Name: Echokardiografia myszy i obrazowanie ultrasonograficzne (Wideo) | JoVE Journal
Uploaded: 2010-08-08T19:00:00.000+00:00
Duration: 9 min
Description: Poznaj echokardiografię myszy z wysokoczęstotliwościowym ultrasonografem do oceny funkcji serca. Metoda obejmuje obrazowanie B-mode, Doppler i M-mode w badaniach kardiologicznych.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Źródła finansowania: HL084087, HL089885, HL091475, S10RR027946, T32 GM07356

1. Przygotowanie do obrazowania
<ol>
 <li>Zacznij od unieruchomienia myszy znieczulonej izofluranem na platformie do obsługi zwierząt w pozycji grzbietnej. Nałóż maskę na nos i pysk zwierzęcia, aby podawać 0,5-1% izofluranu w celu utrzymania znieczulenia.</li>
 <li>Przymocuj łapy myszy do elektrod za pomocą żelu przewodzącego. Zapewnij odpowiedni zapis EKG, utrzymuj temperaturę ciała na poziomie 37 °C oraz monitoruj częstotliwość oddechów w celu oceny fizjologicznej podczas obrazowania.</li>
 <li>Nałóż krem do depilacji na klatkę piersiową i górną część brzucha myszy.</li>
 <li>Po 2 minutach usuń krem za pomocą mokrej gazy.</li>
</ol>
2. Widok długiej osi przyparasternalnej lewej
<ol>
 <li>Po przygotowaniu myszy do obrazowania, przechyl lewą stronę platformy, aby obrócić platformę do unieruchamiania zwierzęcia o 30 stopni wokół osi przednio-tylnej.</li>
 <li>Ustaw przetwornik w pozycji pionowej i obróć o 10 stopni przeciwnie do ruchu wskazówek zegara, tak aby wcięcie było skierowane w stronę tylnej części ciała myszy.</li>
 <li>Następnie, korzystając z dwuwymiarowego trybu podglądu/wideo „B-mode”, opuść przetwornik nad lewą linią przymostkową, aż serce pojawi się w polu widzenia. Po pojawieniu się tętnicy płucnej, wykonaj i zapisz obrazy.</li>
 <li>Nadal w trybie B-mode, przesuń przetwornik w lewo lub w prawo, aż widoczny będzie odpływ aorty oraz wierzchołek serca. Może być konieczny obrót głowicy, aby zapewnić właściwe wyrównanie z długą osią serca.</li>
 <li>Użyj funkcji przechwytywania wideo, aby uzyskać dane do późniejszej analizy. Zminimalizuj pole widzenia, aby zapewnić jak najwyższą możliwą liczbę klatek na sekundę dla późniejszych analiz regionalnego odkształcenia (strain). Przy każdym przechwytywaniu wideo zapisywane jest poprzednich 100 klatek.</li>
 <li>Przełącz na tryb Color Doppler, wybierając opcję „Color Doppler”. Chociaż Color Doppler jest dostępny u ludzi od ponad 30 lat, technologia ta stała się możliwa w badaniach ultrasonograficznych gryzoni dopiero niedawno.</li>
 <li>Aby szybko monitorować kierunek i prędkość przepływu krwi, nałożone okno Dopplera digitalizuje przepływ w kolorze od czerwonego, wskazującego przepływ w stronę głowicy, do niebieskiego, wskazującego przepływ oddalający się od głowicy. Przechwyć niezbędne obrazy za pomocą funkcji zapisu obrazu.</li>
 <li>Po uzyskaniu wszystkich danych Color Doppler, przełącz urządzenie w tryb Pulse-Wave Doppler, który jest widokiem jednowymiarowym służącym do cyfrowej oceny kierunku i prędkości przepływu krwi w czasie.</li>
 <li>Przesuń głowicę lekko w stronę głowy myszy, aż pojawi się tętnica płucna. W kontekście niewydolności serca pomiary PW/Color Doppler tętnicy płucnej mogą służyć jako wskaźnik funkcji prawej komory serca. Przechwyć obrazy według uznania.</li>
</ol>
3. Krótka oś środkowej części brodawki lewej
<ol>
 <li>Echokardiografia w osi krótkiej umożliwia obrazowanie całej lewej komory kurczącej się koncentrycznie oraz pozwala na dokładną ocenę funkcji i morfometrii serca w trybach B i M.</li>
 <li>W trybie B, zaczynając od widoku długiej osi przymostkowej, należy obrócić przetwornik prostopadle do widoku długiej osi przymostkowej lewej komory na poziomie mięśnia papilarnego.</li>
 <li>Należy upewnić się, że sonda znajduje się w odpowiednim miejscu wzdłuż lewej komory. Oba mięśnie papilarne powinny być wyraźnie widoczne i rozdzielone, co zapewni poziomy widok w przekroju poprzecznym.</li>
 <li>W trybie M należy umieścić objętość próbkowania w centrum komory i zebrać dane.</li>
 <li>W razie potrzeby należy podłączyć, uruchomić i wykorzystać silnik trójwymiarowy w celu uzyskania obrazów niezbędnych do pełnej rekonstrukcji 3D.</li>
 <li>Ustawienia fizjologiczne, w tym częstość oddechów i EKG, są skonfigurowane do synchronizacji akwizycji obrazów 3D w końcowym rozkurczu.</li>
 <li>Uruchamia się silnik obrazowania 3D w celu przechwycenia obrazu w końcowym rozkurczu.</li>
 <li>Po zakończeniu akwizycji 3D w końcowym rozkurczu, ustawienia fizjologiczne dla częstości oddechów i EKG są konfigur pregnancies do synchronizacji akwizycji obrazów 3D w końcowym skurczu.</li>
 <li>Uruchamia się silnik obrazowania 3D w celu przechwycenia obrazu w końcowym skurczu.</li>
</ol>
4. Widok podżebrowy (czterojamowy)
<ol>
 <li>Przekrój podżebrowy jest najlepszą metodą pomiaru szczelności oraz gradientów ciśnienia w zastawce mitralnej.</li>
 <li>Przechyl górny lewy róg platformy całkowicie w dół. Skieruj przetwornik w stronę prawego barku myszy, zachowując rotację głowicy w osi krótkiej.</li>
 <li>W trybie B obniż przetwornik nad górną częścią brzucha tak, aby spoczywał poniżej przepony. Zwizualizuj zastawkę mitralną przy użyciu kolorowego Dopplera, zgodnie z wcześniejszym opisem.</li>
</ol>
5. Widok aorty
<ol>
 <li>Obróć platformę do obsługi zwierząt do pozycji bocznej lewej. Lewa strona platformy powinna być maksymalnie przechylona. Następnie skieruj przetwornik, przechylony maksymalnie w górę, wzdłuż osi ciała myszy na poziomie łopatki.</li>
 <li>Opuść przetwornik poniżej prawego barku wzdłuż przedniej linii pachowej. Zlokalizuj łuk aorty i wykonaj obrazowanie.</li>
 <li>Unieś głowę myszy i opuść przetwornik do wcięcia nadmostkowego myszy. Zwizualizuj przepływ krwi za pomocą kolorowego Dopplera i wykonaj obrazowanie.</li>
</ol>
6. Reprezentatywne wyniki
<ol>
 <li>Jest to widok wzdłużny serca w trybie B, przedstawiający lewą komorę oraz niewielką część prawej komory. </li>
 <li>Tutaj wykonano obraz krótkiej osi lewej komory innego serca w trybie M. Górny obraz przedstawia żółtą linię objętości próbkowania przebiegającą przez środek komory. Dolny obraz to jednowymiarowy zapis powyższej linii w czasie oraz obliczenia morfometryczne zaznaczone kolorem cyjanowym</li>
 <li>Jest to widok łuku aorty w trybie B. Po lewej stronie widoczna jest zamknięta zastawka aortalna, a po prawej naczynia krwionośne zaopatrujące głowę i kończyny górne myszy. </li>
 <li>Analizę odkształcenia radialnego (Radial Strain) przeprowadzono u myszy przed wystąpieniem dysfunkcji serca (obraz górny) oraz u myszy z globalną hipokinezą i regionalną dyssynchronią (obraz dolny). Oba fenotypy wywołano poprzez przezpoprzeczną konstrikcję aorty, będącą modelem mysim zwiększonego obciążenia następczego. </li>
 <li>Na rysunku czas wyświetlono na osi x, a odkształcenie radialne, wyrażone w procentach, na osi y. Analiza odkształceń umożliwia regionalną ocenę funkcji serca, która mogłaby pozostać niezauważona w konwencjonalnych technikach, takich jak tryb M, który bezpośrednio mierzy funkcję jedynie przedniej ściany wolnej i ściany tylnej. </li>
 <li>Przednia ściana wolna jest zaznaczona kolorem zielonym. Ściana boczna jest zaznaczona linią różową. Ściana tylna jest zaznaczona kolorem cyjanowym. Dolna ściana wolna jest zaznaczona kolorem niebieskim. Tylna część przegrody jest zaznaczona kolorem żółtym. Przednia część przegrody jest zaznaczona kolorem magenta, a średnia wartość jest zaznaczona kolorem czarnym.</li>
</ol>
<img src="/files/ftp_upload/2100/2100fig1.jpg" alt="Schemat badania USG serca z opisanymi strukturami: wierzchołek, lewa komora, prawa komora, aorta." data-altupdatedat="1788235205000" data-alt="Rysunek 1"> Rysunek 1. Widok w osi długiej w przekroju przymostkowym lewym w trybie B.
<img src="/files/ftp_upload/2100/2100fig2.jpg" alt="Ultrasonografia serca, echokardiografia w trybie M, przedstawiająca wymiary i pomiary ścian serca." data-altupdatedat="1788235205000" data-alt="Rysunek 2"> Rysunek 2. Widok osi krótkiej lewej komory w trybie M.
<img src="/files/ftp_upload/2100/2100fig3.jpg" alt="Ultradźwięki układu sercowo-naczyniowego, schemat z opisami, przedstawiający anatomię aorty i jej odgałęzienia, takie jak aorta wstępująca." data-altupdatedat="1788235205000" data-alt="Rycina 3"> Rycina 3. Widok łuku aorty w trybie B.
<img src="/files/ftp_upload/2100/2100fig4.jpg" alt="Wykres analizy odkształcenia radialnego, czas do szczytu, diagramy fazowe dla oceny funkcji serca." data-altupdatedat="1788235205000" data-alt="Rysunek 4"> Rysunek 4. Analiza odkształcenia radialnego u dwóch myszy 12 tygodni po TAC. Zielony = przednia ściana wolna. Różowy = ściana boczna. Cyjanowy = ściana tylna. Niebieski = dolna ściana wolna. Żółty = tylna ściana przegrody. Magenta = przednia przegroda. Czarny = średnia A) Mysz z zachowaną funkcją. B) Mysz z globalną hipokinezą i regionalną dyssynchronią.

<ol><li>Patten, R. D., Hall-Porter, M. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Small+animal+models+of+heart+failure%3A+development+of+novel+therapies%2C+past+and+present%5BTitle%5D)+AND+%22Circ+Heart+Fail%22%5BJournal%5D)">Small animal models of heart failure: development of novel therapies, past and present.</a> Circ Heart Fail. 2, 138-144 (2009).</li>
<li>Li, Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Quantification+and+MRI+Validation+of+Regional+Contractile+Dysfunction+in+Mice+Post+Myocardial+Infarction+Using+High+Resolution+Ultrasound%5BTitle%5D)+AND+%22Ultrasound+in+Medicine+%26+Biology%22%5BJournal%5D)">Quantification and MRI Validation of Regional Contractile Dysfunction in Mice Post Myocardial Infarction Using High Resolution Ultrasound.</a> Ultrasound in Medicine & Biology. 33, 894-904 (2007).</li>
<li>Gardin, J. M., Siri, F. M., Kitsis, R. N., Edwards, J. G., Leinwand, L. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Echocardiographic+Assessment+of+Left+Ventricular+Mass+and+Systolic+Function+in+Mice%5BTitle%5D)+AND+%22Circ+Res%22%5BJournal%5D)">Echocardiographic Assessment of Left Ventricular Mass and Systolic Function in Mice.</a> Circ Res. 76, 907-914 (1995).</li>
<li>JG, S. tevenson, Weiler, T. B. M., EA, H. oward, Eyer, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Digital+multigate+Doppler+with+color+echo+and+Doppler+display+-+Diagnosis+of+atrial+and+ventricular+septal+defects%5BTitle%5D)+AND+%22Circulation%22%5BJournal%5D)">Digital multigate Doppler with color echo and Doppler display - Diagnosis of atrial and ventricular septal defects.</a> Circulation. 60, (1979).</li>
<li>Patten, R. D., Aronovitz, M. J., Bridgman, P., Pandian, N. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Use+of+pulse+wave+and+color+flow+Doppler+echocardiography+in+mouse+models+of+human+disease%5BTitle%5D)+AND+%22J+Am+Soc+Echocardiogr%22%5BJournal%5D)">Use of pulse wave and color flow Doppler echocardiography in mouse models of human disease.</a> J Am Soc Echocardiogr. 15, 708-714 (2002).</li>
<li>Hoit, B. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Echocardiographic+characterization+of+the+cardiovascular+phenotype+in+rodent+models%5BTitle%5D)+AND+%22Toxicol+Pathol%22%5BJournal%5D)">Echocardiographic characterization of the cardiovascular phenotype in rodent models.</a> Toxicol Pathol. 34, 105-110 (2006).</li>
</ol>

Pistner, Belmonte, Blaxall: brak konfliktów interesów do ujawnienia
Coulthard jest pracownikiem etatowym firmy Visualsonics.

Seryjne echokardiograficzne badanie wysokiej częstotliwości stało się potężnym narzędziem do nieinwazyjnej, wysokorozdzielczej oceny morfologii i funkcji serca, szczególnie w mysich modelach chorób serca. Kluczowe dla sukcesu tej metody jest utrzymanie fizjologicznej temperatury ciała oraz porównywalnej częstości akcji serca u myszy poprzez regulację poziomu znieczulenia przed wykonaniem obrazowania. Wszystkie obrazy powinny być pozyskiwane przy użyciu tych samych punktów orientacyjnych (np. obrazowanie w osi długiej prz...

A correction was made to <a href="http://www.jove.com/index/details.stp?id=2100">Murine echocardiography and ultrasound imaging</a>. There was an error in the author, Burns Blaxalls', name and the article title. The authors name has been corrected to:
Burns C. Blaxall
instead of:
Burns Blaxall
The article title was changed to:
Murine Echocardiography and Ultrasound Imaging
instead of:
Murine echocardiography and ultrasound imaging

A correction to an author's name and the article title has been made for the article Murine echocardiography and ultrasound imaging.

Erratum: Murine echocardiography and ultrasound imaging

<table><tbody><tr><td>System obrazowania Vevo 2100 (120V)</td><td>VisualSonics, inc.</td><td>VS-11945</td><td></td></tr><tr><td>Stacja obrazowania Vevo 2100 1</td><td>VisualSonics, inc.</td><td>SA-11982</td><td></td></tr><tr><td>Żel do USG</td><td>Parker Laboratories Inc.</td><td>01-08</td><td></td></tr><tr><td>Izofluran</td><td>Abbott Laboratories</td><td>05260-05</td><td></td></tr><tr><td>Podwójny system anestezjologiczny Vevo Compact</td><td>VisualSonics, inc.</td><td>SA-12055</td><td></td></tr></tbody></table>

echokardiografia i obrazowanie ultrasonograficzne u myszy

Murine Echocardiography and Ultrasound Imaging

Modele gryzoni w patofizjologii serca stanowią cenny zestaw narzędzi badawczych do analizy mechanizmów chorób, jak i testowania nowych terapii.1 Echokardiografia zapewnia potężne, nieinwazyjne narzędzie do seryjnej oceny morfometrii i funkcji serca u żywego zwierzęcia.2 Jednak zastosowanie tej techniki u myszy wiąże się z wyjątkowymi trudnościami ze względu na niewielki rozmiar i szybkie tętno tych zwierząt.3 Do niedawna niewiele systemów ultradźwiękowych pozwalało na wykonywanie wysokiej jakości echokardiografii u myszy, a tym, które były dostępne, zazwyczaj brakowało rozdzielczości obrazu i częstotliwości odświeżania klatek niezbędnych do uzyskania w pełni ilościowych pomiarów. Nowo wprowadzone systemy, takie jak VisualSonics Vevo2100, dostarczają badaczom nowych narzędzi do dokładnego i nieinwazyjnego badania funkcji serca u myszy. System ten generuje obrazy o wysokiej rozdzielczości i oferuje możliwości analizy podobne do tych stosowanych u pacjentów ludzkich. Choć kolorowy Doppler jest dostępny u ludzi od ponad 30 lat, ta cenna technologia stała się możliwa do zastosowania w badaniach ultradźwiękowych gryzoni dopiero niedawno.4,5 Kolorowy Doppler ma szerokie zastosowanie w echokardiografii, w tym umożliwia szybką ocenę kierunku przepływu w naczyniach i przez zastawki oraz błyskawiczną identyfikację niedomykalności zastawek. Analiza odkształceń (strain analysis) jest kluczowym postępem wykorzystywanym do ilościowego pomiaru regionalnej funkcji mięśnia sercowego.6 Technika ta ma potencjał do wykrywania zmian patologicznych lub ustępowania patologii wcześniej niż techniki konwencjonalne. Dzięki dodatkowi trójwymiarowej rekonstrukcji obrazu możliwa jest ocena objętościowa całych organów, w tym wizualizacja i ocena struktur serca i naczyń. Obrazowanie kontrastowe kompatybilne z myszami pozwala również na pomiary objętościowe i ocenę perfuzji tkankowej.

W niniejszym filmie zaprezentowano zastosowanie zamontowanej na szynie głowicy ultradźwiękowej o wysokiej częstotliwości do wykonywania echokardiografii u znieczulonej myszy. Metody obejmują zarówno konwencjonalne pomiary funkcji serca w trybie dwuwymiarowym i M-mode, jak i nowsze, bardziej zaawansowane narzędzia, takie jak kolorowy Doppler, analiza odkształceń (strain) oraz ogólne i ukierunkowane obrazowanie kontrastowe.

Echokardiografia i obrazowanie ultrasonograficzne u myszy

Modele gryzoni w patofizjologii serca stanowią cenne narzędzie badawcze do analizy mechanizmów powstawania chorób, a także do testowania nowych metod terapeutycznych.1 ...

Wpływ MU na funkcję serca można było ocenić za pomocą echokardiografii. W tej sekcji oceniono funkcję serca u prawidłowych myszy i przedstawiono reprezentatywne obrazy z badania ultrasonograficznego. Ocena funkcji serca.W chirurgicznym modelu niewydolności serca u myszy, z wykorzystaniem systemu VisualSonics Vevo 2100, serce jest wizualizowane w dwóch wymiarach. Obrazy i filmy do analizy są rejestrowane z wykorzystaniem obrazowania w trybie B, dopplerowskiego obrazowania kolorowego i impulsowego, rekonstrukcji trójwymiarowej oraz trybu M. Następnie analizowane są nagrania wideo, co pozwala na ujawnienie zmian w funkcji i morfologii serca w czasie.Cześć, jestem badaczem z laboratorium Burnsa Blackwella w Departamencie Medycyny w AB Cardiovascular Research Institute w University of Rochester Medical Center. Jestem Stevenem Belmontem, również z laboratorium Black Salt. Jestem Tonyą Cohor z Visual Sonics, a ja jestem Bris Black Salt.Dzisiaj przedstawimy procedurę wysokorozdzielczego echokardiograficznego badania myszy. W naszym laboratorium stosujemy tę procedurę do badania funkcji i morfologii serca. Zatem zacznijmy.Należy rozpocząć od unieruchomienia myszy znieczulonej izofluranem na platformie do obsługi zwierząt. W pozycji na plecach na nos i pyszczek zwierzęcia należy nałożyć stożek nosowy w celu podania od 0,5 do 1% izofluranu. Aby utrzymać znieczulenie, łapy myszy należy przymocować do elektrod za pomocą żelu przewodzącego.Zapewnij odpowiednią temperaturę ciała myszy na poziomie 37 °C podczas badania EKG i sprawdź częstość oddechów w celu oceny fizjologicznej. Przed obrazowaniem nałóż krem do depilacji na klatkę piersiową i górną część brzucha myszy, a po dwóch minutach usuń krem za pomocą wilgotnej gazy. Po przygotowaniu myszy do obrazowania przechyl lewą stronę platformy, aby obrócić platformę do unieruchamiania zwierzęcia o 30 stopni wokół osi przednio-tylnej.Ustaw przetwornik w pozycji pionowej i obróć go o 10 stopni przeciwnie do ruchu wskazówek zegara, tak aby nacięcie było skierowane w stronę tylnej części myszy. Następnie, korzystając z dwuwymiarowego obrazowania w trybie B, przesuwaj przetwornik w dół wzdłuż lewej linii przymostkowej, aż serce pojawi się w polu widzenia. Po pojawieniu się tętnicy płucnej wykonaj i zapisz obrazy w trybie B, a następnie przesuwaj przetwornik w lewo lub w prawo, aż do momentu uwidocznienia odpływu aortalnego oraz wierzchołka serca.Może być konieczne obrócenie głowicy, aby zapewnić odpowiednie wyrównanie z długą osią serca. Należy wykorzystać rejestrację wideo w celu uzyskania danych do późniejszej analizy. Należy zminimalizować pole widzenia, aby zapewnić jak najwyższą możliwą liczbę klatek na sekundę.Do późniejszej analizy szczepów regionalnych. Przy każdym nagraniu wideo zapisywane jest 100 poprzednich klatek. Przełącz do trybu kolorowego Dopplera, wybierając kolorowy Doppler.Choć kolorowy doppler jest dostępny u ludzi od ponad 30 lat, technologia ta stała się możliwa do zastosowania w badaniach ultrasonograficznych gryzoni dopiero niedawno. Aby szybko monitorować kierunek i prędkość przepływu krwi, nakładka okna dopplerowskiego digitalizuje przepływ: kolor czerwony oznacza przepływ w stronę głowicy, a niebieski przepływ w kierunku przeciwnym do głowicy. Niezbędne obrazy należy uzyskać za pomocą funkcji przechwytywania obrazu.Po uzyskaniu wszystkich danych z kolorowego Dopplera, przełącz urządzenie w tryb Dopplera impulsowego. Ten jednowymiarowy widok służy do cyfrowej oceny przepływu krwi, jego kierunku oraz prędkości w czasie. Przesuń sondy lekko w stronę głowy myszy, aż do momentu pojawienia się tętnicy pary w polu widzenia.W kontekście niewydolności serca pomiary kolorowego dopplerowskiego PW tętnicy płucnej mogą służyć jako wskaźnik zastępczy funkcji prawej komory serca. Należy zarejestrować obrazy w pożądanym przekroju krótkiej osi. Echokardiografia umożliwia obrazowanie całej lewej komory kurczącej się koncentrycznie i pozwala na dokładną ocenę funkcji serca oraz geometrii morfologicznej w trybie B i M.Z widoku osi płuc parasternalnej obróć przetwornik prostopadle do widoku osi płuc parasternalnej lewej na poziomie mięśnia brodawkowatego. Upewnij się, że znajduje się on w odpowiednim miejscu wzdłuż lewej komory. Oba mięśnie brodawkowate powinny być wyraźnie widoczne i oddzielone, co zapewni poziomy przekrój poprzeczny; w trybie M umieść objętość próbkowania w centrum komory i w razie potrzeby pobierz dane.Podłącz, uruchom i wykorzystaj silnik trójwymiarowy w celu uzyskania obrazów niezbędnych do pełnej rekonstrukcji 3D. Parametry fizjologiczne, w tym częstość oddechów oraz EKG, są ustawione w celu synchronizacji akwizycji obrazów 3D w końcowej fazie rozkurczu. Po zakończeniu akwizycji obrazów 3D w końcowej fazie rozkurczu.Parametry fizjologiczne dla częstości oddechów i EKG są ustawione w celu synchronizacji obrazowania 3D w końcowej fazie skurczu. Widok podżebrowy jest najlepszym podejściem do pomiaru szczelności i gradientów ciśnień w zastawce mitralnej. Całkowicie opuść górny lewy róg platformy.Skieruj przetwornik w stronę prawego barku myszy, utrzymując obrót głowicy w osi krótkiej w trybie B, a następnie przesuń przetwornik w dół nad górną część brzucha, tak aby spoczywał poniżej przepony. Zwizualizuj zastawkę mitralną, korzystając z kolorowego dopplera zgodnie z wcześniejszym opisem. Obróć platformę do manipulacji zwierzęciem do pozycji bocznej lewej.Lewą stronę platformy należy przechylić tak mocno, jak to możliwe. Następnie ustawić przetwornik w maksymalnym pochyleniu do góry wzdłuż ciała myszy na poziomie łopatki. Przesunąć przetwornik w dół, poniżej prawego barku, wzdłuż przedniej linii pachowej.Zwizualizuj łuk aorty i wykonaj obrazy. Unieś głowę myszy i wprowadź przetwornik do wcięcia nadmostkowego myszy. Zwizualizuj przepływ krwi przy użyciu dopplera kolorowego i wykonaj obrazy.Jest to widok w osi długiej serca w trybie B, pokazujący lewą komorę oraz niewielką część prawej komory w tym miejscu. Widok w osi długiej innego serca został wykonany w trybie M. Górny obraz przedstawia żółtą linię objętości próbkowania przechodzącą przez środek komory.Dolny obraz przedstawia jednowymiarowy ślad powyższej linii w czasie, a także obliczenia morpho zaznaczone kolorem cyjanowym. Jest to widok łuku aorty w trybie B. Po lewej stronie widoczna jest zamknięta zastawka aorty, a po prawej naczynie krwionośne zaopatrujące głowę i kończyny górne myszy.Analizę odkształcenia radialnego przeprowadzono u myszy przed wystąpieniem dysfunkcji serca, przedstawionej na górnym obrazie, oraz u myszy z globalną hipokinezą i regionalną dyssynchronią, przedstawionej na dolnym obrazie. Oba fenotypy wywołano poprzez poprzeczną konstrikcję aorty. Na rysunku przedstawiono model mysi z zwiększonym obciążeniem następczym.Na osi X wyświetlony jest czas, a na osi Y odkształcenie radialne wyrażone w procentach. Analiza odkształcenia pozwala na regionalną ocenę funkcji serca, która w przeciwnym razie mogłaby pozostać niezauważona. W konwencjonalnych technikach, takich jak tryb M, który bezpośrednio mierzy jedynie funkcję przedniej ściany wolnej oraz ściany tylnej, przednia ściana wolna jest zaznaczona kolorem zielonym.Ścianę boczną zaznaczono kolorem różowym. Ścianę tylną zaznaczono kolorem cyjanowym. Dolną ścianę wolną zaznaczono kolorem niebieskim.Tylna ściana przegrody jest zaznaczona na żółto. Przednia część przegrody jest zaznaczona na purpurowo, a średnia na czarno. Przedstawiliśmy właśnie sposób wykonywania echokardiografii u myszy podczas przeprowadzania tej procedury.Ważne jest, aby pamiętać o prawidłowej orientacji głowicy ultradźwiękowej z wykorzystaniem tych samych punktów orientacyjnych, co zapewni wiarygodność danych. To wszystko. Dziękujemy za oglądanie i życzymy powodzenia w przeprowadzaniu eksperymentów.

murine-echocardiography-and-ultrasound-imaging

Research

JoVE Journal

Medicine

Medycyna

Obrazowanie ultrasonograficzne i echokardiografia u myszy

Echokardiografia przezklatkowa stanowi nieinwazyjną metodę oceny funkcji serca u myszy. Połączenie obrazowania ultradźwiękowego i dopplerowskiego pozwala na wykonanie pomiarów wymiarów serca oraz przepływu krwi wewnątrzsercowego, co łącznie umożliwia ocenę funkcji skurczowej i rozkurczowej serca.

Echokardiografia przezklatkowa u myszy

Wysokoczęstotliwościowe ultradźwięki Dopplera to nowatorska technologia służąca do oceny regionalnej funkcji mięśnia sercowego. Niniejsza praca przedstawia pierwsze dowody wykazujące przydatność tej wszechstronnej platformy obrazowania do wielokrotnego pomiaru odkształcenia mięśnia sercowego, dp/dt oraz niedomykalności zastawki mitralnej w modelu niedokrwienia i reperfuzji (IR) serca mysiego.

Wysokoczęstotliwościowa echokardiografia o wysokiej rozdzielczości: pierwsze dowody na nieinwazyjny, powtarzalny pomiar odkształcenia mięśnia sercowego, kurczliwości i niedomykalności zastawki mitralnej w modelu niedokrwienia i reperfuzji serca myszy

Śmierć płodowa i okołoporodowa jest częstym zjawiskiem podczas badania zmian genetycznych wpływających na rozwój serca. Obrazowanie za pomocą ultradźwięków o wysokiej częstotliwości poprawiło rozdzielczość 2-D i może dostarczyć doskonałych informacji na temat wczesnego rozwoju serca, stanowiąc idealną metodę wykrywania wpływu na strukturę i funkcję serca przed śmiercią.

Echokardiografia płodowa myszy

Ten film opisuje protokół wykonywania echokardiografii na myszy laboratoryjnej.

Echokardiografia myszy: nieinwazyjna technika oceny morfologii serca

Echokardiografia jest powszechnie używana do nieinwazyjnego charakteryzowania i ilościowego określania zmian w strukturze i funkcji serca. Opisujemy algorytm obrazowania oparty na ultradźwiękach, który oferuje ulepszony zastępczy pomiar mikrostruktury mięśnia sercowego i może być wykonywany przy użyciu ogólnodostępnego oprogramowania do analizy obrazu.

Ultradźwiękowa ocena mikrostruktury mięśnia sercowego

Celem tego protokołu jest nieinwazyjna ocena zmian strukturalnych i funkcjonalnych w mysim modelu choroby serca powstałych w wyniku poprzecznego zwężenia aorty, przy użyciu echokardiografii w trybie B i M oraz obrazowania dopplerowskiego kolorem/falą tętna.

Ocena zmian morfologicznych i czynnościowych serca w mysim modelu poprzecznego zwężenia aorty za pomocą obrazowania echokardiograficznego

Ten protokół zawiera szczegółowy opis podejścia echokardiograficznego do kompleksowego fenotypowania funkcji serca i zastawki serca u myszy.

Podejścia echokardiograficzne i protokoły do kompleksowej charakterystyki fenotypowej choroby zastawkowej serca u myszy

Poniższy protokół opisuje metodologię pozyskiwania i analizy obrazów echokardiograficznych używanych do uzyskania objętości lewego przedsionka (LAV), średnicy aorty (Ao) i średnicy tętnicy płucnej (PA) u myszy. Technika ta jest nieinwazyjnym, nieterminalnym zabiegiem, który umożliwia ocenę funkcji krążeniowo-oddechowej.

Echokardiografia mysia lewego przedsionka, aorty i tętnicy płucnej

Badanie echokardiograficzne jest często stosowane u myszy. W tym celu opracowano drogie urządzenia ultrasonograficzne o wysokiej rozdzielczości. Protokół ten opisuje niedrogą procedurę echokardiograficzną połączoną z histologicznymi analizami morfometrycznymi w celu określenia morfologii serca.

Echokardiograficzne i histologiczne badanie morfologii serca u myszy

Tutaj opisujemy protokół do wykorzystania w czterowymiarowym obrazowaniu ultrasonograficznym in vivo i obrazowaniu spektrometrii mas ex vivo do oceny biomechanicznych i biomolekularnych zmian w mysim układzie sercowo-naczyniowym. Technika ta jest stosowana do analizy przebudowy serca w chirurgicznie wywołanym zawale mięśnia sercowego i zmianach naczyniowych u starzejących się zwierząt.

Multimodalne badanie przebudowy układu sercowo-naczyniowego u myszy: czterowymiarowe obrazowanie ultrasonograficzne i spektrometria mas

Poznaj echokardiografię myszy z wysokoczęstotliwościowym ultrasonografem do oceny funkcji serca. Metoda obejmuje obrazowanie B-mode, Doppler i M-mode w badaniach kardiologicznych.

Echokardiografia i obrazowanie ultrasonograficzne u myszy

Przeglądaj więcej filmów