JoVE Encyclopedia of Experiments
Neuronauka
0 wyświetleń • 3:19 min • August 29th, 2025
Zacznij od znieczulonej myszy z odsłoniętą czaszką.
Czaszka ma kraniotomię nad kością międzyciemieniową, po lewej stronie linii środkowej i ogonowo do szwu lambdoidalnego, z usuniętą oponą twardą w celu odsłonięcia móżdżku.
Odessaj boczny lewy móżdżek, aby odsłonić leżące pod nim grzbietowe jądro ślimaka lub DCN, strukturę pnia mózgu, która zawiera neurony przetwarzające sygnały słuchowe.
Dodaj sól fizjologiczną, aby zapobiec krzepnięciu krwi i usunąć resztki płynu.
Umieść mikrostrzykawkę zawierającą wektor wirusowy kodujący opsynę, światłoczuły kanał jonowy.
Opuścić igłę do DCN.
Wstrzyknąć zawiesinę wirusa w kontrolowanej szybkości, a następnie wycofać igłę.
Zszyj nacięcie i pozwól myszy dojść do siebie.
Wstrzyknięty wirus wiąże się z receptorami neuronalnymi DCN i ulega endocytozie.
Wewnątrz jądra neuronalnego wirusowe DNA wyzwala ekspresję genów, co prowadzi do produkcji opsyny.
Model jest gotowy do indukowanej światłem stymulacji drogi słuchowej.
Użyj pięciofrancuskiej rurki ssącej, aby zassać boczną najbardziej boczną część lewego móżdżku, pokrywającą DCN. Aby ułatwić aspirację, ustaw płaszczyznę ogniskową mikroskopu na oczekiwanej głębokości jądra ślimaka, aby poprawić wizualizację i zapewnić ostry obraz. Usuń około jednej czwartej do jednej trzeciej lewego móżdżku.
Głównym punktem orientacyjnym przylegającym do DCN jest bańka kanału półkolistego górnego. Po aspiracji pojawi się dalsze krwawienie, nagromadzenie płynu mózgowo-rdzeniowego i przemieszczenie móżdżku na DCN. Szybko wkraplacz sól fizjologiczną do kraniotomii, aby zapobiec krzepnięciu krwi. Użyj kombinacji delikatnego wklepywania z punktem dentystycznym i ssaniem, aby oczyścić ścieżkę do bezpośredniej wizualizacji DCN.
Po tym, jak DCN jest wyraźnie widoczny i wolny od leżącej na nim krwi i płynu mózgowo-rdzeniowego, wykonaj mikrowstrzyknięcie wektora pod ciśnieniem za pomocą pięciomikrolitrowej gazoszczelnej strzykawki Hamiltona. Użyj igły o rozmiarze 34 z płytkim skosem, aby zminimalizować uraz i zlokalizować objętość wstrzyknięcia w DCN. Następnie powoli wprowadzaj igłę za pomocą mikromanipulatora, aż końcówka przestanie być widoczna pod powierzchnią DCN.
Zacznij wstrzykiwać 1,5 mikrolitra wektora. Po wykonaniu tej czynności powoli wyjmij igłę, a następnie ponownie przybliż skórę i pozwól myszy dojść do siebie zgodnie ze standardową procedurą odzyskiwania.
Niniejszy artykuł opisuje metodę celowania w grzbietowe jądro ślimakowe (DCN) u myszy z wykorzystaniem wektorów wirusowych. Procedura obejmuje kraniotomię, aspirację tkanki móżdżku oraz precyzyjną iniekcję wektorów wirusowych kodujących opsyny w celu umożliwienia stymulacji szlaków słuchowych indukowanej światłem.
Precyzyjny transfer genów za pośrednictwem wirusów do grzbietowego jądra ślimakowego (DCN) myszy umożliwia optogenetyczną analizę obwodów słuchowych, co wspiera redukcję ryzyka mechanistycznego we wczesnej fazie odkryć neuronaukowych. Podejście to stanowi solidną platformę do walidacji celów neuronalnych i funkcjonalnych szlaków istotnych dla przetwarzania sensorycznego. Metoda ta zwiększa pewność prognostyczną w badaniach translacyjnych nad modulacją systemu słuchowego.
Metoda ta integruje się z kontinuum od odkrycia do fazy przedklinicznej, umożliwiając sterowaną hipotezą manipulację obwodami słuchowymi oraz wspierając dalsze testy funkcjonalne.
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Ostatnia aktualizacja: 22 sierpnia 2026