Procedura oczyszczania białka znakowanego polihistydyną ze Streptococcus mutans

0 wyświetleń4:28 min • October 30th, 2025

Weźmy hodowlę Streptococcus mutans wykazującą ekspresję białka znakowanego polihistydyną wydzielanego do pożywki.

Odwirować kulturę i zebrać supernatant bogaty w białko.

Dodać siarczan amonu i inkubować mieszając, aby wytrącić białka poprzez zmniejszenie ich rozpuszczalności.

Przenieść roztwór do probówki, odwirować i wyrzucić supernatant.

Zawiesić osad w buforze wiążącym zawierającym sole i niski poziom imidazolu w celu ustabilizowania białka.

Roztworu należy dializować ze świeżym buforem wiążącym w celu usunięcia nadmiaru soli.

Odwirować dializowany roztwór do osadzania nierozpuszczalnych zanieczyszczeń, a następnie przefiltrować supernatant.

Wymieszać filtrat z żywicą powinowactwa naładowaną niklem i inkubować, aby umożliwić selektywne wiązanie białka znakowanego polihistydyną z jonami niklu.

Załadować mieszaninę na kolumnę chromatograficzną i przemyć buforem wiążącym w celu usunięcia niezwiązanych białek.

Następnie dodaj bufor elucyjny z wysokim imidazolem, aby wyprzeć histydynę z jonów niklu i uwolnić białko znakowane polihistydyną.

Zebrać ten eluat zawierający oczyszczone białka.

Odwirować zawiesinę kultur bakteryjnych przez 20 minut w temperaturze 10 000 razy g w temperaturze czterech stopni Celsjusza.

Przenieść supernatant kulturowy do trzylitrowej szklanej zlewki. Aby skoncentrować białka z supernatantu hodowli, umieść dwulitrowy supernatant na mieszadle magnetycznym i rozpocznij energiczne mieszanie. Dodać 1,122 gramy siarczanu amonu i pozostawić osad do uformowania się, energicznie mieszając w temperaturze czterech stopni Celsjusza przez 4 godziny lub przez noc.

Następnie odwirować roztwór wytrącony siarczanem amonu o stężeniu 15 000 razy g przez 20 minut w temperaturze czterech stopni Celsjusza. Zdekantować supernatant. Za pomocą szpatułki zbierz osad i przenieś go do 200-mililitrowej szklanej zlewki.

Ponownie zawiesić granulki w 35 mililitrach buforu wiążącego. Następnie przenieś każde około 25 mililitrów zawiesiny do rurki do dializy z regenerowanej celulozy. Umieścić rurkę dializacyjną w 2,5 litra mieszającego buforu wiążącego na mieszadle w temperaturze czterech stopni Celsjusza w celu dializacji zawiesiny.

Po dwóch godzinach należy wymienić roztwór do dializy i kontynuować dializę przez noc. Następnie przenieś dializowaną zawiesinę z rurki do probówek wirówkowych i umieść probówki w wirówce pod ciśnieniem 20 000 g na 10 minut w temperaturze czterech stopni Celsjusza. Za pomocą sprzętu do filtracji ssącej przelać supernatant na filtr membranowy o średnicy 0,2 mikrometra w celu przefiltrowania.

Przenieść filtrat do kolby o pojemności 75 mililitrów.

Aby frakcjonować gtfSI znakowany polihistydyną z przefiltrowanej zawiesiny, należy najpierw przygotować unieruchomioną chromatografię powinowactwa do metali. Po wyrównaniu żywicy zgodnie z rękopisem zamknij kurek szczypcowy Hoffmana.

Dodaj pięć mililitrów przefiltrowanej zawiesiny do kolumny, aby uzyskać zawiesinę. Następnie przenieś całą zawiesinę do pozostałej przefiltrowanej zawiesiny i delikatnie mieszaj mieszaninę przez 30 minut w temperaturze czterech stopni Celsjusza. Załaduj mieszaninę z powrotem do kolumny.

Otwórz kurek szczypiący Hoffmana, aby usunąć zawieszenie przez przepływ grawitacyjny. Przemyć żywicę IMAC 20 mililitrami buforu wiążącego, a następnie wymyć 20 mililitrów buforu elucyjnego, aby uzyskać rekombinowany gtfSI.

08:02

Laboratoryjna chromatografia powinowactwa do immobilizowanych metali, rekonstytucja i oznaczanie metaloenzymu znakowanego polihistydyną dla laboratorium licencjackiego

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

09:53

Test oczyszczania i aktywności in vitro dla syntetazy (p)ppGpp z Clostridium difficile

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

07:32

Bakteryjna ekspresja i oczyszczanie metaloproteinazy ludzkiej macierzy-3 za pomocą chromatografii powinowactwa

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

07:17

Oczyszczanie Hsp104, białkowej dysagregazy

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

10:32

Ortogonalne oczyszczanie białek wspomagane przez mały bispecyficzny znacznik powinowactwa

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

07:44

Wysokoprzepustowe oczyszczanie rekombinowanych białek z markerami powinowactwa

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

02:54

Technika chromatografii powinowactwa do oczyszczania rekombinowanego białka bakteryjnego

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

03:54

Oczyszczanie białek oparte na chromatografii powinowactwa niklu: technika oczyszczania rekombinowanych białek znakowanych polihistydyną z lizatu komórek bakteryjnych

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

18:27

Jednoetapowe oczyszczanie białek znakowanych podwójnymi paciorkowcami i ich kompleksów na żywicy Strep-Tactin usieciowanej suberatrynem bis(sulfosukcynimidylu) (BS3)

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

11:47

Specyficzne dla reszt włączenie aminokwasów niekanonicznych do białek modelowych przy użyciu bezkomórkowego systemu transkrypcyjno-translacyjnego Escherichia coli

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

Ostatnia aktualizacja: 22 sierpnia 2026