Inaktywacja bakterii za pomocą aktywowanego światłem mononukleotydu flawinowego

0 wyświetleń3:19 min • September 26th, 2025

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Zacznij od zaszczepienia patogennej bakterii w probówce zawierającej płynne podłoże.

Inkubuj, aby promować namnażanie się bakterii, a następnie przenieś kulturę do świeżych probówek.

Odwiruj komórki w granulki i wyrzuć supernatant.

Zawiesić osady bakteryjne w roztworach buforowych zawierających rosnące stężenie mononukleotydu flawinowego (FMN), fotouczulacza i roztworu buforowego bez FMN, który ma służyć jako kontrola.

Dokładnie wymieszać zawartość probówki i przenieść zawiesiny do szklanych probówek.

Wystaw probówki na działanie światła widzialnego w celu fotoaktywacji FMN, który reaguje z tlenem cząsteczkowym, tworząc reaktywne formy tlenu (ROS).

ROS uszkadza bakteryjne składniki komórkowe, zmniejszając w ten sposób żywotność bakterii.

Przenieś podwielokrotności próbki na pożywkę stałą, rozprowadź je równomiernie i inkubuj, aby ocalałe żywe bakterie mogły wyrosnąć w kolonie.

Po inkubacji należy określić ilościowo kolonie i obliczyć procentowe zmniejszenie żywotności bakterii w porównaniu z kontrolą, aby ocenić zależny od dawki wpływ FMN.

Zaszczepij kolonię Staphylococcus aureus w 10 mililitrach bulionu lizogenicznego w 15-mililitrowej probówce z zakręcaną nakrętką. Hoduj kulturę w temperaturze 37 stopni Celsjusza przez 16 godzin w shakerze. Przenieś 0,5 mililitra kultury do 1,5-mililitrowej probówki wirówkowej.

Rozcieńczyć kulturę do gęstości optycznej 0,5 przy 600 nanometrach, dodając wysterylizowaną wodę. Następnie przenieś 0,5 mililitra kultury do 1,5-mililitrowej probówki wirówkowej. Odwirować przy 14 000 G przez 10 minut i zdekantować supernatant.

Dodaj jeden mililitr buforowanego roztworu FMN do osadu komórkowego i wiruj. Do kontroli napromienianej dodać jeden mililitr buforu fosforanowego. Przenieś jeden mililitr roztworu komórek bakteryjnych zawierającego 30-mikromolowy FMN i bufor fosforanowy do szklanych probówek.

Umieść je na promieniowanie pod fioletowym światłem o mocy 10 watów na metr kwadratowy przez 30 minut. Następnie przenieś jeden mililitr roztworu komórek bakteryjnych zawierającego 30, 60 i 120 mikromolowych FMN i bufor fosforanowy w szklanych probówkach. Naświetlać niebieskim światłem przez 120 minut z mocą 20 watów na metr kwadratowy.

Należy również napromienić probówkę zawierającą jeden mililitr 120-mikromolowego FMN przez 60 minut. Po napromieniowaniu dodać 0,2 mililitra roztworu reakcyjnego na płytkę z agarem luria. Rozprowadź roztwór za pomocą szklanej pałeczki w kształcie litery L i inkubuj przez noc w temperaturze 37 stopni Celsjusza.

Następnego dnia oblicz liczbę żywotnych płytek i szybkość inaktywacji Staphylococcus aureus.

05:12

Model in vitro do badania wpływu terapii fotodynamicznej za pośrednictwem kwasu 5-aminolulinowego na biofilm Staphylococcus aureus

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

07:28

Standaryzowane testy in vitro do wizualizacji i ilościowego określenia interakcji między ludzkimi neutrofilami a biofilmami Staphylococcus aureus

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

05:13

Badania przesiewowe in vitro oparte na diodach LED do oceny fotoaktywowanych cząsteczek w inaktywacji fotodynamicznej bakterii

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

05:57

Synergistyczny efekt światła widzialnego i gentamycyny w odniesieniu do mikroorganizmów Pseudomona aeruginosa

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

02:23

Kwantyfikacja inaktywacji bakterii wywołanej światłem poprzez wytwarzanie reaktywnych form tlenu

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

03:47

Mikroskopowa ocena hamowania powstawania biofilmu przez enzymy

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

02:59

Aktywacja światłem biofilmów bakteryjnych z użyciem prekursora fotosensywnego

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

05:09

Leczenie produktów płytkowych ryboflawiną i światłem UV w celu wyeliminowania bakterii

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

11:00

Metody hamowania produkcji pyomelaniny bakteryjnej i określania odpowiedniego wzrostu wrażliwości na stres oksydacyjny

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

09:29

In vivo (in vivo) Badanie przeciwdrobnoustrojowej terapii światłem niebieskim w wielolekoopornych zakażeniach oparzeniami Acinetobacter baumannii przy użyciu obrazowania bioluminescencyjnego

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

Ostatnia aktualizacja: 22 sierpnia 2026