JoVE Encyclopedia of Experiments
Mikrobiologia
0 wyświetleń • 3:19 min • September 26th, 2025
Zacznij od zaszczepienia patogennej bakterii w probówce zawierającej płynne podłoże.
Inkubuj, aby promować namnażanie się bakterii, a następnie przenieś kulturę do świeżych probówek.
Odwiruj komórki w granulki i wyrzuć supernatant.
Zawiesić osady bakteryjne w roztworach buforowych zawierających rosnące stężenie mononukleotydu flawinowego (FMN), fotouczulacza i roztworu buforowego bez FMN, który ma służyć jako kontrola.
Dokładnie wymieszać zawartość probówki i przenieść zawiesiny do szklanych probówek.
Wystaw probówki na działanie światła widzialnego w celu fotoaktywacji FMN, który reaguje z tlenem cząsteczkowym, tworząc reaktywne formy tlenu (ROS).
ROS uszkadza bakteryjne składniki komórkowe, zmniejszając w ten sposób żywotność bakterii.
Przenieś podwielokrotności próbki na pożywkę stałą, rozprowadź je równomiernie i inkubuj, aby ocalałe żywe bakterie mogły wyrosnąć w kolonie.
Po inkubacji należy określić ilościowo kolonie i obliczyć procentowe zmniejszenie żywotności bakterii w porównaniu z kontrolą, aby ocenić zależny od dawki wpływ FMN.
Zaszczepij kolonię Staphylococcus aureus w 10 mililitrach bulionu lizogenicznego w 15-mililitrowej probówce z zakręcaną nakrętką. Hoduj kulturę w temperaturze 37 stopni Celsjusza przez 16 godzin w shakerze. Przenieś 0,5 mililitra kultury do 1,5-mililitrowej probówki wirówkowej.
Rozcieńczyć kulturę do gęstości optycznej 0,5 przy 600 nanometrach, dodając wysterylizowaną wodę. Następnie przenieś 0,5 mililitra kultury do 1,5-mililitrowej probówki wirówkowej. Odwirować przy 14 000 G przez 10 minut i zdekantować supernatant.
Dodaj jeden mililitr buforowanego roztworu FMN do osadu komórkowego i wiruj. Do kontroli napromienianej dodać jeden mililitr buforu fosforanowego. Przenieś jeden mililitr roztworu komórek bakteryjnych zawierającego 30-mikromolowy FMN i bufor fosforanowy do szklanych probówek.
Umieść je na promieniowanie pod fioletowym światłem o mocy 10 watów na metr kwadratowy przez 30 minut. Następnie przenieś jeden mililitr roztworu komórek bakteryjnych zawierającego 30, 60 i 120 mikromolowych FMN i bufor fosforanowy w szklanych probówkach. Naświetlać niebieskim światłem przez 120 minut z mocą 20 watów na metr kwadratowy.
Należy również napromienić probówkę zawierającą jeden mililitr 120-mikromolowego FMN przez 60 minut. Po napromieniowaniu dodać 0,2 mililitra roztworu reakcyjnego na płytkę z agarem luria. Rozprowadź roztwór za pomocą szklanej pałeczki w kształcie litery L i inkubuj przez noc w temperaturze 37 stopni Celsjusza.
Następnego dnia oblicz liczbę żywotnych płytek i szybkość inaktywacji Staphylococcus aureus.
Niniejsze badanie analizuje wpływ mononukleotydu flawinowego (FMN) jako fotouczulacza na żywotność bakterii. Poprzez poddanie Staphylococcus aureus działaniu różnych stężeń FMN i światła, w pracy oceniono zależny od dawki wpływ na przeżywalność bakterii.
Metoda ta umożliwia ocenę skuteczności fotouczulacza przeciwko bakteriom patogennym w zależności od dawki, wspierając wczesny etap walidacji celów przeciwdrobnoustrojowych. Poprzez kwantyfikację redukcji żywotności przy kontrolowanej ekspozycji na światło, pozwala ona na mechanistyczną minimalizację ryzyka w przypadku koncepcji terapeutycznych opartych na ROS. Podejście to pomaga w priorytetyzacji kandydatów na fotouczulacze do rozwoju przedklinicznego.
Określa miejsce przesiewania fotouczulaczy pomiędzy identyfikacją trafień a optymalizacją wiodącą w procesie odkrywania środków przeciwdrobnoustrojowych.
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Ostatnia aktualizacja: 22 sierpnia 2026