Transfer genów za pośrednictwem wirusa do grzbietowego jądra ślimaka myszy w celu stymulacji słuchowej wywołanej światłem

0 wyświetleń3:19 min • August 29th, 2025

Zacznij od znieczulonej myszy z odsłoniętą czaszką.

Czaszka ma kraniotomię nad kością międzyciemieniową, po lewej stronie linii środkowej i ogonowo do szwu lambdoidalnego, z usuniętą oponą twardą w celu odsłonięcia móżdżku.

Odessaj boczny lewy móżdżek, aby odsłonić leżące pod nim grzbietowe jądro ślimaka lub DCN, strukturę pnia mózgu, która zawiera neurony przetwarzające sygnały słuchowe.

Dodaj sól fizjologiczną, aby zapobiec krzepnięciu krwi i usunąć resztki płynu.

Umieść mikrostrzykawkę zawierającą wektor wirusowy kodujący opsynę, światłoczuły kanał jonowy.

Opuścić igłę do DCN.

Wstrzyknąć zawiesinę wirusa w kontrolowanej szybkości, a następnie wycofać igłę.

Zszyj nacięcie i pozwól myszy dojść do siebie.

Wstrzyknięty wirus wiąże się z receptorami neuronalnymi DCN i ulega endocytozie.

Wewnątrz jądra neuronalnego wirusowe DNA wyzwala ekspresję genów, co prowadzi do produkcji opsyny.

Model jest gotowy do indukowanej światłem stymulacji drogi słuchowej.

Użyj pięciofrancuskiej rurki ssącej, aby zassać boczną najbardziej boczną część lewego móżdżku, pokrywającą DCN. Aby ułatwić aspirację, ustaw płaszczyznę ogniskową mikroskopu na oczekiwanej głębokości jądra ślimaka, aby poprawić wizualizację i zapewnić ostry obraz. Usuń około jednej czwartej do jednej trzeciej lewego móżdżku.

Głównym punktem orientacyjnym przylegającym do DCN jest bańka kanału półkolistego górnego. Po aspiracji pojawi się dalsze krwawienie, nagromadzenie płynu mózgowo-rdzeniowego i przemieszczenie móżdżku na DCN. Szybko wkraplacz sól fizjologiczną do kraniotomii, aby zapobiec krzepnięciu krwi. Użyj kombinacji delikatnego wklepywania z punktem dentystycznym i ssaniem, aby oczyścić ścieżkę do bezpośredniej wizualizacji DCN.

Po tym, jak DCN jest wyraźnie widoczny i wolny od leżącej na nim krwi i płynu mózgowo-rdzeniowego, wykonaj mikrowstrzyknięcie wektora pod ciśnieniem za pomocą pięciomikrolitrowej gazoszczelnej strzykawki Hamiltona. Użyj igły o rozmiarze 34 z płytkim skosem, aby zminimalizować uraz i zlokalizować objętość wstrzyknięcia w DCN. Następnie powoli wprowadzaj igłę za pomocą mikromanipulatora, aż końcówka przestanie być widoczna pod powierzchnią DCN.

Zacznij wstrzykiwać 1,5 mikrolitra wektora. Po wykonaniu tej czynności powoli wyjmij igłę, a następnie ponownie przybliż skórę i pozwól myszy dojść do siebie zgodnie ze standardową procedurą odzyskiwania.

03:52

Dostęp do tylnego kanału półkolistego do dostarczania genów do ucha wewnętrznego u nowonarodzonych myszy

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

09:06

Operacja wszczepienia implantu ślimakowego i elektrycznie wywołane nagrania słuchowej odpowiedzi pnia mózgu u myszy C57BL/6

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

07:07

Stereotaktyczne podejście chirurgiczne do mikroiniekcji ogonowego pnia mózgu i górnego odcinka szyjnego rdzenia kręgowego za pośrednictwem Cisterna magna u myszy

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

22:02

Transfer genów do rozwijającego się ucha wewnętrznego myszy za pomocą elektroporacji in vivo

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

03:53

Terapia genowa oparta na wektorach wirusowych w celu przywrócenia słuchu w modelu mysim

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

08:39

Stereotaktyczne wstrzyknięcie wektora wirusowego w celu warunkowej manipulacji genami w rdzeniu kręgowym myszy

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

10:53

Optogenetyczna stymulacja nerwu słuchowego

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

07:32

Metoda chirurgiczna dostarczania genów za pośrednictwem wirusa do ucha wewnętrznego myszy przez błonę okrągłego okienka

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

09:03

Hodowla embrionalnych eksplantatów ślimakowych myszy i transfer genów za pomocą elektroporacji

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

07:58

Bezpośrednia wizualizacja mysiego grzbietowego jądra ślimaka w celu optogenetycznej stymulacji drogi słuchowej

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

Ostatnia aktualizacja: 22 sierpnia 2026