Name: LAD-Ligation: mysi model zawału mięśnia sercowego (Wideo) | JoVE Journal
Uploaded: 2009-10-14T23:30:00.000+00:00
Duration: 8 min 23 s
Description: Poznaj model LAD-ligacji u myszy do badania niedokrwienia mięśnia sercowego. Technika obejmuje torakotomię i wiązanie lewej zstępującej tętnicy wieńcowej. Metoda umożliwia analizę zmian patofizjologicznych oraz testowanie terapii komórkowych.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Autorzy dziękują Christiane Pahrmann za pomoc techniczną oraz wykonanie badań histologicznych.

Myszy Balb/C o wadze minimum 20g w wieku od 8 do 12 tygodni są nabywane z firmy Charles River (Sandhofer Weg 7, D-97633 Sulzfeld). 
 Myszy są utrzymywane w warunkach konwencjonalnych, karmione standardową paszą w granulkach i pite wodą ad libitum. Myszy należy znieczulić izofluranem (2%) przy użyciu komory indukcyjnej.
<ol>
 <li>Ogolić obszar szyi oraz lewą stronę klatki piersiowej w okolicy żeber i zdezynfekować 80% etanolem.</li>
 <li>Ułóż mysz na grzbiecie i nałóż maskę na nos i pysk, aby podtrzymać znieczulenie.</li>
 <li>Sprawdzić odruchy, uciskając ogon i tylne łapy, aby upewnić się, że mysz jest w stopniu wystarczającym znieczulona. </li>
 <li>Pod kontrolą mikroskopu należy wykonać cięcie w linii środkowej szyi, oddzielając skórę, mięśnie i tkankę pokrywającą tchawicę.</li>
 <li>Po odsłonięciu tchawicy należy wykonać niewielki otwór w tkance między dwoma pierscieniami chrzęstnymi poniżej głośni, aby wprowadzić rurkę endotrachealną (Rysunek 1). Wprowadź rurkę endotrachealną, trzymając głowową część tchawicy za pomocą mikrosurgicalnych kleszczyków. Sprawdź ruchy klatki piersiowej, aby upewnić się, że oba płuca są dobrze wentylowane.</li>
 <li>Częstość oddechów (RR) powinna wynosić około 110 na minutę, przy ciśnieniu wdechowym od 17 do 18 cm H2O2O. Ostrożnie obróć mysz, kładąc ją na prawym boku, tak aby lewa strona była skierowana ku górze. Wykonaj lewostronną torakotomię między 3.rd or 4th żebro, a następnie ostrożnie wypreparować tkankę i mięśnie, używając kauteryzatora w celu zapobiegania krwawieniu. </li>
 <li>Ostrożnie otwórz klatkę piersiową. Po otwarciu klatki piersiowej zlokalizuj serce, uważając, aby nie dotknąć płuc żadnym ostrym narzędziem. Następnie usuń część osierdzia zakrywającą serce.</li>
 <li>LAD znajduje się pomiędzy tętnicą płucną a lewym uszkiem przedsionka. Za pomocą nici Prolene 8-0 (Ethicon, Norderstedt, Niemcy) należy podwiązać LAD proksymalnie, stosując pojedynczy szew (Rysunek 2).</li>
 <li>Wprowadź dreny klatki piersiowej (28G, cewnik żylny) pomiędzy 4.th oraz 5th żebro </li>
 <li>Zamknąć nacięcie klatki piersiowej warstwowo, stosując szwy ciągłe Prolene 6-0 (Ethicon, Norderstedt, Niemcy) do zbliżenia żeber oraz szwy ciągłe Prolene 4-0 (Ethicon, Norderstedt, Niemcy) do zamknięcia skóry. </li>
 <li>Ostrożnie opróżnij klatkę piersiową za pomocą strzykawki 2 ml (Rysunek 3). Połóż mysz na plecach. Następnie wyjmij rurkę endotrachealną i zaadaptuj chrząstki pierścieniowate tchawicy za pomocą jednego szwu, używając nici Prolene 7-0 (Ethicon, Norderstedt, Niemcy).</li>
 <li>Nałożyć maskę na pysk myszy i zamknąć skórę, stosując szwy ciągłe z nici Prolene 4-0 (Ethicon, Norderstedt, Niemcy).</li>
</ol>
Walidacja
Istnieje kilka sposobów potwierdzenia powodzenia ligacji LAD.
Badanie poziomu troponiny można przeprowadzić od 6 do 18 godzin po operacji, wykorzystując jedynie 150 µL krwi, bez konieczności uśmiercania zwierzęcia. Krew nanosi się na specjalistyczny zestaw testowy do oznaczania troponiny (TROP T Sensitive, Roche, Mannheim) (Rysunek 4). Troponina jest białkiem regulacyjnym w filamentach aktynowych komórki mięśniowej; w trzech rodzajach mięśni występują różne izotypy. Izotypy cTnI i cTnT występują w sercu i są uwalniane podczas uszkodzenia tkanek. Standaryzowany test na troponinę T (cTnT) opiera się na dwóch przeciwciałach monoklonalnych specyficznych dla serca: pierwsze wychwytuje troponinę w próbce krwi, a drugie służy jako marker.
Obszar zawału można zidentyfikować makroskopowo po 3 dniach (Rysunek 5).
Barwienie TTC (chlorek 2,3,5-trifenylotetrazoliu) pozwala ocenić żywotność tkanki w celu określenia wielkości obszaru zawału. Barwnik Evans blue (1,5%, 1,0mL) w soli fizjologicznej buforowanej fosforanowo (PBS) wstrzykuje się do jamy lewej komory, aby zmierzyć obszar niedokrwienia mięśnia sercowego. Myszy poddaje się eutanazji, a serce jest pobierane i dzielone na plastry. Plastry tkanki inkubuje się w 1% roztworze TTC w PBS o pH 7,4 w temperaturze 37°C przez 20min. Tkanki utrwala się w 10% formalinie buforowanej PBS przez noc w temperaturze 2-8°C. TTC podaje się ex vivo w celu zabarwienia obszarów niepochłaniających barwnika Evans blue (Rycina 6).
Do badań histologicznych mysz musi zostać uśpiona, a serce zatopione w celu dalszej obróbki. Po wykonaniu seryjnych cięć w parafinie, preparaty barwi się H&amp;E (hematoksyliną i eozyną) lub barwieniem trichromowym w celu uwidocznienia tkanki włóknistej (Rysunek 7).
<img src="/files/ftp_upload/1438/1438fig1.jpg" alt="Seria procedur chirurgicznych, odsłonięcie kości, manipulacja mechaniczna, eksperyment z nacięciem." data-altupdatedat="1787630408000" data-alt="Rycina 1"> 
 Rycina 1: Rurka intubacyjna. 
1A: Odsłonięta tchawica po brzuszny nacięciu szyi. 
1B: Tchawica zostaje otwarta dwa pierścienie chrzęstne za krtanią w kierunku ogonowym. 
1C: Rurka intubacyjna zostaje wprowadzona do tchawicy.

<img src="/files/ftp_upload/1438/1438fig2.jpg" alt="Proces wycięcia chirurgicznego; ocena tkanki; procedura kliniczna; kontekst badania anatomicznego." data-altupdatedat="1787630408000" data-alt="Rysunek 2"> Rysunek 2: Serce jest odsłonięte poprzez lewostronną torakotomię, LAD zostaje podwiązana.
<img src="/files/ftp_upload/1438/1438fig3.jpg" alt="Badanie anatomii gryzonia z sekcją; ilustracja metody badań biologicznych na powierzchni korkowej." data-altupdatedat="1787630408000" data-alt="Rycina 3"> Rycina 3: Po zamknięciu klatki piersiowej wykonano drenaż opłucnej. Mysz wciąż znajduje się pod wpływem anestezji.
<img src="/files/ftp_upload/1438/1438fig4.jpg" alt="Szybki test antygenowy wykazujący wynik dodatni; metoda diagnostyczna; dwie widoczne linie." data-altupdatedat="1787630408000" data-alt="Rysunek 4"> Rysunek 4: Po kilku minutach pojawiają się dwie linie, gdy test na troponinę jest dodatni.
<img src="/files/ftp_upload/1438/1438fig5.jpg" alt="Schemat sekcji tkanki, obrazy A i B, przedstawiające organ przed i po przecięciu." data-altupdatedat="1787630408000" data-alt="Rysunek 5"> Rysunek 5: Przedstawia wypreparowane serce. 5A: Widok makroskopowy serca z obszarem niedokrwiennym o wyblakłym, białym kolorze. 5B: Przekrój poprzeczny zawałowanego serca, obszar niedokrwienny widoczny w prawym górnym rogu.

<ol><li>Atkins, B. Z., Hueman, M. T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cellular+cardiomyoplasty+improves+diastolic+properties+of+injured+Heart%5BTitle%5D)+AND+%22J+Surg+Res%22%5BJournal%5D)">Cellular cardiomyoplasty improves diastolic properties of injured Heart.</a> J Surg Res. 85 (2), 234-242 (1999).</li>
<li>Jaquet, K., KT, K. rause <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Reduction+of+myocardial+scar+size+after+implantation+of+mesenchymal+stem+cells+in+rats%3A+what+is+the+mechanism%5BTitle%5D)+AND+%22Stem+Cells+Dev%22%5BJournal%5D)">Reduction of myocardial scar size after implantation of mesenchymal stem cells in rats: what is the mechanism.</a> Stem Cells Dev. 14 (3), 299-309 (2005).</li>
<li>Joung, B., Kim, I. K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Bone+marrow+mononuclear+stem+cells+transplanted+in+rat+infarct+myocardium+improved+the+electrical+conduction+without+evidence+of+proarrhythmic+effects%5BTitle%5D)+AND+%22Yonsei+Med+J%22%5BJournal%5D)">Bone marrow mononuclear stem cells transplanted in rat infarct myocardium improved the electrical conduction without evidence of proarrhythmic effects.</a> Yonsei Med J. 48 (5), 754-764 (2007).</li>
</ol>

Finansowanie
Niniejsze badanie było wspierane przez Szpital Uniwersytecki w Hamburgu (M.K., Woman Habilitation Grant), DFG (S.S., SCHR992/3-1) oraz ISHLT (T.D., Research Award 2009).
Oświadczenie
Wszystkie zwierzęta były traktowane zgodnie z Zasadami Opieki nad Zwierzętami Laboratoryjnymi, a doświadczenia na zwierzętach przeprowadzono zgodnie z wytycznymi i regulacjami określonymi przez National Society for Medical Research oraz Guide for the Care and Use of Laboratory Animals opublikowany przez National Institutes of Health (publikacja National Institutes of Health 85-23, wersja z 1985 r.).
Wszystkie zwierzęta zostały pozyskane z Charles River Laboratories (Sulzfeld, Niemcy) i utrzymywane w zapleczu opieki nad zwierzętami Uniwersyteckiego Szpitala Hamburg Eppendorf. Zwierzęta otrzymywały standardową karmę i wodę ad libitum.

Podsumowując, niniejszy film przedstawia krok po kroku model ligacji LAD i wykazuje, że ligacje LAD u myszy są łatwo wykonalnymi procedurami chirurgicznymi.

ligacja lad: mysi model zawału mięśnia sercowego

LAD-Ligation: A Murine Model of Myocardial Infarction

Modele badawcze zawału i niedokrwienia mięśnia sercowego są niezbędne do badania ostrych i przewlekłych procesów patobiologicznych oraz patofizjologicznych w niedokrwieniu mięśnia sercowego, a także do opracowywania i optymalizacji przyszłych metod leczenia.
U gryzoni laboratoryjnych przeprowadza się dwie różne metody wywoływania niedokrwienia mięśnia sercowego. Pierwsza metoda polega na wywołaniu zawału kriogenicznego, co jest techniką szybką, lecz niedokładną, w której do powierzchni serca przykładany jest kriopen (1-3). Stosując tę metodę, naukowiec nie może zagwarantować, że blizna kriogeniczna prowadzi do niedokrwienia; ponadto powstaje rozległy uszczerbek w mięśniu sercowym, który wykazuje efekty patofizjologiczne niezwiązane z zawałem mięśnia sercowego. Drugą metodą jest trwałe podwiązanie lewej tętnicy wieńcowej przedniej zstępującej (LAD). W tym przypadku LAD zostaje podwiązana jednym szwem, co powoduje niedokrwienie widoczne niemal natychmiast. Poprzez zamknięcie LAD uniemożliwia się dalszy przepływ krwi w tym obszarze, podczas gdy otaczająca tkanka mięśnia sercowego pozostaje niemal nienaruszona. Ta procedura chirurgiczna naśladuje aspekty patobiologiczne i patofizjologiczne występujące w niedokrwieniu mięśnia sercowego związanym z zawałem.
Metoda przedstawiona w tym filmie demonstruje procedurę chirurgiczną modelu zawału u myszy poprzez podwiązanie LAD. Model ten jest przydatny w badaniach patobiologicznych, patofizjologicznych oraz immunobiologicznych nad zawałem serca. Przedstawiona technika zapewnia wysoką dokładność i wykazuje dobrą korelację z przekrojami histologicznymi.

W niniejszym materiale wideo zaprezentowano sposób wykorzystania szybkiego i wiarygodnego modelu do badania procesów patobiologicznych i patofizjologicznych niedokrwienia mięśnia sercowego.

Ligacja LAD: mysi model zawału mięśnia sercowego

Modele badawcze zawału oraz niedokrwienia mięśnia sercowego są niezbędne do badania ostrych i przewlekłych procesów patobiologicznych i patofizjologicznych ...

Wykonuje się cięcie szyjne w linii pośrodkowej, aby odsłonić tchawicę, a następnie w tchawicy wycina się mały otwór do wprowadzenia rurki intubacyjnej. Myszy kładzie się na prawym boku i wykonuje torakotomię lewostronną między trzecim a czwartym żebrem. Po odsłonięciu serca LAD zostaje podwiązana pojedynczym szwem.Po wprowadzeniu drenu klatki piersiowej i zamknięciu nacięcia, klatka piersiowa zostaje opróżniona poprzez ostrożne aspirowanie strzykawką. Na koniec mysz układa się na grzbiecie.Rurkę intubacyjną usuwa się, a następnie zamyka nacięcie tchawicy i szyi. Dzień dobry, nazywam się Sonya Refa. Jestem profesorem immunologii i chirurgii serca w Zakładzie Chirurgii Sercowo-Naczyniowej w Uniwersyteckim Centrum Serca w Hamburgu.Moje laboratorium koncentruje się na immunobiologii komórek macierzystych oraz immunologii transplantacji. Dzisiaj przedstawimy Państwu model ligacji LID. W naszym laboratorium wykorzystujemy ten model do badania wpływu terapii komórkami macierzystymi na regenerację serca po zawale mięśnia sercowego.Jestem KA Wan, studentem Uniwersytetu Stanforda i stypendystą letnim w laboratorium TSI dr Derera. A ja jestem Mandy Cooch z laboratorium TSI Uniwersyteckiego Centrum Serca w Hamburgu. Pokażę Państwu, jak przeprowadzić ligację tętnicy wieńcowej, a następnie pokażemy, jak zweryfikować powodzenie wywołania zawału mięśnia sercowego za pomocą różnych metod.Zacznijmy zatem. Wygol obszar szyi oraz lewą stronę klatki piersiowej znieczulonej myszy. Połóż mysz na plecach i nałóż maskę na nos i pysk, aby utrzymać znieczulenie za pomocą 2% isofluorine, a następnie zdezynfekuj skórę.Przed rozpoczęciem operacji, po podaniu beta isod, uciśnij ogon i tylne łapy myszy, aby potwierdzić, że jest ona odpowiednio znieczulona. Pod kontrolą mikroskopu wykonaj nacięcie szyjnej linii pośrodkowej, oddzielając skórę, mięśnie i tkankę pokrywającą tchawicę. Po odsłonięciu tchawicy wykonaj niewielki otwór w tkance między dwoma pierścieniami chrzęstnymi poniżej głośni, aby wprowadzić rurkę endotrachealną.Wprowadź rurkę endotrachealną, przytrzymując głowową część tchawicy. Za pomocą pęsety mikrosurgicalnej sprawdź ruchy klatki piersiowej, aby upewnić się, że oba płuca są dobrze wentylowane. Częstotliwość oddechów powinna wynosić około 110 na minutę przy ciśnieniu inspiracyjnym od 17 do 18 cmH2O.Ostrożnie obróć mysz i połóż ją na prawym boku, tak aby lewa strona zwierzęcia była skierowana w Twoją stronę. Wykonaj lewostronną torakotomię między trzecim a czwartym żebrem, a następnie rozpreparuj tkankę i mięśnie. Ostrożnie używaj kleszczyków, aby zapobiec krwawieniu.Ostrożnie otwórz klatkę piersiową. Po otwarciu klatki piersiowej zlokalizuj serce, uważając, aby nie dotknąć płuca żadnym ostrym narzędziem. Następnie usuń część osierdzia zakrywającą serce.Tętnica LAD znajduje się pomiędzy tętnicą płucną a lewą tętnicą wieńczącą. Przewiązać proksymalny odcinek LAD pojedynczym szwem z nici prolen 8-0. Wprowadzić rurkę endotrachealne oraz cewnik żylny 28G pomiędzy czwartym a piątym żebrem.Zamknąć nacięcie klatki piersiowej warstwowo, stosując szwy ciągłe z Prolene 6-0 do przyłożenia żeber oraz szwy ciągłe z Prolene 4-0. Aby zamknąć skórę, należy ostrożnie odessać płyn z klatki piersiowej za pomocą strzykawki 2 mL. Po odessaniu zawartości klatki piersiowej położyć mysz na grzbiecie.Załóż maskę tlenową na mysz i wyjmij rurkę endotrachealną. Zaadaptuj pierścienie chrzęstnicy krtani za pomocą pojedynczego szwu, używając nici Prolene 7-0, a następnie zamknij skórę szwem ciągłym Prolene 4-0. Wykazaliśmy, że model mysi z ligacją LAD jest elegancką i niezawodną techniką wywoływania zawału mięśnia sercowego.Istnieje kilka sposobów potwierdzenia wystąpienia zawału mięśnia sercowego. Jedną z metod jest test troponiny, w którym 150 µL krwi myszy nanosi się na specjalistyczny zestaw testowy do oznaczania troponiny. Wynik dodatni, w którym po kilku minutach pojawiają się dwie linie, wskazuje na uwalnianie troponiny T z serca w wyniku uszkodzenia tkanki.Drugim podejściem w celu potwierdzenia skutecznego zawodu mięśnia sercowego jest barwienie przekrojów poprzecznych serca 2,3,5-triphenyltetrazolium chloride lub TTC, aby zmierzyć żywotność tkanki i ocenić wielkość obszaru zawału. Serce pokrywa się TTC i inkubuje w temperaturze 37 °C przez 20 minut. Żywa tkanka przybierze czerwony kolor, natomiast obszar zawału pozostanie biały.Na koniec serce myszy można zalać w parafinie i pociąć na skrawki do badań histologicznych. Skrawki barwi się trichromem w celu uwidocznienia tkanki włóknistej. Przedstawiłam właśnie sposób przeprowadzenia ligacji LID u myszy oraz kroki następujące po tym zabiegu.Przedstawiliśmy różne metody potwierdzania skuteczności wywołania zawału mięśnia sercowego, zarówno kilka godzin po podwiązaniu LID, jak i kilka tygodni później w przypadku przeprowadzenia podwiązania LID. Ważne jest, aby unikać tkanek płucnych, aby zapobiec uszkodzeniu płuc. To wszystko.Dziękujemy bardzo za obejrzenie filmu i życzymy powodzenia w przeprowadzaniu eksperymentów.

lad-ligation-a-murine-model-of-myocardial-infarction

Research

JoVE Journal

Biology

Biologia

Ligacja LAD: Muryny Model Zawału Mięśnia Sercowego

Szczurzy model ostrego zawału mięśnia sercowego (AMI) jest przydatny do badania skutków zawału dla patofizjologicznych i fizjologicznych funkcji serca.

Ostry zawał mięśnia sercowego u szczurów

W badaniach nad ostrym uszkodzeniem niedokrwienno-reperfuzyjnym oraz przewlekłym przebudowywaniem serca u myszy, w wymiarze czasowym nanosi się liczne manipulacje genetyczne i/lub wewnątrzmięśniowe iniekcje genów, białek, komórek i/lub biomateriałów. Niniejsze wideo ilustruje mikrosurgicalne procedury stosowane w badaniach nad niedokrwieniem/reperfuzją, trwałą ligacją tętnicy wieńcowej oraz iniekcjami wewnątrzmięśniowymi.

Podwiązanie tętnicy wieńcowej i wtryskiwanie domięśniowe w mysim modelu zawału

Procedura chirurgiczna stosowana w celu wywołania eksperymentalnego zawału mięśnia sercowego u myszy rozpoczyna się od lewej torakotomii między trzecim a czwartym żebrem, aby umożliwić wizualizację przedniej powierzchni serca i lewego płuca. Następnie podwiązuje się lewą tętnicę wieńcową, zamyka klatkę piersiową i pozostawia mysz do samoistnego powrotu do sprawności.

Zmodyfikowana technika ligacji tętnicy wieńcowej u myszy

W tym filmie opisujemy zabieg chirurgiczny polegający na wygenerowaniu mysiego modelu zawału mięśnia sercowego poprzez trwałe podwiązanie lewej przedniej zstępującej tętnicy wieńcowej.

Generowanie mysiego modelu zawału mięśnia sercowego: zabieg chirurgiczny trwałego podwiązania lewej przedniej zstępującej tętnicy wieńcowej w modelu mysim

Wprowadzamy metodę chirurgiczną do wywoływania eksperymentalnego uszkodzenia niedokrwienia/reperfuzji (I/R) symulującego zawał mięśnia sercowego (MI) w modelach mysich, co pozwala na większą przejrzystość w umiejscowieniu podwiązania na lewej tętnicy zstępującej przedniej (LAD) w celu zwiększenia powtarzalności eksperymentów MI u myszy.

Mysi model uszkodzenia niedokrwienno-reperfuzyjnego mięśnia sercowego poprzez podwiązanie lewej tętnicy zstępującej przedniej

Niewydolność serca jest główną przyczyną hospitalizacji i główną przyczyną śmiertelności. Model trwałego podwiązania lewej przedniej zstępującej tętnicy wieńcowej u myszy stosuje się do badania przebudowy komór i dysfunkcji serca po zawale mięśnia sercowego. Przedstawiono technikę inwazyjnych pomiarów hemodynamicznych u myszy.

Trwałe podwiązanie lewej przedniej zstępującej tętnicy wieńcowej u myszy: model przebudowy po zawale mięśnia sercowego i niewydolności serca

Zapewniamy niezawodną metodę podwiązania lewej przedniej tętnicy zstępującej (LAD) w modelu mysim. Metoda ta jest stosunkowo mniej inwazyjna niż inne metody, obejmujące intubację dotchawiczą, lewostronną torakotomię i toracentezę. Metoda ta może być stosowana jako model zarówno dla ostrego, jak i przewlekłego zawału mięśnia sercowego (MI).

Podwiązanie tętnicy wieńcowej lewej lewej przedniej zstępującej (LAD): ulepszony i uproszczony model zawału mięśnia sercowego

Tutaj opisujemy zabieg chirurgiczny pokazujący, jak osiągnąć trwałe podwiązanie lewej przedniej zstępującej tętnicy wieńcowej u myszy. Model ten ma duże znaczenie dla badania patofizjologii zawału mięśnia sercowego i towarzyszących mu procesów biologicznych.

Mysi model zawału mięśnia sercowego z wykorzystaniem trwałego podwiązania lewej przedniej zstępującej tętnicy wieńcowej

Tutaj opisujemy prostą i powtarzalną metodę, która może wywołać zawał mięśnia sercowego lub uszkodzenie niedokrwienno-reperfuzyjne mięśnia sercowego u myszy poprzez precyzyjne podwiązanie lewej przedniej zstępującej tętnicy wieńcowej za pomocą mikromanipulacji.

Indukcja zawału mięśnia sercowego i uszkodzenia niedokrwienno-reperfuzyjnego mięśnia sercowego u myszy

Przedstawiono tutaj zabieg chirurgiczny trwałego podwiązania lewej tętnicy wieńcowej u myszy. Model ten można wykorzystać do zbadania patofizjologii i związanej z nią odpowiedzi zapalnej po zawale mięśnia sercowego.

Podwiązanie lewej tętnicy wieńcowej: chirurgiczny mysi model zawału mięśnia sercowego

Poznaj model LAD-ligacji u myszy do badania niedokrwienia mięśnia sercowego. Technika obejmuje torakotomię i wiązanie lewej zstępującej tętnicy wieńcowej. Metoda umożliwia analizę zmian patofizjologicznych oraz testowanie terapii komórkowych.

Ligacja LAD: mysi model zawału mięśnia sercowego

Przeglądaj więcej filmów