JoVE Encyclopedia of Experiments
Mikrobiologia
0 wyświetleń • 3:21 min • September 26th, 2025
Weź naczynie zawierające znieczuloną larwę danio pręgowanego.
Nanieś kroplę niskotopliwej agarozy na larwę i delikatnie ustaw ją na boki, aby umożliwić dostęp do jelita podczas wstrzykiwania.
Teraz krótko ostudź agarozę, aby ją zestalić, unieruchamiając w ten sposób larwę.
Dodaj pożywkę zawierającą środek znieczulający, aby utrzymać larwę w znieczuleniu.
Następnie należy pobrać zawiesinę znakowanej fluorescencyjnie bakterii Clostridioides difficile, bakterii chorobotwórczej, i dodać barwnik znacznikowy, aby ułatwić monitorowanie wstrzyknięcia.
Załadować tę mieszaninę do igły do mikroiniekcji i zamontować igłę na mikromanipulatorze.
Pod mikroskopem stereoskopowym ustawić igłę pod kątem skierowanym w stronę jelita larwalnego.
Następnie delikatnie wprowadzić końcówkę igły do światła jelita.
Wstrzyknij bakterie bezpośrednio do światła i potwierdź pomyślne dostarczenie za pomocą barwnika znacznikowego. Następnie wycofać igłę.
Za pomocą mikroskopii fluorescencyjnej potwierdź lokalizację Clostridioides difficile w jelicie larwalnym.
Najpierw umieść kroplę 0,8% niskotopliwej agarozy na larwach danio pręgowanego na szalce Petriego, aby przykryć. Delikatnie ustaw larwy w pozycji bocznej. Umieść szalkę Petriego na lodzie na 30 do 60 sekund, aby niskotopliwa agaroza zastygła.
Dodaj 30% pożywki Danieau zawierającej od 0,02% do 0,04% tricainy, aby pokryć agarozę. Aby przygotować roztwór do wstrzykiwań, dodać jeden mikrolitr 0,5% czerwieni fenolowej w roztworze PBS do dziewięciu mikrolitrów barwionego barwnikiem inokulum Clostridioides difficile . Załadować skalibrowaną igłę do mikroiniekcji roztworem do wstrzykiwań za pomocą mikroładowarki.
Zamontuj załadowaną igłę w mikromanipulatorze i umieść ją pod mikroskopem stereoskopowym. Ustawić ciśnienie wtrysku w zakresie od 600 do 900 hektopaskalów. Ustaw czas wstrzykiwania na 0,1 do 0,3 sekundy, aby uzyskać 0,5 do 1,0 nanolitrów.
Ustaw igłę w mikromanipulatorze pod kątem około 45 stopni, skierowaną w stronę osadzonych larw. Umieść końcówkę igły nad przewodem pokarmowym, w pobliżu porów moczowo-płciowych. Przebij przez agarozę, a następnie mięsień końcówką igły.
Następnie włóż go do światła jelita i wstrzyknij od 0,5 do 1,0 nanolitrów Clostridioides difficile. Użyj mikroskopu fluorescencyjnego do monitorowania wstrzykniętych larw i użyj elastycznej końcówki Microloadera, aby pobrać prawidłowo wstrzyknięte larwy do obrazowania konfokalnego.
Niniejszy artykuł opisuje metodę wstrzykiwania znakowanych fluorescencyjnie bakterii Clostridioides difficile do światła jelita znieczulonych larw danio pręgowanego. Technika ta umożliwia wizualizację lokalizacji bakterii przy użyciu mikroskopii fluorescencyjnej.
Zlokalizowana mikroiniekcja bakterii do larw zebrafish umożliwia precyzyjne modelowanie interakcji gospodarz-patogen w żywym systemie kręgowca. Podejście to wspiera wczesną walidację celów terapeutycznych oraz ograniczanie ryzyka mechanistycznego w programach badań nad chorobami zakaźnymi poprzez zapewnienie bezpośredniej wizualizacji i kwantyfikacji lokalizacji bakterii. Metoda ta zwiększa pewność prognostyczną w badaniach translacyjnych oraz w procesie selekcji projektów w odkrywaniu leków przeciwdrobnoustrojowych.
Ta metoda mikroiniekcji integruje wczesny etap procesu od odkrycia do badań przedklinicznych w badaniach nad chorobami zakaźnymi, łącząc wyniki in vitro z walidacją in vivo.
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Ostatnia aktualizacja: 29 sierpnia 2026