Suszenie chemiczne: przygotowanie próbki biologicznej do skaningowej mikroskopii elektronowej (SEM)

0 wyświetleń4:17 min • April 30th, 2023

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

- Na początek zacznij od odwodnienia i wysuszenia utrwalonej próbki, aby zmniejszyć zniekształcenia próbki spowodowane usuwaniem gazów i ciekłej wody przy obniżonym ciśnieniu roboczym konwencjonalnych skaningowych mikroskopów elektronowych, SEM.

Aby odwodnić próbkę, należy ją przemyć zwiększającym się stężeniem etanolu w wodzie, aż do osiągnięcia 100% etanolu. Następnie powtórzyć ten proces z chemicznym środkiem suszącym w etanolu, aż próbka zostanie przemyta czystym środkiem suszącym. Przenieść próbkę i czynnik suszący do naczynia do odparowywania. Przykryj go minimalną ilością dodatkowego środka osuszającego i pozostaw do wyschnięcia na noc w dygestorium.

Następnie zamontuj przygotowaną próbkę na górze króćca mikroskopu za pomocą węglowej taśmy klejącej. Na koniec nałóż srebrną farbę na krawędzie kikuta, a następnie od krawędzi króćca do każdej z próbek, aby zmniejszyć nagromadzenie nadmiaru elektronów, co może spowodować niepożądane artefakty obrazu.

W tym eksperymencie muszki owocowe, Drosophila melanogaster, są przygotowywane do analizy SEM przy użyciu środka suszącego HMDS.

- Aby przygotować Drosophila melanogaster, zanurz znieczulone muchy w 1 mililitrze utrwalacza na 2 godziny w temperaturze 4 stopni Celsjusza, upewniając się, że są całkowicie zanurzone.

Użyj szklanej pipety, aby usunąć utrwalenie. Przemyć utrwaloną próbkę Drosophila w 1,5-mililitrowej probówce mikrowirówkowej trzykrotnie 1 mililitrem 0,1-molowego buforu fosforanowego o pH 7,2 w temperaturze pokojowej przez 10 minut. Użyj szklanej pipety do usunięcia każdego prania, uważając, aby nie usunąć próbki.

Następnie odwodnić próbkę w probówce do mikrofuge, w objętości 1 mililitra, używając sortowanej serii etanolu przez 10 minut każda. Użyj szklanej pipety do usunięcia każdego prania, uważając, aby nie usunąć próbki. Trzymaj próbkę w 1,5-mililitrowej probówce wirówkowej z wystarczającą ilością 100% etanolu, aby ją przykryć.

Aby przeprowadzić chemiczne suszenie much za pomocą HMDS, najpierw zastąp 100% roztwór etanolu 1 do 2 roztworem HMDS i 100% etanolem na 20 minut. Następnie zastąp roztwór roztworem HMDS i 100% etanolu w proporcji 2 do 1 na 20 minut. Na koniec zastąp ten roztwór 100% HMDS na 20 minut, a następnie powtórz proces raz.

Przenieś próbkę, która znajduje się w 1,5 mililitrowej probówce wirówkowej i HMDS, do jednorazowego aluminiowego naczynia wagowego. Zastąp 100% gogle HMDS wystarczającą ilością świeżych 100% gogli, aby pokryć próbkę. Umieść próbkę w aluminiowym naczyniu bezpośrednio w okapie oparowym do wyschnięcia z luźną pokrywką, taką jak pudełko, aby zapobiec spadaniu zanieczyszczeń na próbkę, i pozostaw do wyschnięcia na 12 do 24 godzin.

Aby zamontować Drosophilę, oznacz spód aluminiowego króćca montażowego. Użyj precyzyjnej pęsety, aby umieścić suszone muchy w żądanej pozycji na zakładce z kleju węglowego przymocowanej do górnej części kikuta pod mikroskopem preparacyjnym. Nałóż srebrny klej przewodzący wokół zewnętrznych krawędzi klocków.

Użyj wykałaczki, aby połączyć srebrną farbę z muchami, zapewniając przewodność, upewniając się, że farba nie dotyka pożądanego obszaru obrazowania. Umieść króćce w pudełku z uchwytem na króćce. A następnie umieść otwarte pudełko z króćcem w eksykatorze i pozwól srebrnej farbie wyschnąć przez co najmniej trzy godziny.

10:57

Protokoły skaningowej mikroskopii elektronowej (SEM) dla problematycznych próbek roślin, lęgniowców i grzybów

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

12:28

Korelacyjna superrozdzielczość i mikroskopia elektronowa w celu ustalenia lokalizacji białek w siatkówce danio pręgowanego

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

09:15

Przetwarzanie zarodków, skorupek jaj i kultur grzybów do skaningowej mikroskopii elektronowej

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

10:54

Przygotowanie próbki do mikroskopii krioelektronowej za pomocą skupionej wiązki jonów

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

10:21

Skaningowa mikroskopia elektronowa zmacerowanej tkanki w celu wizualizacji macierzy zewnątrzkomórkowej

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

09:58

Otrzymywanie organizmów prokariotycznych i eukariotycznych z wykorzystaniem suszenia chemicznego do analizy morfologicznej w skaningowej mikroskopii elektronowej (SEM)

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

07:33

Przygotowanie próbki biologicznej poprzez zamrażanie pod wysokim ciśnieniem, wspomagane mikrofalami wzmocnienie kontrastu i minimalne zatapianie żywicy w celu obrazowania objętościowego

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

10:09

Metoda przygotowania próbki skaningowego i transmisyjnego mikroskopu elektronowego dla przydatków chrząszcza leśnego

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

11:48

Techniki mikroskopowe interpretacji kolonizacji grzybów w tkankach roślin mykoheterotroficznych i symbiotycznego kiełkowania nasion

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

07:00

Mikrobiota ogrodów mrówek attine: wizualizacja krajobrazu mikrobiologicznego za pomocą skaningowej mikroskopii elektronowej

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

Ostatnia aktualizacja: 15 sierpnia 2026