, mogą wskazywać na aktywność antybiotykową.

Rośliny strączkowe, w tym groch i fasola, opierają się na symbiotycznych związkach z bakteriami wiążącymi azot. Bakterie te żyją swobodnie w glebie lub w guzkach systemu korzeniowego i wytwarzają związki azotu, które są wykorzystywane przez roślinę. Na ubogich glebach uzupełnienie roślin strączkowych hodowanymi bakteriami wiążącymi azot z gleby może poprawić wzrost i zdrowie roślin. Może to skutkować większymi, bardziej odpornymi roślinami, co z kolei daje większe plony.

Właśnie obejrzałeś wprowadzenie JoVE do liczenia bakterii. Powinieneś teraz zrozumieć, jak przeprowadzać rozcieńczania próbek gleby, jak platerować do liczenia kolonii i izolacji kolonii oraz jak obliczać liczbę bakterii w próbkach gleby. Dzięki za oglądanie!

Explore More Videos

Hodowla liczenie bakterie próbki gleby dokładne liczenie zdrowie ekosystem glebowy hodowla kolonii bakterii rozcieńczenia ważne rozkład wiązanie azotu obieg składników odżywczych gleby powierzchniowe cząstki organiczne cząstki nieorganiczne złożona matryca pory powietrze woda idealny ekosystem milion bakterii na gram rozcieńczenie posiew pożywki wzrostowe seryjne rozcieńczenia pojedyncze kolonie płytki pożywki początkowe liczenia przygotować seryjne rozcieńczenia próbki bakterii obliczyć liczbę bakterii w glebie Organizmy prokariotyczne różnorodność gatunkowa

Related Videos

Oznaczanie wilgotności gleby

06:16

Oznaczanie wilgotności gleby

Environmental Microbiology

363.4K Wyświetlenia

Technika aseptyczna w naukach o środowisku

10:48

Technika aseptyczna w naukach o środowisku

Environmental Microbiology

132.1K Wyświetlenia

Barwienie metodą Grama bakterii ze źródeł środowiskowych

09:31

Barwienie metodą Grama bakterii ze źródeł środowiskowych

Environmental Microbiology

106.4K Wyświetlenia

Wizualizacja mikroorganizmów glebowych za pomocą testu szkiełek kontaktowych i mikroskopii

10:04

Wizualizacja mikroorganizmów glebowych za pomocą testu szkiełek kontaktowych i mikroskopii

Environmental Microbiology

43.9K Wyświetlenia

Grzyby strzępkowe

08:58

Grzyby strzępkowe

Environmental Microbiology

61.5K Wyświetlenia

Ekstrakcja DNA społeczności z kolonii bakteryjnych

09:59

Ekstrakcja DNA społeczności z kolonii bakteryjnych

Environmental Microbiology

30.3K Wyświetlenia

Wykrywanie mikroorganizmów środowiskowych za pomocą reakcji łańcuchowej polimerazy i elektroforezy żelowej

13:34

Wykrywanie mikroorganizmów środowiskowych za pomocą reakcji łańcuchowej polimerazy i elektroforezy żelowej

Environmental Microbiology

46.9K Wyświetlenia

Analiza RNA próbek środowiskowych za pomocą RT-PCR

12:04

Analiza RNA próbek środowiskowych za pomocą RT-PCR

Environmental Microbiology

43.9K Wyświetlenia

Ilościowe oznaczanie mikroorganizmów i wirusów środowiskowych za pomocą qPCR

09:57

Ilościowe oznaczanie mikroorganizmów i wirusów środowiskowych za pomocą qPCR

Environmental Microbiology

53.1K Wyświetlenia

Analiza jakości wody za pomocą organizmów wskaźnikowych

08:17

Analiza jakości wody za pomocą organizmów wskaźnikowych

Environmental Microbiology

31.1K Wyświetlenia

Izolacja bakterii kałowych z próbek wody przez filtrację

10:58

Izolacja bakterii kałowych z próbek wody przez filtrację

Environmental Microbiology

42.8K Wyświetlenia

Wykrywanie bakteriofagów w próbkach środowiskowych

09:17

Wykrywanie bakteriofagów w próbkach środowiskowych

Environmental Microbiology

43.7K Wyświetlenia

Analiza krzywej wzrostu bakterii i jej zastosowania środowiskowe

12:23

Analiza krzywej wzrostu bakterii i jej zastosowania środowiskowe

Environmental Microbiology

302.6K Wyświetlenia

Oznaczanie liczby glonów za pomocą metodologii hodowlanej

09:29

Oznaczanie liczby glonów za pomocą metodologii hodowlanej

Environmental Microbiology

14.6K Wyświetlenia

JoVE logo
Contact Us Recommend to Library
Research
  • JoVE Journal
  • JoVE Encyclopedia of Experiments
  • JoVE Visualize
Business
  • JoVE Business
Education
  • JoVE Core
  • JoVE Science Education
  • JoVE Lab Manual
  • JoVE Quizzes
Solutions
  • Authors
  • Teaching Faculty
  • Librarians
  • K12 Schools
  • Biopharma
About JoVE
  • Overview
  • Leadership
Others
  • JoVE Newsletters
  • JoVE Help Center
  • Blogs
  • Site Maps
Contact Us Recommend to Library
JoVE logo

Copyright © 2026 MyJoVE Corporation. All rights reserved

Privacy Terms of Use Policies
WeChat QR code