Test fototaksji sinic nitkowatych przy użyciu skupionego oświetlenia świetlnego

0 wyświetleń3:22 min • September 26th, 2025

Zacznij od naczynia zawierającego nitkowatą kulturę sinic umieszczonego nad małym okienkiem wyposażonym w uchwyt zamontowany na diodzie LED w ciemnym pomieszczeniu.

Dioda LED oświetla antenę od dołu, tworząc małą strefę światła.

Podczas inkubacji nitkowate sinice migrują w kierunku oświetlonego środka, demonstrując fototaksję.

Z biegiem czasu sinice migrują i gromadzą się w oświetlonym centrum, tworząc widocznie gęstą strefę bakteryjną.

Po inkubacji umieść biały papier pod naczyniem, aby zwiększyć kontrast.

Zrób obraz oświetlonego obszaru i przeanalizuj go za pomocą oprogramowania.

Narysuj linię w poprzek naczynia, która przechodzi przez środek strefy bakteryjnej, aby wygenerować profil intensywności pikseli.

Porównaj średnią intensywność pikseli na zewnątrz i wewnątrz strefy bakteryjnej.

Następnie narysuj linię o maksymalnej intensywności w obszarze centralnym, aby określić średnicę strefy bakteryjnej, która reprezentuje fototaksję sinic.

Przygotuj oprawki LED, w których zamontowane są pięciomilimetrowe diody LED, aby naświetlić obszar 20 milimetrów kwadratowych od dołu do góry. Zmierz i dostosuj intensywność diod LED. Upewnij się, że całe ustawienie odbywa się w ciemnym pomieszczeniu lub zamkniętym, ciemnym pojemniku.

Umieść osiem mililitrów pożywki zawierającej P. lacuna na sześciocentymetrowej szalce Petriego, zamknij szalkę Petriego pokrywką i umieść ją na uchwycie LED tak, aby dioda LED znajdowała się w środku szalki Petriego. Zazwyczaj po dwóch dniach należy wykonać zdjęcie szalki Petriego za pomocą aparatu w smartfonie skierowanego bezpośrednio na pozycję zabiegu świetlnego. Użyj uchwytu i białego arkusza jako tła, aby zapewnić taką samą odległość i warunki oświetleniowe dla każdego zdjęcia.

Otwórz oprogramowanie ImageJ, kliknij Plik, Otwórz i wybierz plik. Następnie kliknij Enter. Wybierz prosty przycisk i naciśnij lewy przycisk myszy, aby narysować linię od jednego końca szalki Petriego do przeciwległego końca.

Upewnij się, że linia przechodzi przez środek okręgu włókien. Kliknij Analizuj i mierz, aby zobaczyć długość szalki Petriego. Następnie kliknij Analizuj i drukuj profil w menu ImageJ.

Oszacuj średnią wartość intensywności pikseli na zewnątrz okręgu i inną średnią wartość intensywności pikseli wewnątrz okręgu. Wskaż myszą pozycję Y między tymi wartościami, aby oszacować wartości X po obu stronach okręgu. Zanotuj obie wartości i oblicz różnicę.

Następnie wybierz prosty przycisk i narysuj linię o średniej maksymalnej wartości intensywności pikseli. Na koniec kliknij Analizuj, a następnie Zmierz, aby uzyskać długość wewnętrznego okręgu komórki.

07:16

Test punktowy świetlny do analizy fototaksji larw Drosophila

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

03:54

Obserwacja fotozachowania u Chlamydomonas reinhardtii

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

07:26

Metoda immobilizacji pionowej do analizy mikroskopii poklatkowej u sinic nitkowatych

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

03:08

Test plamki świetlnej: metoda badania zachowania fototaktycznego Drosophila

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

04:37

Naturalna przemiana i ekspresja GFP w nitkowatych Cyanobacterium Phormidium lacuna

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

08:25

Modyfikacja genetyczna cyjanobakterii przez koniugację przy użyciu modułowego zestawu narzędzi do klonowania CyanoGate

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

07:03

Pomiar fotofizjologii dołączonego stadium Colacium sp. za pomocą fluorometru kuwetowego o dużej częstotliwości powtarzania

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

06:26

Izolacja i charakterystyka nienaruszonego fikobilisomu u cyjanobakterii

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

11:47

Naturalna przemiana, ekspresja białek i kriokonserwacja nitkowatego Cyanobacterium Phormidium lacuna

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

05:54

Obrazowanie autofluorescencyjne w celu oceny fizjologii czerwonych alg

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

Ostatnia aktualizacja: 29 sierpnia 2026