JoVE Encyclopedia of Experiments
Biologia
0 wyświetleń • 3:01 min • April 30th, 2023
- U much Drosophilia zbliżający się bodziec wizualny sygnalizujący zbliżanie się drapieżnika aktywuje obwody neuronalne, które wywołują reakcję ucieczki. Aby manipulować obwodem neuronalnym, który kontroluje taką odpowiedź, należy wyrazić transgeniczną światłoczułą opsynę, taką jak rodopsyna kanałowa-2 w określonych neuronach w tym obwodzie.
Rodopsyna kanałowa jest światłoczułym kanałem kationowym, który otwiera się pod wpływem jasnego niebieskiego światła. Późniejszy napływ jonów sodu zwiększa potencjał czynnościowy, który powoduje, że neuron uruchamia się i przekazuje informacje wzdłuż obwodu. Oprócz bodźca świetlnego, do otwarcia rodopsyny kanałowej wymagany jest kofaktor all-trans-retinal.
Dlatego należy zapewnić all-trans-retinal w pokarmie dla much, ponieważ zwykle występuje on w bardzo małych ilościach. Dodatkowo, badając rolę neuronów w obwodzie neuronalnym zaangażowanym w reakcję na bodziec wzrokowy, użyj much, które są niewidome wizualnie, aby zapobiec innym reakcjom świetlnym.
Na koniec użyj niebieskiego światła LED, aby wywołać to samo zachowanie, które jest spowodowane zbliżającym się bodźcem. W przykładowym protokole zobaczymy przygotowywanie posiłków i reakcję behawioralną wywołaną światłem u much wyrażających rodopsynę kanałową w neuronach płata wzrokowego.
- Zacznij od stopienia standardowego pokarmu na muchy z mąki kukurydzianej w kuchence mikrofalowej i pozwól mu ostygnąć, aż będzie ciepły w dotyku. Po schłodzeniu wymieszaj 50 mikrolitrów wcześniej przygotowanego 20-milimolowego all-trans-retinalu z każdą fiolką. Następnie pozostawić fiolki do ostygnięcia i chronić przed światłem do czasu, gdy będzie to wymagane.
Najpierw krótko znieczul muchy na lodzie. Następnie umieść pojedyncze muchy w końcówkach pipet P1000 z końcówką naciętą tak, aby utworzyła por o średnicy około 2,25 milimetra i uszczelnij każdy koniec taśmą. Gdy mucha się obudzi i zacznie badać końcówkę pipety, usuń taśmę i szybko umieść końcówkę w rowku w pionowym uchwycie. Zabezpiecz chip na miejscu za pomocą skrzydełkowej, która zamyka dolną część końcówki.
Muchy zazwyczaj badają końcówkę przez 30 do 60 sekund. Gdy mucha zbliży się do szczytu końcówki, rozpocznij nagrywanie kamery tuż przed tym, jak mucha wyłoni się na platformie. Po tym, jak mucha pojawi się na platformie, odczekaj od jednej do dwóch sekund, a następnie włącz niebieskie diody LED. Użyj timera, aby ręcznie zmierzyć czas, aż mucha rozpocznie lot.
Niniejsze badanie analizuje obwody neuronalne u Drosophila, które aktywują reakcję ucieczki w odpowiedzi na zbliżające się bodźce wzrokowe. Dzięki zastosowaniu channelrhodopsin-2, opsyny światłoczułej, badacze mogą manipulować tymi obwodami i obserwować reakcje behawioralne wywołane światłem niebieskim.
Optogenetyczna manipulacja obwodami neuronalnymi u Drosophila zapewnia skalowalny, genetycznie podatny system służący do ograniczania ryzyka podczas walidacji celów w procesie odkrywania leków w neuronauce. Dzięki umożliwieniu precyzyjnej, zależnej od światła kontroli określonych populacji neuronalnych, podejście to wspiera mechanistyczną analizę ścieżek istotnych dla przebiegu chorób z wysoką rozdzielczością czasową i przestrzenną. Metoda ta zwiększa pewność prognostyczną we wczesnej fazie odkrywania poprzez powiązanie manipulacji genetycznych z mierzalnymi efektami behawioralnymi, co dostarcza informacji niezbędnych do podejmowania decyzji o kontynuacji lub przerwaniu prac (go/no-go) w procesie wyboru celu.
Metoda ta integruje kontinuum procesu odkrywania leków – od walidacji celu po identyfikację związku wiodącego, w którym manipulacja obwodami optogenetycznymi dostarcza informacji niezbędnych do przesiewu związków oraz badań nad mechanizmem działania.
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Ostatnia aktualizacja: 29 sierpnia 2026