JoVE Encyclopedia of Experiments
Mikrobiologia
0 wyświetleń • 4:28 min • October 30th, 2025
Weźmy hodowlę Streptococcus mutans wykazującą ekspresję białka znakowanego polihistydyną wydzielanego do pożywki.
Odwirować kulturę i zebrać supernatant bogaty w białko.
Dodać siarczan amonu i inkubować mieszając, aby wytrącić białka poprzez zmniejszenie ich rozpuszczalności.
Przenieść roztwór do probówki, odwirować i wyrzucić supernatant.
Zawiesić osad w buforze wiążącym zawierającym sole i niski poziom imidazolu w celu ustabilizowania białka.
Roztworu należy dializować ze świeżym buforem wiążącym w celu usunięcia nadmiaru soli.
Odwirować dializowany roztwór do osadzania nierozpuszczalnych zanieczyszczeń, a następnie przefiltrować supernatant.
Wymieszać filtrat z żywicą powinowactwa naładowaną niklem i inkubować, aby umożliwić selektywne wiązanie białka znakowanego polihistydyną z jonami niklu.
Załadować mieszaninę na kolumnę chromatograficzną i przemyć buforem wiążącym w celu usunięcia niezwiązanych białek.
Następnie dodaj bufor elucyjny z wysokim imidazolem, aby wyprzeć histydynę z jonów niklu i uwolnić białko znakowane polihistydyną.
Zebrać ten eluat zawierający oczyszczone białka.
Odwirować zawiesinę kultur bakteryjnych przez 20 minut w temperaturze 10 000 razy g w temperaturze czterech stopni Celsjusza.
Przenieść supernatant kulturowy do trzylitrowej szklanej zlewki. Aby skoncentrować białka z supernatantu hodowli, umieść dwulitrowy supernatant na mieszadle magnetycznym i rozpocznij energiczne mieszanie. Dodać 1,122 gramy siarczanu amonu i pozostawić osad do uformowania się, energicznie mieszając w temperaturze czterech stopni Celsjusza przez 4 godziny lub przez noc.
Następnie odwirować roztwór wytrącony siarczanem amonu o stężeniu 15 000 razy g przez 20 minut w temperaturze czterech stopni Celsjusza. Zdekantować supernatant. Za pomocą szpatułki zbierz osad i przenieś go do 200-mililitrowej szklanej zlewki.
Ponownie zawiesić granulki w 35 mililitrach buforu wiążącego. Następnie przenieś każde około 25 mililitrów zawiesiny do rurki do dializy z regenerowanej celulozy. Umieścić rurkę dializacyjną w 2,5 litra mieszającego buforu wiążącego na mieszadle w temperaturze czterech stopni Celsjusza w celu dializacji zawiesiny.
Po dwóch godzinach należy wymienić roztwór do dializy i kontynuować dializę przez noc. Następnie przenieś dializowaną zawiesinę z rurki do probówek wirówkowych i umieść probówki w wirówce pod ciśnieniem 20 000 g na 10 minut w temperaturze czterech stopni Celsjusza. Za pomocą sprzętu do filtracji ssącej przelać supernatant na filtr membranowy o średnicy 0,2 mikrometra w celu przefiltrowania.
Przenieść filtrat do kolby o pojemności 75 mililitrów.
Aby frakcjonować gtfSI znakowany polihistydyną z przefiltrowanej zawiesiny, należy najpierw przygotować unieruchomioną chromatografię powinowactwa do metali. Po wyrównaniu żywicy zgodnie z rękopisem zamknij kurek szczypcowy Hoffmana.
Dodaj pięć mililitrów przefiltrowanej zawiesiny do kolumny, aby uzyskać zawiesinę. Następnie przenieś całą zawiesinę do pozostałej przefiltrowanej zawiesiny i delikatnie mieszaj mieszaninę przez 30 minut w temperaturze czterech stopni Celsjusza. Załaduj mieszaninę z powrotem do kolumny.
Otwórz kurek szczypiący Hoffmana, aby usunąć zawieszenie przez przepływ grawitacyjny. Przemyć żywicę IMAC 20 mililitrami buforu wiążącego, a następnie wymyć 20 mililitrów buforu elucyjnego, aby uzyskać rekombinowany gtfSI.
Niniejszy artykuł opisuje szczegółowy protokół oczyszczania białka z tagiem polihistydynowym z kultur Streptococcus mutans. Proces obejmuje wytrącanie siarczanem amonu, dializę oraz chromatografię powinowactwa do zimmobilizowanych jonów metali (IMAC) w celu uzyskania wysokiej czystości białka docelowego.
Niniejszy protokół umożliwia niezawodne oczyszczanie wydzielanych białek z tagiem polihistydynowym z supernatantów bakteryjnych, wspierając walidację celów w procesie odkrywania środków przeciwdrobnoustrojowych. Metoda ta stanowi skalowalne podejście do pozyskiwania białek o wysokiej czystości do badań funkcjonalnych i strukturalnych dotyczących czynników wirulencji Streptococcus mutans. Ułatwia ona ograniczanie ryzyka mechanistycznego poprzez zapewnienie powtarzalnych wydajności białek do dalszego rozwoju testów.
Metoda ta wpisuje się w kontinuum procesu odkrywania leków – od identyfikacji celu po optymalizację związku wiodącego – dostarczając oczyszczone białko do charakterystyki biochemicznej.
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Ostatnia aktualizacja: 22 sierpnia 2026