-1::1
Simple Hit Counter
Skip to content

Products

Solutions

×
×
Sign In

PL

EN - EnglishCN - 简体中文DE - DeutschES - EspañolKR - 한국어IT - ItalianoFR - FrançaisPT - Português do BrasilPL - PolskiHE - עִבְרִיתRU - РусскийJA - 日本語TR - TürkçeAR - العربية
Sign In Start Free Trial

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

Behavior
Biochemistry
Bioengineering
Biology
Cancer Research
Chemistry
Developmental Biology
View All
JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

Biological Techniques
Biology
Cancer Research
Immunology
Neuroscience
Microbiology
JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduate courses

Analytical Chemistry
Anatomy and Physiology
Biology
Cell Biology
Chemistry
Civil Engineering
Electrical Engineering
View All
JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

Advanced Biology
Basic Biology
Chemistry
View All
JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

Biology
Chemistry

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

Accounting
Finance
Macroeconomics
Marketing
Microeconomics

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Authors

Teaching Faculty

Librarians

K12 Schools

Products

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduates

JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Solutions

Authors
Teaching Faculty
Librarians
K12 Schools

Language

pl_PL

EN

English

CN

简体中文

DE

Deutsch

ES

Español

KR

한국어

IT

Italiano

FR

Français

PT

Português do Brasil

PL

Polski

HE

עִבְרִית

RU

Русский

JA

日本語

TR

Türkçe

AR

العربية

    Menu

    JoVE Journal

    Behavior

    Biochemistry

    Bioengineering

    Biology

    Cancer Research

    Chemistry

    Developmental Biology

    Engineering

    Environment

    Genetics

    Immunology and Infection

    Medicine

    Neuroscience

    Menu

    JoVE Encyclopedia of Experiments

    Biological Techniques

    Biology

    Cancer Research

    Immunology

    Neuroscience

    Microbiology

    Menu

    JoVE Core

    Analytical Chemistry

    Anatomy and Physiology

    Biology

    Cell Biology

    Chemistry

    Civil Engineering

    Electrical Engineering

    Introduction to Psychology

    Mechanical Engineering

    Medical-Surgical Nursing

    View All

    Menu

    JoVE Science Education

    Advanced Biology

    Basic Biology

    Chemistry

    Clinical Skills

    Engineering

    Environmental Sciences

    Physics

    Psychology

    View All

    Menu

    JoVE Lab Manual

    Biology

    Chemistry

    Menu

    JoVE Business

    Accounting

    Finance

    Macroeconomics

    Marketing

    Microeconomics

Start Free Trial
Loading...
Home
JoVE Encyclopedia of Experiments
Neuroscience
Manipulacja optogenetyczna obwodów neuronowych w celu przejścia ze snu do czuwania u myszy
Manipulacja optogenetyczna obwodów neuronowych w celu przejścia ze snu do czuwania u myszy
Encyclopedia of Experiments
Neuroscience
A subscription to JoVE is required to view this content.  Sign in or start your free trial.
Encyclopedia of Experiments Neuroscience
Optogenetic Manipulation of Neural Circuits for the Sleep-to-Wakefulness Transition in Mice

Manipulacja optogenetyczna obwodów neuronowych w celu przejścia ze snu do czuwania u myszy

Protocol
143 Views
05:54 min
August 19, 2025
AI Banner

Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.

Transcript

Zabezpiecz znieczuloną mysz z odsłoniętą czaszką w stereotaktycznej ramie.

Jądro łożyska mózgu prążkowia końcowego (BNST) zawiera neurony transdukowane wirusowo, wyrażające światłoczułe kanały kationowe.

Wywierć otwory w czaszce, włóż światłowody i zabezpiecz je podtrzymującymi i cementem dentystycznym.

Wywierć dodatkowe otwory, aby ustawić zespół zawierający elektrody elektroencefalograficzne (EEG) i elektromiograficzne (EMG) i zabezpiecz je klejem.

Odsłoń mięśnie szyi, aby wprowadzić przewody elektrody EMG, a następnie pozwól na regenerację.

Podłącz mysz do systemu nagrywającego, umieść ją w komorze eksperymentalnej i pozwól jej spać.

Dostarczaj światło przez światłowód, aby aktywować wrażliwe na światło kanały kationowe, wyzwalając napływ kationów, który generuje potencjały czynnościowe.

Sygnały rozchodzą się do regionów regulujących sen i promują czuwanie.

Rejestruj sygnały EEG, aby monitorować aktywność mózgu i sygnały EMG, aby wykrywać aktywność mięśni, aby obserwować przejście ze snu do czuwania.

W przypadku elektroencefalogramu lub EEG i elektromiogramu lub EMG, implantacji elektrod, najpierw dwa druty ze stali nierdzewnej, z których usunięto jeden milimetr izolacji z obu końców, do elektrod EMG i umieść środek elektrod na bregmie. Następnie zaznacz położenie każdej elektrody EEG.

Aby określić położenie implantu światłowodowego, przymocuj tuleję światłowodową do manipulatora i obróć ramię manipulatora pod kątem plus minus 30 stopni względem linii poziomej. Połóż końcówkę światłowodu na bregmie i zapisz współrzędne. Przesuń końcówkę do docelowej linii wprowadzania i zaznacz pozycję na czaszce oraz pozycję kotwiącej obok miejsca włożenia.

Użyj wiertła dentystycznego, aby wywiercić czaszkę w każdym miejscu i użyj manipulatora, aby delikatnie wprowadzić światłowód, aż sięgnie powyżej BNST. Skuwka powinna spoczywać na pozostałej czaszce. Przymocuj włókno do czaszki za pomocą kotwiącej, uważając, aby nie złamać opony twardej ani nie uszkodzić żadnej tkanki.

Następnie przykryj włókno i przykręć fotoutwardzalnym cementem dentystycznym. Następnie wywierć otwory na elektrody EEG/EMG i włóż końcówkę pierwszej elektrody do jednego otworu. Trzymając implant jedną ręką, nałóż klej cyjanoakrylowy na przestrzeń między czaszką a elektrodą i włóż elektrodę do końca, uważając, aby nie uszkodzić żadnej tkanki.

Po umieszczeniu wszystkich elektrod należy pokryć obwód elektrod i światłowodów dodatkowym klejem cyjanoakrylowym i przyspieszaczem cyjanoakrylanu, aby uniknąć powodowania przerw w strefach łączenia tulejki z optycznym i elektrody z przewodem ołowianym. Teraz odsłoń mięśnie szyi i włóż przewody elektrody EMG pod mięsień. Dostosuj długość elektrody EMG tak, aby zmieściła się tuż pod mięśniami karkowymi i wypełnij implanty większą ilością kleju cyjanoakrylowego i przyspieszacza.

Następnie umieść mysz na podkładce grzewczej z monitorowaniem aż do pełnej rekompensaty. Do monitorowania EEG/EMG podczas fotowzbudzenia docelowych neuronów, najpierw użyj skalara do regulacji intensywności lasera i użyj skuwki, aby przywiązać końcówkę laserowego do nieużywanego światłowodu. Upewnij się, że na styku między światłowodem a nie ma miejsca.

Po 20 minutach wyemituj rozgrzany laser do kontrolera intensywności i dostosuj intensywność do 10 miliwatów na milimetr kwadratowy. Ustaw czas trwania impulsu świetlnego na 10 milisekund, okres odpoczynku na 40 milisekund, cykl na 20, a powtarzanie na 20. Zmień tryb lasera na logikę tranzystorową i potwierdź, że impulsy świetlne są emitowane ze światłowodu sterowanego przez regulator wzoru.

Podłącz wszczepioną elektrodę i adapter, a następnie zakryj złącze materiałem nieprzepuszczalnym dla światła, aby zapobiec wyciekowi lasera. A kiedy laser będzie gotowy, przenieś myszy do komory eksperymentalnej w celu rejestracji EEG/EMG. Aby ocenić opóźnienie do czuwania spowodowane nieszybkimi ruchami gałek ocznych lub snem z szybkimi ruchami gałek ocznych, ogranicz czas nagrywania i zoptymalizuj czas przyrostu miejsca i pozwól myszom swobodnie poruszać się w komorze eksperymentalnej przez co najmniej godzinę.

W okresie eksperymentalnym monitoruj sygnały EEG i EMG na tym samym ekranie rejestracji. Oceń stan myszy jako stan czuwania, sen bez szybkich ruchów gałek ocznych lub sen z szybkimi ruchami gałek ocznych, używając regulatora wzmocnienia dla każdej fali, aby ułatwić rozróżnienie każdego stanu. Aby zmierzyć opóźnienie snu bez szybkich ruchów gałek ocznych do czuwania, obserwuj stabilny sen bez szybkich ruchów gałek ocznych przez 40 sekund, a następnie włącz generator wzorców do stymulacji fotograficznej i potwierdź emisję lasera do wszczepionych światłowodów.

Następnie rejestruj sygnały EEG/EMG do momentu, gdy stan snu zmieni się w stan czuwania.

Related Videos

Nieinwazyjne, wysokoprzepustowe określanie czasu trwania snu u gryzoni

07:33

Nieinwazyjne, wysokoprzepustowe określanie czasu trwania snu u gryzoni

Related Videos

8K Views

Optogenetyczna manipulacja aktywnością neuronalną w celu modulacji zachowania u swobodnie poruszających się myszy

14:40

Optogenetyczna manipulacja aktywnością neuronalną w celu modulacji zachowania u swobodnie poruszających się myszy

Related Videos

19.1K Views

Optogenetyczne porywanie oscylacji theta hipokampa u zachowujących się myszy

07:33

Optogenetyczne porywanie oscylacji theta hipokampa u zachowujących się myszy

Related Videos

12K Views

JoVE logo
Contact Us Recommend to Library
Research
  • JoVE Journal
  • JoVE Encyclopedia of Experiments
  • JoVE Visualize
Business
  • JoVE Business
Education
  • JoVE Core
  • JoVE Science Education
  • JoVE Lab Manual
  • JoVE Quizzes
Solutions
  • Authors
  • Teaching Faculty
  • Librarians
  • K12 Schools
About JoVE
  • Overview
  • Leadership
Others
  • JoVE Newsletters
  • JoVE Help Center
  • Blogs
  • Site Maps
Contact Us Recommend to Library
JoVE logo

Copyright © 2025 MyJoVE Corporation. All rights reserved

Privacy Terms of Use Policies
WeChat QR code