Przygotowanie szkiełka z nicieni: metoda montowania zwierząt na podkładce agarowej

0 wyświetleń2:09 min • April 30th, 2023

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

- Najpierw umieść szkiełko mikroskopowe między dwoma innymi szkiełkami za pomocą taśmy. Zapewniają one podparcie i przekładki do przygotowania padu agarozowego. Następnie umieść kroplę stopionej agarozy na szkiełku. Natychmiast dociśnij go kolejnym suwakiem.

Po zestaleniu się agarozy ostrożnie oddziel szkiełka, aby agaroza pozostała na jednym szkiełku. Zawsze używaj świeżo przygotowanych podpasek, ponieważ wysuszone podpaski mogą odwodnić zwierzęta. Upewnij się, że nie ma pęknięć ani pęcherzyków, które mogą zakłócić integralność klocków.

Następnie dodaj kroplę środka znieczulającego do środka podkładki i przenieś do niej od 10 do 15 zwierząt, przynosząc ze sobą jak najmniej bakterii. Nadmiar bakterii może zakłócać obrazowanie. Jeśli roztwór znieczulający wyschnie, dodaj drugą kroplę na zwierzęta.

Delikatnie umieść szkiełko nakrywkowe na podkładce. Unikaj tworzenia się pęcherzyków lub wywierania na niego zbyt dużego nacisku, aby zapobiec uszkodzeniu zwierząt. Na koniec oznacz slajd, który jest gotowy do obrazowania.

- Zacznij od przygotowania preparatów do obrazowania. Umieść kroplę stopionej agarozy na szkiełku mikroskopowym i natychmiast dociśnij kroplę innym szkiełkiem mikroskopowym, delikatnie spłaszczając agarozę Agaroza musi wyschnąć przez minutę.

Następnie ostrożnie oddziel oba szkiełka i pozostaw zestaloną podkładkę na jednym ze szkiełek. Umieść szkiełko na stoliku mikroskopu i dodaj kroplę środka znieczulającego o pojemności od 5 do 10 mikrolitrów na środek podkładki agras.

Użyj sterylizowanego termicznie kilofa, aby szybko przenieść 10 do 15 zwierząt z talerza podstawowego do kropli środka znieczulającego, zanim roztwór wyschnie. Następnie nałóż szkiełko nakrywkowe, umieszczając je tuż nad wacikiem agarozowym i delikatnie upuszczając w dół.

13:10

Barwienie przeciwciał u C. elegans za pomocą "krakingu zamrażalnego"

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

08:40

Analiza przestrzenna i czasowa aktywnego ERK w linii rozrodczej C. elegans

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

06:58

Analiza cyklu komórkowego w linii zarodkowej C. elegans z analogiem tymidyny EdU

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

11:34

Podstawowe metody pracy z Caenorhabditis elegans: Synchronizacja i obserwacja

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

02:56

Kraking zamrażalny nicieni: metoda wystawiania wewnętrznych tkanek robaków do barwienia

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

03:39

Test in vivo do wykrywania mitofagii u nicieni transgenicznych

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

04:13

Badanie wpływu pestycydów na neurony Caenorhabditis elegans

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

12:15

Jelito C. elegans jako model morfogenezy światła międzykomórkowego i biogenezy błony spolaryzowanej in vivo na poziomie pojedynczej komórki: znakowanie przez barwienie przeciwciałami, analiza utraty funkcji RNAi i obrazowanie

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

07:35

Unieruchomienie Caenorhabditis elegans w celu analizy transportu wewnątrzkomórkowego w neuronach

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

08:47

Ilościowe podejścia do badania struktur komórkowych i morfologii organelli u Caenorhabditis elegans

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

Ostatnia aktualizacja: 22 sierpnia 2026