Procedura oczyszczania białka znakowanego polihistydyną ze Streptococcus mutans

0 wyświetleń • 4:28 min. • October 30th, 2025

Weźmy hodowlę Streptococcus mutans wykazującą ekspresję białka znakowanego polihistydyną wydzielanego do pożywki.

Odwirować kulturę i zebrać supernatant bogaty w białko.

Dodać siarczan amonu i inkubować mieszając, aby wytrącić białka poprzez zmniejszenie ich rozpuszczalności.

Przenieść roztwór do probówki, odwirować i wyrzucić supernatant.

Zawiesić osad w buforze wiążącym zawierającym sole i niski poziom imidazolu w celu ustabilizowania białka.

Roztworu należy dializować ze świeżym buforem wiążącym w celu usunięcia nadmiaru soli.

Odwirować dializowany roztwór do osadzania nierozpuszczalnych zanieczyszczeń, a następnie przefiltrować supernatant.

Wymieszać filtrat z żywicą powinowactwa naładowaną niklem i inkubować, aby umożliwić selektywne wiązanie białka znakowanego polihistydyną z jonami niklu.

Załadować mieszaninę na kolumnę chromatograficzną i przemyć buforem wiążącym w celu usunięcia niezwiązanych białek.

Następnie dodaj bufor elucyjny z wysokim imidazolem, aby wyprzeć histydynę z jonów niklu i uwolnić białko znakowane polihistydyną.

Zebrać ten eluat zawierający oczyszczone białka.

Odwirować zawiesinę kultur bakteryjnych przez 20 minut w temperaturze 10 000 razy g w temperaturze czterech

Wyświetl pełny transkrypt i uzyskaj dostęp do tysięcy filmów naukowych

Zaloguj się

Przeglądaj więcej filmów

Wytrącanie siarczanem amonu