$$\rightleftharpoonup{xx}$$
$$\longleftharp{xx}$$,
$$\longrightharp{xx}$$,
- Zacznij od pulsacyjnego znieczulenia Drosophila wraz z buforem w blenderze, aby rozbić muchy na małe kawałki. Przefiltruj mieszaninę przez siatkę, aby usunąć duże części ciała. Następnie pozwól jajom zatonąć, podczas gdy większe fragmenty pozostaną na powierzchni i można je usunąć.
Powtórz ten proces, używając mniejszej siatki, aby usunąć dodatkowe zanieczyszczenia. Zbierz jaja do fiolki, a jeśli jaja mają być leczone lekiem, zrób to w tym momencie. Następnie usuń płyn i zastąp go utrwalaczem. Dodaj heptan, aby utrwalacz przeniknął przez błonę otaczającą jajo.
Następnie zmyj utrwalacz za pomocą PBS. Aby zabarwić oocyty, usuń ochronne błony zewnętrzne, aby umożliwić penetrację przeciwciał. Odpipetować oocyty na matową część szkiełka podstawowego. Umieść szkiełko nakrywkowe na jajach i delikatnie zwiń szkiełko nakrywkowe ruchami w przód iw tył, aby mechanicznie oddzielić błonę kosmówkową i błonę witelinową od jaja. Oocyty są teraz gotowe do barwienia.
W przykładowym protokole będziemy przygotowywać oocyty w mejozie I do barwienia i wizualizacji aparatu wrzecionowego.
- Na początek wstępnie przetnij wnętrze 5-mililitrowej probówki i pipety Pasteura z PTB, aby zapobiec przywieraniu oocytów do powierzchni. Dodaj 100 mililitrów buforu Roba do blendera, a następnie dodaj 100 do 300 znieczulonych much i pulsuj trzy razy przez jedną sekundę.
Przefiltruj powstałą gnojowicę do 250-mililitrowej zlewki przez dużą siatkę z porami około 1500 mikrometrów. Pozwól filtratowi osiąść przez około dwie minuty, a następnie odessaj górną warstwę, usuwając jak najwięcej dużych części ciała. Ponownie przefiltruj gnojowicę do zlewki o pojemności 250 mililitrów przez mniejszą siatkę o wielkości porów 300 mikrometrów.
Przepłukać pierwszą zlewkę za pomocą dodatkowego buforu w powlekanej pipecie, aby zebrać pozostałe oocyty. Pozwól gnojowicy osiąść na trzy minuty, a następnie odessaj wszystkie oprócz dolnych 10 mililitrów. Wlej jak najwięcej 10 mililitrów do powlekanej 5-mililitrowej tubki. Pozwól zawiesinie osiąść przez około dwie minuty, a następnie ostrożnie usuń płyn.
Dodaj pozostałą część 10 mililitrów gnojowicy i pozwól mieszance ponownie osiąść przed usunięciem płynu. Wypłukać pozostałe oocyty ze zlewki za pomocą dodatkowego buforu w powlekanej pipecie. Pozwól płukaniu osiąść w 5-mililitrowej tubie przez trzy do pięciu minut.
Aby naprawić jajniki, najpierw odessać cały płyn z tkanek i natychmiast dodać 1 mililitr mieszanki utrwalającej. Umieść chusteczki na nutatorze na dwie i pół minuty. Następnie dodaj 1 mililitr heptanu, wiruj probówkę przez jedną minutę, a następnie pozwól oocytom osiąść przez kolejną minutę.
Usuń cały płyn z osiadłej tkanki, a następnie dodaj 1 mililitr 1x PBS. Wiruj probówkę przez 30 sekund, a następnie pozwól oocytom osiąść przez minutę. Następnie usuń cały płyn z probówki i napełnij ją pięcioma mililitrami 1x PBS.
Za pomocą powlekanej pipety dodaj około 500 do 1,000 oocytów do szkiełka z matowego szkła. Usuń wszelkie obce części ciała lub materiał za pomocą kleszczy. Umieść szkiełko nakrywkowe na chusteczce i delikatnie zwiń oocyty, aż wszystkie błony zostaną usunięte. Dobrze sprawdza się przeciąganie krawędzi szkiełka nakrywkowego po oocytach. Okresowo sprawdzaj postęp usuwania membrany pod mikroskopem. Zbyt duży nacisk zniszczy oocyty.