RESEARCH
Peer reviewed scientific video journal
Video encyclopedia of advanced research methods
Visualizing science through experiment videos
EDUCATION
Video textbooks for undergraduate courses
Visual demonstrations of key scientific experiments
BUSINESS
Video textbooks for business education
OTHERS
Interactive video based quizzes for formative assessments
Products
RESEARCH
JoVE Journal
Peer reviewed scientific video journal
JoVE Encyclopedia of Experiments
Video encyclopedia of advanced research methods
EDUCATION
JoVE Core
Video textbooks for undergraduates
JoVE Science Education
Visual demonstrations of key scientific experiments
JoVE Lab Manual
Videos of experiments for undergraduate lab courses
BUSINESS
JoVE Business
Video textbooks for business education
Solutions
Language
pl_PL
Menu
Menu
Menu
Menu
Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.
- Podczas ortotopowego przeszczepu homograftu guza komórki nowotworowe lub fragmenty guza od dawcy nowotworowego są przeszczepiane biorcy należącemu do tego samego gatunku w narządzie lub miejscu pasującym do histotypu guza. Zacznij od pobrania znieczulonej myszy dawcy z guzem, zawierającym komórki pochodzenia trzustkowego. Wysterylizuj obszar i chirurgicznie zbierz guz. Umyj chusteczkę, aby usunąć krew i posiekaj ją na fragmenty. Następnie umieść znieczuloną mysz biorcę w prawej pozycji bocznej i wysterylizuj jej okolicę brzucha. Chirurgicznie odsłonić śledzionę.
Następnie delikatnie wyciągnij część trzustki spod śledziony. Umieść fragment guza na trzustce i zszyj je razem. Zamknij brzuch i pozwól myszy dojść do siebie w klatce. Codziennie monitoruj mysz biorcy, aby obserwować wzrost ortotopowego guza trzustki. W poniższym protokole pokażemy ortotopowe przeszczepienie homograftu gruczolakoraka przewodowego trzustki od myszy dawcy C57 black 6 do trzustki myszy biorcy C57 black 6.
- Monitoruj masę ciała myszy C57 black 6 za pomocą wagi. Monitoruj również objętość guza myszy dawców z guzem za pomocą pomiaru suwmiarki. Po eutanazji zwierzęcia w kapturze zagrożenia biologicznego zgodnie z protokołem, wysterylizuj skórę wokół guza za pomocą wacików jodoforowych. Po chirurgicznym usunięciu guza, jak opisano w protokole tekstowym, umieść guz na szalce Petriego zawierającej 20 mililitrów PBS, która została wstępnie schłodzona do czterech stopni Celsjusza. Jeśli krew jest zanieczyszczająca, przenieś guz na inną szalkę Petriego i umyj guz PBS.
Przetnij guz na pół. Usuń nadmiar skóry, naczyń, zwapnienia i/lub martwicę. Wybierz tylko nienaruszone kawałki guza i umieść je w sterylnej 50-mililitrowej probówce wirówkowej. Dodaj 20 mililitrów PBS przed przetransportowaniem probówki do oddzielnego pomieszczenia dla zwierząt w celu badań farmakologicznych. Aby przygotować się do implantacji ortotopowej, zamocuj w pełni znieczuloną mysz na tablicy eksperymentalnej w odpowiedniej pozycji bocznej. Zdezynfekuj skórę wokół śledziony jodem, a następnie odjodyniuj 75% alkoholem etylowym.
Znajdź środkowy punkt śledziony i wykonaj jednocentymetrowe pionowe nacięcie na brzuchu, aby odsłonić śledzionę. Delikatnie wyciągnij część tkanki trzustki pod śledzioną za pomocą pęsety z płaską końcówką i zszyj fragment guza homoprzeszczepu myszy z myszy nasiennej na trzustkę myszy biorcy za pomocą wchłanialnego szwu chirurgicznego 9-0. Zamknij brzuch jedwabnym szwem 6-0 podwójnym szwem. Osiągnij homeostazę przez kompresję.
Po zakończeniu implantacji guza trzymaj zwierzęta w ciepłej klatce, o ile nie wystąpi krwawienie lub wyciek tkanki nowotworowej. Monitorować zwierzę, dopóki nie odzyska wystarczającej przytomności, aby utrzymać pozycję leżącą mostka. Zwróć zwierzę do pomieszczenia dla zwierząt po pełnym wyzdrowieniu ze znieczulenia. Monitoruj myszy z guzem, badając palpacyjnie brzuch w pobliżu śledziony i wybierz myszy z guzami ortotopowymi.
Related Videos
11:27
Related Videos
16.9K Views
05:05
Related Videos
11.1K Views
06:16
Related Videos
13K Views