Indukcja różnicowania Vibrio parahaemolyticus w komórki roju

0 wyświetleń3:55 min • September 26th, 2025

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Zacznij od stopionego podłoża agarowego, które wspomaga rozwój bakterii.


Dodaj chelator żelaza, aby zubożyć wolne żelazo i uzupełnij pożywkę wapniem.


Wlej pożywkę do naczynia, pozwól jej zastygnąć, a następnie wysusz, aby wyeliminować resztki wilgoci.


Weźmy kulturę bulionową Vibrio parahaemolyticus, bakterii wiciowej.


W pożywkach płynnych bakterie występują w krótkiej, prętowatej formie pływaka z wicią.


Umieść kulturę na płytce i pozostaw do wyschnięcia, aby ułatwić kontakt bakteryjny z powierzchnią.


Zamknij naczynie i inkubuj, pozwalając na gromadzenie się lotnych produktów ubocznych przemiany materii z bakterii.


Kontakt powierzchniowy, ograniczenie żelaza, dostępność wapnia i nagromadzone produkty uboczne indukują ekspresję genów, która wyzwala różnicowanie w wydłużone komórki roju zawierające wici boczne, umożliwiając poruszanie się po powierzchniach stałych.


Komórki roju rozszerzają się na zewnątrz i tworzą rozbłyski roju złożone z w pełni zróżnicowanych komórek, co wskazuje na udane różnicowanie.


Aby przygotować roztwór agaru do przygotowania płytek rojowych, zawiesić cztery gramy naparu z serca lub proszku agarowego H. I. i 100 mililitrów podwójnie destylowanej wody.


Ostrożnie zagotuj roztwór agaru H. I. w kuchence mikrofalowej, potrząsając butelką od czasu do czasu, aż proszek się rozpuści. Autoklawuj roztwór agaru w temperaturze 121 stopni Celsjusza przez 20 minut, schładzaj roztwór agaru do 60 do 65 stopni Celsjusza, ciągle mieszając. Następnym krokiem jest obchodzenie się z 2,2'-Bipirydylem, który jest wysoce toksyczny, dlatego należy nosić rękawice i okulary ochronne.


Dodać 2,2'-Bipirydyl do końcowego stężenia 50 mikromolowych. Dodać chlorek wapnia do końcowego stężenia czterech milimolów. Zaszczepij niewielką ilość komórek V. parahaemolyticus z krawędzi pojedynczej kolonii do 5 mililitrów bulionu LB.


Inkubuj kulturę w temperaturze 37 stopni Celsjusza w inkubatorze z wytrząsarką, aż osiągnie gęstość optyczną przy 600 nanometrach 0,8. Zwykle zajmuje to około dwóch do trzech godzin. Podczas gdy hodowla komórkowa rośnie, odpipetuj od 30 do 35 mililitrów końcowego roztworu agaru H. I. na okrągłą 150-milimetrową szalkę Petriego i pozwól agarowi zastygnąć.


Tuż przed zauważeniem hodowli komórkowej osusz płytkę agarową pionowo z otwartą pokrywką w temperaturze 37 stopni Celsjusza przez co najmniej 10 minut lub do momentu, gdy wszelkie pozostałości płynu znikną, ale nie dłużej. Umieść jeden mikrolitr kultury komórkowej na środku płytki roju agaru H. I. i pozwól miejscu wyschnąć. Uszczelnij płytkę przezroczystą taśmą z tworzywa sztucznego, uważając, aby nie tworzyć się pęcherzyków powietrza i zagięć na taśmie.


Inkubuj płytkę w temperaturze 24 stopni Celsjusza przez noc. Spowoduje to powstanie kolonii roju V. parahaemolyticus z rozbłyskami roju rozciągającymi się od środka kolonii, jak pokazano na tym klipie wideo poklatkowym.
 

06:26

Obrazowanie poklatkowe rojów bakterii i zbiorowej reakcji na stres

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

07:59

Badanie ruchliwości sterowanej wiciami u Escherichia coli poprzez zastosowanie trzech ustalonych technik w serii

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

05:57

Kwantyfikacja ruchliwości roju powierzchni bakterii na płytkach gradientu induktora

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

03:44

Przygotowanie komórek roju Vibrio parahaemolyticus do obrazowania

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

02:24

Nowa pożywka chromogeniczna do szybkiego wykrywania gatunków Vibrio

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

02:08

Ocena roju bakterii za pomocą gradientowej płytki inhibitora

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

07:35

Przygotowanie, obrazowanie i kwantyfikacja testów ruchliwości powierzchni bakterii

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

08:02

Synchronizacja Caulobacter crescentus w celu zbadania cyklu komórkowego bakterii

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

09:34

Opracowanie bardziej czułego i specyficznego chromogennego podłoża agarowego do wykrywania Vibrio parahaemolyticus i innych gatunków Vibrio

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

07:58

Techniki laboratoryjne stosowane do utrzymania i różnicowania biotypów izolatów klinicznych i środowiskowych Vibrio cholerae

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

Ostatnia aktualizacja: 22 sierpnia 2026