JoVE Encyclopedia of Experiments
Biologia
0 wyświetleń • 3:32 min • April 30th, 2023
- Zacznij od kropli roztworu buforowego na szkiełku mikroskopowym i przenieś nienaruszone robaki do kropli. Gdy robaki znajdą się na miejscu, użyj niestrzępiącej się chusteczki, aby wchłonąć i usunąć bufor. Utrwal próbkę, kąpiąc próbki w 90% etanolu kilka razy, pozwalając mu odparować po każdym zastosowaniu.
Gdy etanol odparuje po ostatnim płukaniu, dodaj do próbki roztwór zawierający barwnik kwasu nukleinowego, DAPI. DAPI wiąże się preferencyjnie z zasadami adeniny i tyminy w mniejszym rowku DNA. Po związaniu kompleks DAPI-DNA pochłania światło UV i emituje widzialne światło niebieskie.
Następnie dodaj środek konserwujący zapobiegający blaknięciu, aby przedłużyć okres trwałości próbki. Nałóż szkiełko nakrywkowe i uszczelnij je do szkiełka. Następnie użyj mikroskopu fluorescencyjnego z niebieskim filtrem, aby uwidocznić ciała DAPI, które w zależności od komórki i jej statusu cyklu mogą reprezentować pojedyncze chromosomy, pary chromatyd siostrzanych lub całe jądra. W tym eksperymencie policzymy pary chromatyd siostrzanych barwionych DAPI w oocytach, aby zidentyfikować tetraploidalne szczepy Caenorhabditis elegans.
- Szczepy tetraploidalne mają 12 par chromosomów, które można zwalidować, licząc ciała barwione DAPI w niezapłodnionych oocytach. Aby to zrobić, upuść od pięciu do dziesięciu mikrolitrów buforu M9 na szkiełko i przenieś od sześciu do 10 przypuszczalnych tetraploidów do kropli. Pod mikroskopem preparacyjnym ostrożnie zanurz większość M9 w niestrzępiącej się chusteczce czyszczącej.
Następnie upuść 10 mikrolitrów 90% etanolu na robaki i obserwuj, jak etanol całkowicie odparowuje. Jak tylko parowanie zakończy się parowanie, powtórz proces dodawania etanolu i obserwuj, jak odparowuje. W sumie dodaj 10 mikrolitrów w czterech aplikacjach. Po odparowaniu ostatniej kropli dodaj sześć mikrolitrów DAPI w stężeniu dwóch nanogramów na mikrolitr lub podobną plamę.
W celu długotrwałego przechowywania szkiełek należy zamontować robaki w dostępnym w handlu lub domowym środku zapobiegającym blaknięciu. Następnie dodaj szkiełko nakrywkowe i uszczelnij krawędzie lakierem do paznokci. Po wyschnięciu lakieru do paznokci szkiełka można naciąć. Użyj mikroskopu fluorescencyjnego i powiększenia 100x.
Najpierw znajdź najbardziej dojrzały niezapłodniony oocyt, który znajduje się bezpośrednio przy spermatece i nie dostał się jeszcze ani do spermateki, ani do macicy. Ciała DAPI są tutaj przypuszczalnie pojedynczymi parami chromosomów. Następnie skup się na jądrze oocytu i użyj precyzyjnej ostrości mikroskopu, aby powoli je zeskanować, od góry do dołu, licząc ciała DAPI. Następnie przelicz ciała DAPI w tym samym jądrze, przesuwając ostrość od dołu do góry.
Oocyty typu dzikiego mają średnio sześć ciał DAPI. Obecność 12 ciał DAPI wskazuje, że zwierzęta w tym szczepie są częściowymi lub całkowitymi tetraploidami. Przeanalizuj co najmniej 10 zwierząt z każdego szczepu. Często pary chromosomów będą bardzo bliskie lub stykające się, więc liczba ciał DAPI jest często mniejsza niż rzeczywista liczba par chromosomów.
Niniejsze badanie opisuje metodę identyfikacji szczepów tetraploidalnych Caenorhabditis elegans poprzez zliczanie barwionych DAPI par chromatyd siostrzanych w oocytach. Technika ta obejmuje utrwalenie próbek, barwienie DAPI oraz wizualizację pod mikroskopem fluorescencyjnym.
Dokładna wizualizacja i kwantyfikacja zawartości chromosomowej w oocytach C. elegans umożliwia rzetelną walidację manipulacji ploidalnością, co wspiera wiarygodność modeli genetycznych we wczesnej fazie odkryć. Metoda ta zapewnia standaryzowany schemat postępowania w celu rozróżnienia szczepów diploidalnych od tetraploidalnych, co bezpośrednio wpływa na pewność prognostyczną późniejszych badań genetycznych i fenotypowych. Niezawodna ocena ploidalności jest kluczowa dla ciągłości translacyjnej oraz optymalizacji ryzyka w portfelach badawczo-rozwojowych opartych na modelach genetycznych.
Niniejszy protokół utrwalania w etanolu i barwienia DAPI integruje etap walidacji modelu genetycznego z wczesnym przesiewem fenotypowym, stanowiąc podstawę dla późniejszych badań mechanistycznych i translacyjnych.
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Ostatnia aktualizacja: 29 sierpnia 2026