$$\rightleftharpoonup{xx}$$
$$\longleftharp{xx}$$,
$$\longrightharp{xx}$$,
Pirofosfataza związana z błoną bakteryjną lub mPPaza hydrolizuje pirofosforan do ortofosforanu, jednocześnie pompując jony sodu przez błonę.
Aby ocenić działanie inhibitorów na mPPazy, należy dodać rosnące stężenia wzorców fosforanowych do pasków probówek.
Wprowadzić badane związki, które mogą hamować mPPazę, do probówek, pozostawiając jedną z wodą jako kontrolą.
Dodaj osadzone w liposomach mPPazy pochodzące z ciepłolubnej bakterii Thermotoga maritima do wszystkich probówek z wyjątkiem wzorców.
Zamknąć i inkubować w optymalnej temperaturze, aby aktywować enzym.
Dodaj pirofosforan sodu, aby zainicjować reakcję i uwolnić ortofosforan.
Przenieś probówki na platformę chłodzącą, aby zatrzymać reakcję i odwirować, aby usunąć kondensację.
Dodać odczynnik molibdenian-askorbinian, aby zareagował z ortofosforanem i wytworzył kwas fosfomolibdenowy.
Dodaj roztwór cytrynianu arsenitu, aby zredukować kwas, tworząc stabilny niebieski kompleks.
Przenieść zawartość na płytkę wielodołkową i zmierzyć absorbancję.
Niższa absorbancja w porównaniu z kontrolą wskazuje na hamowanie mPPazy, podczas gdy wzorce służą jako odniesienie do oznaczania ilościowego fosforanów.
Dodaj jeden mililitr roztworu B do 10 mililitrów roztworu A, wymieszaj ręcznie i przechowuj roztwór na lodzie.
Za pomocą pipety wielokanałowej dodać 40 mikrolitrów wzorca fosforanu 0, 62,5, 250 i 500 mikromolowego do trzykrotnie napisów probówki.
Następnie dodaj 25 mikrolitrów roztworu złożonego i 15 mikrolitrów mieszaniny roztworu mPPazy do każdej probówki, z wyjątkiem probówek zawierających wzorzec fosforanowy. Uszczelnij paski rur za pomocą samoprzylepnego arkusza uszczelniającego. Wytnij arkusz uszczelniający, aby oddzielić każdy pasek rury.
Następnie należy wstępnie inkubować próbkę przez pięć minut w temperaturze 71 stopni Celsjusza. Umieścić próbkę na bloku grzewczym w 20-sekundowych odstępach między każdym paskiem.
Dla każdego paska otwórz uszczelkę samoprzylepną. Za pomocą pipety wielokanałowej dodać 10 mikrolitrów dwóch milimolowych dwuzasadowych pirofosforanów sodu i mieszać, pipetując w górę iw dół przez pięć razy.
Ponownie uszczelnij taśmę rurową za pomocą tego samego uszczelnienia.
Ponownie inkubować w temperaturze 71 stopni Celsjusza przez pięć minut. Następnie umieścić próbki w aparacie chłodzącym w 20-sekundowym odstępie między każdym paskiem.
Pozwól im ostygnąć przez pięć minut, a następnie krótko odwiruj każdy pasek, aby zdekantować krople wody pod arkuszem uszczelniającym. Włóż pasek z powrotem do aparatu chłodzącego, usuń uszczelkę i pozwól im ostygnąć przez kolejne pięć minut. Następnie dodać 60 mikrolitrów roztworu A i B, mieszać pipetując w górę i w dół przez pięć razy i trzymać paski probówek na aparacie chłodzącym przez kolejne 10 minut.
W dygestorium dodaj 90 mikrolitrów roztworu cytrynianu arsenu i trzymaj w temperaturze pokojowej przez co najmniej 30 minut, aby uzyskać stabilny niebieski kolor. Dozować 180 mikrolitrów każdej mieszaniny reakcyjnej do przezroczystej 96-dołkowej mikropłytki polistyrenowej. Użyj spektrofotometru z mikropłytkami, aby zmierzyć absorbancję każdej studzienki przy 860 nanometrach.