$$\rightleftharpoonup{xx}$$
$$\longleftharp{xx}$$,
$$\longrightharp{xx}$$,
- Czynniki transkrypcyjne to białka, które wiążą się z określonym miejscem w DNA w celu regulacji ekspresji genów. Błędy w czynnikach transkrypcyjnych zmieniają tę aktywność, prowadząc do nadmiernej ekspresji genów, co powoduje raka. Aby zrozumieć rolę czynników transkrypcyjnych i regulacji genów, możemy przeprowadzić test immunoprecypitacji chromatyny lub CHIP, a ścinanie chromatyny jest ważnym krokiem w przepływie pracy CHIP.
W celu ścinania chromatyny ustabilizuj kompleks DNA-białko, dodając formaldehyd. Formaldehyd łączy białka z powiązaną sekwencją DNA, tworząc wiązania kowalencyjne. Następnie użyj odpowiedniego buforu do lizy komórek w celu uwolnienia chromatyny zawierającej usieciowane kompleksy DNA-białko i odwiruj. Ścinać chromatynę za pomocą enzymu nukleazy mikrokokowej. Enzym ten rozszczepia chromatynę między nukleosomami i trawi luźne końce DNA. Odwirować mieszaninę i zebrać supernatant.
Załaduj supernatant na żel agarozowy TBE, aby przeanalizować odpowiednią wielkość fragmentów DNA. Zastosuj pole elektryczne w poprzek żelu, co powoduje, że ujemnie naładowane DNA chromatyny przemieszcza się w kierunku anody. Mniejsze fragmenty przemieszczają się dalej w dół żelu. Ścięta chromatyna pojawia się jako rozmaz w żelu. W poniższym protokole będziemy ścinać chromatynę linii komórkowej przewlekłej białaczki szpikowej za pomocą sonikacji.
- Na początek napełnij 1,5-milimetrową rurkę 1 mililitrem 37% formaldehydu. Następnie napełnij kolejną 1,5 mililitrową probówkę 1 mililitrem 1,25 molowej glicyny i 5-mililitrową rurkę 4 mililitrami PBS. Następnie, po stymulacji komórek, obróć komórki zgodnie z protokołem tekstowym i ponownie zawieś komórki w 500 mikrolitrach PBS i umieść probówkę w pudełku wypełnionym lodem. Dodaj 13,5% mikrolitrów 37% formaldehydu do komórek i mieszaj, pipetując w górę iw dół.
Następnie inkubować zawiesinę w temperaturze pokojowej. Następnie dodaj 57 mikrolitrów glicyny o stężeniu 1,25 molowym, aby zatrzymać utrwalanie i pozostawić tę zawiesinę do inkubacji w temperaturze pokojowej przez pięć minut. Bezpośrednio po okresie inkubacji umieścić komórki na lodzie i odwirować komórki w temperaturze 500 razy g przez pięć minut w temperaturze 4 stopni Celsjusza. Następnie odessać supernatant. Następnie umyj komórki dwukrotnie 1 mililitrem lodowatego PBS w ilości 200 razy g przez pięć minut w temperaturze 4 stopni Celsjusza i usuń supernatant. Ponownie zawiesić osad komórkowy w 5 mililitrach buforu do lizy-1, pipetując w górę iw dół.
Następnie umieść próbki na lodzie i inkubuj je, wstrząsając przez 10 minut. Następnie odwiruj probówki w temperaturze 500 razy g przez pięć minut w temperaturze 4 stopni Celsjusza. Następnie za pomocą pipety ostrożnie usuń supernatant. Homogenizuj komórki w 5 mililitrach buforu do lizy-2 i pipetuj w górę iw dół, aby wymieszać. Następnie inkubuj komórki na lodzie przez 10 minut, potrząsając. Po okresie inkubacji odwirować probówki pod ciśnieniem 500 g przez pięć minut w temperaturze 4 stopni Celsjusza i ostrożnie usunąć supernatant.
Następnie ponownie zawiesić osad komórkowy w buforze ścinającym-1 z inhibitorem proteazy 1X. Następnie inkubować zawiesinę komórkową na lodzie przez 10 minut. Przenieść 140 mikrolitrów zawiesiny komórek do probówek sonikatora, uważając, aby nie tworzyć pęcherzyków powietrza. Umieść probówki w zogniskowanym ultrasonografie w temperaturze 7 stopni Celsjusza i ścinaj przez dziesięć do siedmiu i pół minuty. Przenieś zawiesinę komórek do probówek o pojemności 1,5 mililitra. Odwirować próbki o masie 15 700 razy g przez 10 minut w temperaturze 4 stopni Celsjusza i zebrać supernatant do nowej probówki.