$$\rightleftharpoonup{xx}$$
$$\longleftharp{xx}$$,
$$\longrightharp{xx}$$,
- Na początek zacznij od odwodnienia i wysuszenia utrwalonej próbki, aby zmniejszyć zniekształcenia próbki spowodowane usuwaniem gazów i ciekłej wody przy obniżonym ciśnieniu roboczym konwencjonalnych skaningowych mikroskopów elektronowych, SEM.
Aby odwodnić próbkę, należy ją przemyć zwiększającym się stężeniem etanolu w wodzie, aż do osiągnięcia 100% etanolu. Następnie powtórzyć ten proces z chemicznym środkiem suszącym w etanolu, aż próbka zostanie przemyta czystym środkiem suszącym. Przenieść próbkę i czynnik suszący do naczynia do odparowywania. Przykryj go minimalną ilością dodatkowego środka osuszającego i pozostaw do wyschnięcia na noc w dygestorium.
Następnie zamontuj przygotowaną próbkę na górze króćca mikroskopu za pomocą węglowej taśmy klejącej. Na koniec nałóż srebrną farbę na krawędzie kikuta, a następnie od krawędzi króćca do każdej z próbek, aby zmniejszyć nagromadzenie nadmiaru elektronów, co może spowodować niepożądane artefakty obrazu.
W tym eksperymencie muszki owocowe, Drosophila melanogaster, są przygotowywane do analizy SEM przy użyciu środka suszącego HMDS.
- Aby przygotować Drosophila melanogaster, zanurz znieczulone muchy w 1 mililitrze utrwalacza na 2 godziny w temperaturze 4 stopni Celsjusza, upewniając się, że są całkowicie zanurzone.
Użyj szklanej pipety, aby usunąć utrwalenie. Przemyć utrwaloną próbkę Drosophila w 1,5-mililitrowej probówce mikrowirówkowej trzykrotnie 1 mililitrem 0,1-molowego buforu fosforanowego o pH 7,2 w temperaturze pokojowej przez 10 minut. Użyj szklanej pipety do usunięcia każdego prania, uważając, aby nie usunąć próbki.
Następnie odwodnić próbkę w probówce do mikrofuge, w objętości 1 mililitra, używając sortowanej serii etanolu przez 10 minut każda. Użyj szklanej pipety do usunięcia każdego prania, uważając, aby nie usunąć próbki. Trzymaj próbkę w 1,5-mililitrowej probówce wirówkowej z wystarczającą ilością 100% etanolu, aby ją przykryć.
Aby przeprowadzić chemiczne suszenie much za pomocą HMDS, najpierw zastąp 100% roztwór etanolu 1 do 2 roztworem HMDS i 100% etanolem na 20 minut. Następnie zastąp roztwór roztworem HMDS i 100% etanolu w proporcji 2 do 1 na 20 minut. Na koniec zastąp ten roztwór 100% HMDS na 20 minut, a następnie powtórz proces raz.
Przenieś próbkę, która znajduje się w 1,5 mililitrowej probówce wirówkowej i HMDS, do jednorazowego aluminiowego naczynia wagowego. Zastąp 100% gogle HMDS wystarczającą ilością świeżych 100% gogli, aby pokryć próbkę. Umieść próbkę w aluminiowym naczyniu bezpośrednio w okapie oparowym do wyschnięcia z luźną pokrywką, taką jak pudełko, aby zapobiec spadaniu zanieczyszczeń na próbkę, i pozostaw do wyschnięcia na 12 do 24 godzin.
Aby zamontować Drosophilę, oznacz spód aluminiowego króćca montażowego. Użyj precyzyjnej pęsety, aby umieścić suszone muchy w żądanej pozycji na zakładce z kleju węglowego przymocowanej do górnej części kikuta pod mikroskopem preparacyjnym. Nałóż srebrny klej przewodzący wokół zewnętrznych krawędzi klocków.
Użyj wykałaczki, aby połączyć srebrną farbę z muchami, zapewniając przewodność, upewniając się, że farba nie dotyka pożądanego obszaru obrazowania. Umieść króćce w pudełku z uchwytem na króćce. A następnie umieść otwarte pudełko z króćcem w eksykatorze i pozwól srebrnej farbie wyschnąć przez co najmniej trzy godziny.