$$\rightleftharpoonup{xx}$$
$$\longleftharp{xx}$$,
$$\longrightharp{xx}$$,
Weźmy kulturę E. coli .
Rozcieńczyć kulturę w świeżej pożywce i inkubować ją, aby pobudzić podział bakterii.
Następnie rozcieńczyć kulturę w pożywce zawierającej inhibitor podziału bakteryjnego i inkubować.
Bakterie nadal rosną bez podziału, tworząc wydłużone włókna.
Przenieś kulturę do świeżej probówki, a następnie odwiruj, aby osadzać włókna i usunąć supernatant.
Przemyj granulat stabilizatorem osmotycznym, aby zapobiec lizie sferoplastów. Usuń roztwór.
Dodawać kolejno bufor, lizozym, DNazę i czynnik chelatujący. Inkubować.
Czynnik chelatujący destabilizuje zewnętrzną błonę filamentu.
Lizozym degraduje odsłoniętą warstwę peptydoglikanu, powodując, że włókna tracą kształt i tworzą kuliste struktury zwane sferoplastami.
Dodatkowo DNaza degraduje zanieczyszczające DNA uwalniane z uszkodzonych włókien.
Ponownie dodaj stabilizator osmotyczny, wymieszaj i inkubuj.
Przenieść zawiesinę do probówki zawierającej bufor i wirówkę.
Usunąć nadmiar supernatantu i ponownie zawiesić sferoplasty w buforze do dalszej analizy.
Aby założyć hodowlę przez noc, użyj sterylnej końcówki mikropipety, aby przenieść pojedynczą kolonię bakterii z stałej płytki do hodowli agaru do 14-mililitrowej probówki hodowlanej, zawierającej od dwóch do trzech mililitrów trzyprocentowego bulionu sojowego z tryptykazą, TSB, na 16 do 21 godzin inkubacji w temperaturze 37 stopni Celsjusza z wytrząsaniem. Aby przygotować sferoplasty Gram-ujemnych E. coli , rozcieńczyć nocną hodowlę w stosunku jeden do 100 i 25 mililitrów TSB w kolbie o pojemności 250 mililitrów i wstawić bakterie do inkubatora wstrząsającego na kolejne 2,5 godziny. Gdy roztwór osiągnie gęstość optyczną od 0,5 do 0,8 przy 600 nanometrach, rozcieńczyć kulturę w stosunku od jednego do dziesięciu w świeżym TSB w nowej kolbie o pojemności 250 mililitrów na drugą 2,5-godzinną inkubację z końcowym skutecznym stężeniem 60 mikrogramów na mililitr cefaleksyny.
Do produkcji jednokomórkowych włókien o długości około 50 do 150 mikrometrów, jak to uwidoczniono pod mikroskopem świetlnym przy 1000-krotnym powiększeniu. Odwirować roztwór bakteryjny w celu zebrania włókien i zdekantowania supernatantu. Umyj włókna delikatnym dodatkiem jednego mililitra 0,8 molowej sacharozy, uważając, aby nie naruszyć granulki.
Po jednej minucie wyrzucić supernatant bez naruszania osadu i dodać wskazane odczynniki w odpowiedniej kolejności do włókien. Po dziesięciu minutach w temperaturze pokojowej stopniowo dodawaj jeden mililitr roztworu A przez jedną minutę, delikatnie obracając roztwór ręcznie. Inkubować roztwór przez cztery minuty w temperaturze pokojowej, a następnie podzielić zawiesinę filamentu na dwie równe porcje między dwiema 15-mililitrowymi stożkowymi probówkami zawierającymi siedem mililitrów roztworu B o temperaturze czterech stopni Celsjusza. Następnie osadzać włókna przez odwirowanie i używać pipety serologicznej, aby ostrożnie usunąć wszystkie oprócz jednego do dwóch mililitrów supernatantu bez naruszania granulek.
Użyj mikropipety p1000, aby delikatnie zawiesić granulki. Sprawdzić małą porcję próbki pod kątem tworzenia się sferoplastów za pomocą mikroskopii świetlnej. Sferoplast można następnie przechowywać w temperaturze minus 20 stopni Celsjusza przez okres do tygodnia lub do momentu, gdy przejdzie przez trzy cykle zamrażania i rozmrażania.