JoVE Encyclopedia of Experiments
Mikrobiologia
0 wyświetleń • 4:37 min • October 30th, 2025
Weźmy kulturę Phormidium lacuna, nitkowatego cyjanobakterii.
Homogenizuj kulturę, aby rozproszyć włókna, a następnie odwiruj, aby osadzać bakterie.
Odrzucić supernatant i ponownie zawiesić osad w pożywce bogatej w składniki odżywcze.
Dodaj plazmidowe DNA zawierające białko zielonej fluorescencji i geny oporności na antybiotyki na płytkę agarową uzupełnioną antybiotykami.
Dodaj zawiesinę bakteryjną na DNA i inkubuj w warunkach świetlnych.
Bakterie internalizują DNA za pomocą pilusów typu IV. Wprowadzone geny integrują się z jedną z wielu kopii genomu bakteryjnego.
Rozprowadź bakterie na płytce agarowej uzupełnionej antybiotykiem, aby wybrać przekształcone bakterie.
Pod mikroskopem świetlnym zidentyfikuj zdrowe, zielone włókna wskazujące na udaną transformację.
Przenieś wybrane filamenty do płynnych pożywek o wyższym stężeniu antybiotyku, aby wzbogacić przekształconą populację.
Ponownie umieść je na agarze z wyższymi poziomami antybiotyków w celu segregacji transformantów.
Wizualizacja ekspresji GFP pod mikroskopem fluorescencyjnym, aby potwierdzić udaną transformację.
Zacznij od zaszczepienia 50 mililitrów płynnej pożywki F2 do każdej z dwóch 250-mililitrowych kolb jednym mililitrem włókien P. lacuna z działającej kultury. Uprawiaj w białym świetle pod mieszaniem przez około pięć dni w temperaturze 25 stopni Celsjusza.
Po pięciu dniach homogenizuj 100 mililitrów zawiesiny komórek P. lacuna przy 10 000 obr./min przez trzy minuty i zmierz gęstość optyczną przy 750 nanometrach. Następnie odwirować zawiesinę komórkową przez 15 minut w temperaturze 6 000 razy g. Usunąć supernatant i zawiesić osad w 800 mikrolitrach pozostałej cieczy i dodatkowej pożywki F2+. Weź osiem płytek agarowych F2+ Bacto zawierających 120 mikrogramów na mililitr kanamycyny i odpipetuj 10 mikrogramów DNA na środek każdej płytki agarowej.
Natychmiast odpipetować 100 mikrolitrów zawiesiny komórkowej na wierzch DNA. Trzymaj płytkę agarową bez pokrywki na czystej ławce, aby nadmiar płynu odparował. Zamknij płytkę i uprawiaj ją w białym świetle w temperaturze 25 stopni Celsjusza przez dwa dni.
Po dwóch dniach rozprowadź włókna każdej płytki agarowej na kilku świeżych płytkach agarowych F2+ Bacto zawierających 120 mikrogramów na mililitr kanamycyny z pętlą inokulacyjną. Hoduj płytki w białym świetle w temperaturze 25 stopni Celsjusza i regularnie sprawdzaj kultury pod mikroskopem. Po 14 do 28 dniach zidentyfikuj martwe brązowawe włókna i poszukaj przekształconych włókien pod mikroskopem.
Przekształcone włókna wyglądają zdrowo i zielono i różnią się od większości włókien. Przenieś każdy pojedynczy przekształcony filament do 50-mililitrowych kolb z 10 mililitrami pożywki F2+ z 250 mikrogramami na mililitr kanamycyny. Uprawiaj w białym świetle w temperaturze 25 stopni Celsjusza na shakerze i obserwuj wzrost do czterech tygodni.
Przenieś filamenty z powrotem do podłoża agarowego zawierającego 250 mikrogramów na mililitr kanamycyny i poczekaj, aż włókna wyrosną. Następnie ponownie zwiększ stężenie kanamycyny, aby przyspieszyć segregację. W celu ekspresji GFP obserwuje pojedyncze włókna za pomocą mikroskopu fluorescencyjnego przy powiększeniu 40X lub 63X i rejestruje obraz transmisyjny w jasnym polu oraz obraz fluorescencyjny.
Niniejsze badanie szczegółowo opisuje transformację nitkowatej cyjanobakterii Phormidium lacuna z wykorzystaniem plazmidowego DNA. Proces ten obejmuje internalizację DNA poprzez pili typu IV oraz następującą po niej selekcję transformowanych bakterii.
Ustanowienie niezawodnej transformacji genetycznej u nitkowatych sinic umożliwia walidację celów i ograniczanie ryzyka mechanistycznego w inżynierii szlaków fotosyntetycznych oraz zrównoważonej bioprodukcji. Stabilna ekspresja GFP zapewnia ilościowy, wizualny odczyt służący do oceny wydajności konstruktu genetycznego i modulacji szlaków w systemie istotnym z punktu widzenia patogenezy chorób. Podejście to wspiera rozwój modeli przedklinicznych poprzez generowanie zmodyfikowanych szczepów o przewidywalnych efektach fenotypowych, co pozwala na identyfikację wiodących kandydatów oraz zwiększenie pewności prognostycznej we wczesnych etapach odkrywania leków.
Metoda ta wpisuje się w kontinuum procesu odkrywania – od walidacji celu po identyfikację związku wiodącego – stanowiąc bazę dla inżynierii fotosyntetycznej i produkcji metabolitów.
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Ostatnia aktualizacja: 29 sierpnia 2026