Naturalna przemiana i ekspresja GFP w nitkowatych Cyanobacterium Phormidium lacuna

0 wyświetleń4:37 min • October 30th, 2025

Weźmy kulturę Phormidium lacuna, nitkowatego cyjanobakterii.

Homogenizuj kulturę, aby rozproszyć włókna, a następnie odwiruj, aby osadzać bakterie.

Odrzucić supernatant i ponownie zawiesić osad w pożywce bogatej w składniki odżywcze.

Dodaj plazmidowe DNA zawierające białko zielonej fluorescencji i geny oporności na antybiotyki na płytkę agarową uzupełnioną antybiotykami.

Dodaj zawiesinę bakteryjną na DNA i inkubuj w warunkach świetlnych.

Bakterie internalizują DNA za pomocą pilusów typu IV. Wprowadzone geny integrują się z jedną z wielu kopii genomu bakteryjnego.

Rozprowadź bakterie na płytce agarowej uzupełnionej antybiotykiem, aby wybrać przekształcone bakterie.

Pod mikroskopem świetlnym zidentyfikuj zdrowe, zielone włókna wskazujące na udaną transformację.

Przenieś wybrane filamenty do płynnych pożywek o wyższym stężeniu antybiotyku, aby wzbogacić przekształconą populację.

Ponownie umieść je na agarze z wyższymi poziomami antybiotyków w celu segregacji transformantów.

Wizualizacja ekspresji GFP pod mikroskopem fluorescencyjnym, aby potwierdzić udaną transformację.

Zacznij od zaszczepienia 50 mililitrów płynnej pożywki F2 do każdej z dwóch 250-mililitrowych kolb jednym mililitrem włókien P. lacuna z działającej kultury. Uprawiaj w białym świetle pod mieszaniem przez około pięć dni w temperaturze 25 stopni Celsjusza.

Po pięciu dniach homogenizuj 100 mililitrów zawiesiny komórek P. lacuna przy 10 000 obr./min przez trzy minuty i zmierz gęstość optyczną przy 750 nanometrach. Następnie odwirować zawiesinę komórkową przez 15 minut w temperaturze 6 000 razy g. Usunąć supernatant i zawiesić osad w 800 mikrolitrach pozostałej cieczy i dodatkowej pożywki F2+. Weź osiem płytek agarowych F2+ Bacto zawierających 120 mikrogramów na mililitr kanamycyny i odpipetuj 10 mikrogramów DNA na środek każdej płytki agarowej.

Natychmiast odpipetować 100 mikrolitrów zawiesiny komórkowej na wierzch DNA. Trzymaj płytkę agarową bez pokrywki na czystej ławce, aby nadmiar płynu odparował. Zamknij płytkę i uprawiaj ją w białym świetle w temperaturze 25 stopni Celsjusza przez dwa dni.

Po dwóch dniach rozprowadź włókna każdej płytki agarowej na kilku świeżych płytkach agarowych F2+ Bacto zawierających 120 mikrogramów na mililitr kanamycyny z pętlą inokulacyjną. Hoduj płytki w białym świetle w temperaturze 25 stopni Celsjusza i regularnie sprawdzaj kultury pod mikroskopem. Po 14 do 28 dniach zidentyfikuj martwe brązowawe włókna i poszukaj przekształconych włókien pod mikroskopem.

Przekształcone włókna wyglądają zdrowo i zielono i różnią się od większości włókien. Przenieś każdy pojedynczy przekształcony filament do 50-mililitrowych kolb z 10 mililitrami pożywki F2+ z 250 mikrogramami na mililitr kanamycyny. Uprawiaj w białym świetle w temperaturze 25 stopni Celsjusza na shakerze i obserwuj wzrost do czterech tygodni.

Przenieś filamenty z powrotem do podłoża agarowego zawierającego 250 mikrogramów na mililitr kanamycyny i poczekaj, aż włókna wyrosną. Następnie ponownie zwiększ stężenie kanamycyny, aby przyspieszyć segregację. W celu ekspresji GFP obserwuje pojedyncze włókna za pomocą mikroskopu fluorescencyjnego przy powiększeniu 40X lub 63X i rejestruje obraz transmisyjny w jasnym polu oraz obraz fluorescencyjny.

10:39

Metodologia badania horyzontalnego transferu genów u Staphylococcus aureus

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

12:32

Kwantyfikacja oporności na antybiotyki za pośrednictwem plazmidu w podejściu ewolucji eksperymentalnej

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

11:04

Metody elektroporacji i potwierdzania przemian u Limosilactobacillus reuteri DSM20016

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

06:52

Ilościowa analiza fluorescencyjna żywych komórek drożdży szczepowych przy użyciu mikroskopii

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

03:22

Test fototaksji sinic nitkowatych przy użyciu skupionego oświetlenia świetlnego

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

03:04

Wytwarzanie fluorescencyjnego szczepu reporterowego u Pseudomonas aeruginosa

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

02:44

Ruchliwość ślizgowa we włóknach Phormidium lacuna

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

08:29

Wykorzystanie kokultury do wykrywania interakcji międzygatunkowych o podłożu chemicznym

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

07:32

Biolistyczna transformacja genu znakowanego fluorescencyjnie w oportunistyczny patogen grzybowy Cryptococcus neoformans

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

09:27

Generowanie fuzji białek fluorescencyjnych u gatunków Candida

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

Ostatnia aktualizacja: 29 sierpnia 2026