Inflacja atramentu w Indiach: metoda barwienia do wizualizacji guzków nowotworowych

0 wyświetleń3:07 min • April 30th, 2023

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Zacznij od umieszczenia uśpionej myszy brzuszną stroną do góry na łóżku chirurgicznym i zabezpieczenia kończyn zwierzęcia. Za pomocą nożyczek przetnij wzdłuż linii środkowej przez klatkę piersiową aż do gruczołów ślinowych. Umieść końcówkę pipety pod tchawicą, aby ją podnieść i odizolować. Obróć łóżko chirurgiczne o 180 stopni. Włożyć igłę strzykawki zawierającą plamę z atramentu indyjskiego do tchawicy i wstrzykiwać atrament do płuc, aż poczujesz opór.

Komórki rakowe wydzielają dużą ilość kwasu mlekowego, który generuje silny ładunek ujemny na powierzchni komórki. Kiedy te komórki są zabarwione atramentem indyjskim, kwaśną plamą, powierzchnia komórki odpycha plamę i pozostaje niezabarwiona.

Użyj nożyczek, aby przeciąć tchawicę i wsuń pęsetę pod płuca. Delikatnie wyciągnij płuca z ciała zwierzęcia. Wypłucz płuca w wodzie i przenieś je do fiolki zawierającej roztwór Fekete, aby usunąć nadmiar plamy i utrwalić tkankę w okapie. Guzki guza wydają się białe na ciemnym tle.

W poniższym protokole wykonamy technikę napełniania atramentem indyjskim w celu walidacji przerzutów do płuc.

Aby potwierdzić przerzuty guza pierwotnego do płuc, najpierw umieść mysz w pozycji leżącej na płycie styropianowej i zabezpiecz nogi, aby zapewnić swobodny dostęp do tchawicy. Spryskaj mysz 70% etanolem. Następnie użyj nożyczek, aby wykonać nacięcie wzdłuż linii środkowej środkowego brzucha myszy przez klatkę piersiową i w górę w kierunku gruczołów ślinowych. Zidentyfikuj tchawicę. Następnie za pomocą kleszczy usuń otaczające tkanki.

Następnie, trzymając w jednej ręce końcówkę pipety, przeciągnij końcówkę pod tchawicę i delikatnie unieś tkankę do góry i odsuń ją od ciała. Trzymając tchawicę uniesioną, obróć platformę sekcyjną o 180 stopni. Następnie włóż do tchawicy strzykawkę tuberkulinową o pojemności pół cm3 27 i całkowicie napompuj płuca atramentem indyjskim, aż poczujesz silny opór.

Następnie za pomocą nożyczek przetnij tchawicę. Trzymając mysz w miejscu za pomocą jednego kleszcza, włóż kolejne kleszcze pod płuca i wyciągnij płaty płuc z myszy. Krótko przepłukać płuca w zlewce z wodą i przenieść tkankę do okapu wyciągowego. Następnie umieść płuca w szklanej fiolce scyntylacyjnej zawierającej 3 mililitry roztworu Fekete, zakrywając fiolkę, aby zapobiec parowaniu roztworu. Po kilku minutach przenieś płuca na szalkę Petriego i policz liczbę pojedynczych, białych, przerzutowych guzków nowotworowych.

06:31

Guz pierwotny i izolacja komórek MEF w celu zbadania przerzutów do płuc

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

07:39

Opracowanie testu kolonizacji płuc do wizualizacji krążących komórek nowotworowych w tkankach płuc

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

11:15

Przedkliniczny mysi model kostniakomięsaka w celu zdefiniowania komunikacji za pośrednictwem pęcherzyków zewnątrzkomórkowych między guzem a mezenchymalnymi komórkami macierzystymi

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

08:06

Model mysi eksperymentalnej przerzutowości oraz immunoterapii z adoptywnym transferem limfocytów CTL

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

12:03

Obrazowanie wielofotonowe inwazji komórek nowotworowych w ortotopowym modelu mysim dla raka płaskonabłonkowego jamy ustnej

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

14:04

Nanocząsteczki wirusowe do obrazowania guzów in vivo

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

13:16

Dożylna perfuzja tuszem z sadzy pozwala na wiarygodną wizualizację naczyń mózgowych

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

04:13

Technika oceny lokalizacji in vivo przeciwciał specyficznych dla nowotworu

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

07:00

Iniekcja do tętnicy biodrowej w celu skutecznego i selektywnego modelowania mikroskopijnych przerzutów do kości

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

08:11

Ortotopowy mysi model spontanicznych przerzutów raka piersi

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

Ostatnia aktualizacja: 22 sierpnia 2026