Dysocjacja pojedynczych komórek Caenorhabditis elegans: metoda izolowania żywych komórek

0 wyświetleń4:51 min • April 30th, 2023

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

- Zacznij od umytych granulowanych robaków i dodaj bufor do lizy zawierający SDS, detergent i DTT, środek redukujący. To rozbija ochronny naskórek robaka, odsłaniając ciało na dysocjację komórek. Unikaj długotrwałego narażenia na bufor do lizy, aby zminimalizować lizę i śmierć komórek.

Następnie usuń odczynniki do lizy za pomocą kilku popłuczyn zimnego buforu izolacyjnego. Ważne jest, aby ten bufor miał prawidłową osmolarność, aby zapobiec śmierci komórki. Użyj enzymu proteazy do rozbicia połączeń komórka-komórka. Wspomóż proces homogenizacji wraz z energią mechaniczną, pipetując mieszaninę do ścianki probówki.

Dodaj pożywkę zawierającą surowicę, aby zatrzymać reakcję enzymatyczną i antybiotyki, aby zapobiec zanieczyszczeniu. Osadzać i kilkakrotnie umyć próbkę, aby usunąć większość zanieczyszczeń.

Na koniec umieść rurkę na lodzie, aby umożliwić sedymentację grawitacyjną. Zanieczyszczenia, w tym resztki naskórka lub grudki komórek, osiądą, podczas gdy zdysocjowane komórki pozostaną zawieszone w górnej warstwie podłoża. Komórki te mogą być wykorzystywane do krótkotrwałej hodowli lub do izolowania określonych populacji komórek za pomocą FACS lub immunoprecypitacji.

W przykładowym protokole dokonamy dysocjacji transgenicznych robaków eksprymujących GFP w neuronach będących przedmiotem zainteresowania, aby wyizolować i przeanalizować te komórki.

- Po zebraniu zwierząt odwiruj je z prędkością 1 600 razy g przez pięć minut. Usuń cały supernatant i ponownie zawieś robaki w 1 mililitrze podłoża M9. Przenieść zawiesinę do 1,5-mililitrowej probówki do mikrowirówki.

Wirować z prędkością 1,600 g przez pięć minut, aby otulić robaki. Następnie dodaj 200 mikrolitrów buforu SDS-DDT i inkubuj w temperaturze pokojowej przez pięć minut. Robaki powinny teraz wydawać się pomarszczone wzdłuż ciała, jeśli są oglądane pod mikroskopem świetlnym.

Następnie dodaj 800 mikrolitrów lodowatego buforu izolacyjnego i wymieszaj, delikatnie przesuwając probówkę. Wirować przy 13 000 razy g i w temperaturze 4 stopni Celsjusza przez jedną minutę, aby granulować robaki. Usunąć supernatant i przemyć 1 mililitrem buforu izolacyjnego.

Powtórz ten proces wirowania i mycia w sumie pięć razy, upewniając się, że za każdym razem ostrożnie usuwasz bufor izolacyjny. Następnie do osadu dodać 100 mikrolitrów mieszaniny proteazy ze Streptomyces griseus rozpuszczonej w buforze izolacyjnym

.

Inkubować w temperaturze pokojowej przez 10 do 15 minut. Upewnij się, że przerywasz działanie mechaniczne, pipetując w górę i w dół od 60 do 70 razy, przykładając końcówkę mikropipety o pojemności 200 mikrolitrów do dna probówki. Aby określić etap trawienia, usuń od 1 do 5 mikrolitrów mieszanki wytrawiającej, upuść ją na szklane szkiełko i sprawdź za pomocą mikroskopu kultur tkankowych.

Po pięciu do siedmiu minutach fragmenty robaka powinny mieć widocznie zredukowany naskórek, a zawiesina komórek będzie łatwo widoczna. Zatrzymaj reakcję, dodając 900 mikrolitrów dostępnego na rynku podłoża L15 firmy Leibovitz uzupełnionego 10% FBS i penicyliną-streptomycyną.

Wirować przy 10 000 g i w temperaturze 4 stopni Celsjusza przez 5 minut, aby osadzać izolowane fragmenty i komórki. Umyj granulowane komórki jeszcze dwukrotnie zimnym podłożem uzupełnionym L15, używając 1 mililitra pożywki na pranie. Ponownie zawiesić granulowane komórki w 1 mililitrze pożywki z dodatkiem L15 i pozostawić na lodzie na 30 minut.

Następnie weź wierzchnią warstwę, która ma około 700 do 800 mikrolitrów, i przenieś ją do probówki mikrowirówkowej. Użyj automatycznego licznika komórek lub hemocytometru, aby zmierzyć gęstość komórek od 10 do 25 mikrolitrów izolowanych komórek.

11:01

Izolacja i hodowla neurosfer mózgowych dorosłych danio pręgowanego

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

09:29

Izolacja i transfer adoptywny komórek dendrytycznych prezentujących antygen traktowany wysoką solą

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

11:34

Sekwencjonowanie i analiza RNA pojedynczych komórek ludzkich wysp trzustkowych

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

03:41

C. elegans (C. elegans) Rozwarstwienie blastomerów: metoda usuwania skorupki jaja i dysocjacji komórek embrionalnych

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

03:10

Trawienie enzymatyczne i dysocjacja ręczna: metoda przygotowania zarodków C. elegans do hodowli komórkowej

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

02:10

Izolacja neuronów z Caenorhabditis elegans poprzez sortowanie komórek aktywowane fluorescencją

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

09:10

Metoda hodowli embrionalnych komórek C. elegans

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

09:42

Izolacja określonych populacji neuronów od glisty Caenorhabditis elegans

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

06:09

Izolacja aktywnego ekstraktu jądrowego Caenorhabditis elegans i rekonstytucja do transkrypcji in vitro

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

08:57

Mikrodysekcja laserowa do zastosowań jednotkankowych niezależnych od gatunku

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

Ostatnia aktualizacja: 1 sierpnia 2026