Modelowanie kolonizacji pochwy myszy przez bakterie beztlenowe

0 wyświetleń2:58 min • September 26th, 2025

Weźmy samicę myszy leczoną hormonem, który kondycjonuje środowisko pochwy, zwiększając jej podatność na infekcje.

Podnieś mysz za ogon, podczas gdy ona chwyta klatkę przednimi łapami, aby podnieść tylne ćwiartki i odsłonić otwór pochwy.

Przepłucz światło pochwy buforem beztlenowym, aby wypłukać śluz, barierę ochronną przed patogenami, wraz z martwymi komórkami nabłonka i endogennymi drobnoustrojami pochwy.

Natychmiast zaszczepij pochwę zawiesiną beztlenowego patogenu bakteryjnego, jednocześnie trzymając mysz w ryzach, aby zminimalizować utratę płynów.

W celu jednoczesnego zaszczepienia należy podać zawiesinę innego beztlenowego patogenu bakteryjnego, używając tej samej objętości co poprzednio.

Zaszczepioną mysz należy przechowywać oddzielnie od myszy niezaszczepionych, aby zapobiec zakażeniu krzyżowemu.

Po zaszczepieniu bakterie przylegają do nabłonka pochwy, rozwijają się w kolonie i tworzą ochronną warstwę biofilmu, która działa jako bariera przed odpowiedziami immunologicznymi gospodarza.

Przygotuj probówki do płukania dopochwowego w komorze beztlenowej, pipetując 70 mikrolitrów sterylnego beztlenowego PBS do 1,5-mililitrowych probówek wirówkowych oznaczonych numerami myszy.

Zamknij szczelnie rurki i wyjmij je z komory. Aby wykonać płukanie pochwy, najpierw umieść mysz na klatce, którą może chwycić przednimi łapami. Następnie delikatnie chwyć środkową część ogona i unieś ją tak, aby tylne ćwiartki były lekko uniesione, a otwór pochwy odsłonięty.

Po pobraniu 50 mikrolitrów PBS z oznaczonej rurki do mycia, delikatnie włóż końcówkę pipety na dwa do trzech milimetrów do światła pochwy, aby umyć ją PBS, pipetując trzy do czterech razy. Następnie przenieś materiał myjący z powrotem do oryginalnej rurki myjącej z pozostałymi 20 mikrolitrami niewykorzystanego PBS. Natychmiast po tym płukaniu pochwy należy zaszczepić każdą mysz, przenosząc dopochwowo 20 mikrolitrów zawiesiny bakteryjnej lub kontroli pojazdu.

W przypadku eksperymentów z jednoczesną inokulacją dwoma różnymi szczepami bakterii, należy oddzielnie zaszczepić 10 mikrolitrami każdej zawiesiny bakteryjnej, zamiast wcześniej mieszać szczepy. Aby zapobiec natychmiastowemu gromadzeniu się podanej objętości w introitusie pochwy, kontynuuj trzymanie tylnej części myszy przez 10 do 20 sekund. Przenieś zaszczepioną mysz do nowej klatki lub z już zaszczepionymi kolegami z klatki i powtórz procedurę z innymi myszami.

07:43

Mysie modele zakażenia Helicobacter i patologii żołądka

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

07:34

Izolacja pojedynczych wewnątrzkomórkowych zbiorowisk bakteryjnych wygenerowanych z mysiego modelu infekcji dróg moczowych do dalszej analizy pojedynczych komórek

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

08:53

Nawracające zakażenie dróg moczowych Escherichia coli wywołane ekspozycją pęcherza moczowego Gardnerella vaginalis u myszy

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

07:57

Protokoły inokulacji pochwowej i pobierania próbek w eksperymentalnym modelu zapalenia pochwy wywołanego przez Candida u myszy

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

02:51

Przygotowanie Gardnerella wagalis inoculum do modelowania nawracających infekcji dróg moczowych u myszy

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

03:42

Ustanowienie mysiego modelu infekcji paciorkowcem grupy B pochwy

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

02:06

Wizualizacja społeczności bakteryjnych wewnątrzkomórkowych w zakażonym pęcherzu myszy

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

02:54

Opracowanie modelu infekcji dróg moczowych u samic myszy

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

10:19

Mysi model kolonizacji pochwy paciorkowcami grupy B

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

08:53

Modele kolonizacji pochwy myszy przez bakterie hodowane beztlenowo

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

Ostatnia aktualizacja: 29 sierpnia 2026