Wysokowydajny test fluorescencjonujący do badania interakcji mikroorganizmów z robakami

0 wyświetleń2:45 min • November 28th, 2025

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Zacznij od rurki zawierającej robaki C. elegans .

Przenieś robaki na wielowarstwową płytkę z bogatym w składniki odżywcze agarozowym medium zawierającym bakterie kontrolne lub testowe.

Podczas inkubacji robaki spożywają bakterie, które kolonizują nabłonek jelit i uwalniają aminokwasy będące źródłem składników odżywczych. Aminokwasy te są metabolizowane do pochodnych aminokwasów i przechowywane w granulatach jelitowych powiązanych z lizosomami.

Następnie dodaj świeży bufor i przenieś robaki na czarną płytkę wielowarstwową.

Dodaj chemiczny czynnik wywołujący stres do każdej studni i uszczelnij płytę.

Włóż płytkę do czytnika płyty fluorescencyjnej i zapisz fluorescencję.

U robaków czynnik stresowy powoduje stres oksydacyjny, który uszkadza komórki nabłonkowe jelit.

Powoduje to pęknięcie granulek jelitowych związanych z lizosomem, uwalniając pochodne aminokwasów, które po ekspozycji na promieniowanie ultrafioletowe fluorescują na niebiesko.

Porównaj fluorescencję robaków wystawionych na bakterie kontrolne i testowe, aby ocenić skuteczność kolonizacji bakterii oraz ich wpływ na reakcję gospodarza na stres oksydacyjny.

Reguluj stężenie robaków do 15 robaków na mikrolitr w stożkowej rurce o pojemności 15 mililitrów. Następnie przelej 8 mikrolitrów roztworu robaka do każdej z dołków ośmiu 96-dołkowych płyt agarozy NGM za pomocą pipety wielokanałowej lub pipety powtarzającej.

Po 36 godzinach należy podać 30 mikrolitrów M9 do każdego dołku na 96-dołowej płytce. Następnie przenieś robaki na płytę 384-dołową zgodnie z układem zestawu, używając końcówek o niskim zatrzymywaniu, aby upewnić się, że czytniki płyt są prawidłowo ustawione. Następnie uzupełnij płytki z 384 dołkami kolejną ilością M9, dążąc do końcowej objętości 60 mikrolitrów na odwór poprzez dodanie 40 mikrolitrów M9 do testu termicznego oraz 34 mikrolitrów M9 w 6 mikrolitrach TBHP dla stresu oksydacyjnego wywołanego TBHP.

Następnie rozpocznij badanie w ciągu dwóch minut od dodania TBHP. Następnie zamknij płytki przezroczystą pokrywką i zabezpiecz krawędzie płytek z 384 dołkami taśmą maskującą, upewniając się, że taśma nie przechodzi na pokrywkę ani pod płytkę. Następnie włóż płytkę do czytnika tablic.

11:58

Nicienie Caenorhabditis elegans - wszechstronny model in vivo do badania interakcji gospodarz-mikroorganizm

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

08:49

Prosta metoda wysokoprzepustowych badań przesiewowych w kierunku Caenorhabditis elegans

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

09:01

Wysokoprzepustowy test do przewidywania toksyczności chemicznej za pomocą zautomatyzowanego profilowania fenotypowego Caenorhabditis elegans

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

14:53

Przesiewanie wysokoprzepustowe i biosensing z wykorzystaniem fluorescencyjnych szczepów C. elegans

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

10:58

Ilościowe i zautomatyzowane wysokoprzepustowe przesiewy RNAi w całym genomie u C. elegans

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

09:02

Wizualizacja bakterii w nicieniach przy użyciu mikroskopii fluorescencyjnej

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

15:28

Mikroskopowy test fenotypowy do oznaczania ilościowego prątków wewnątrzkomórkowych przystosowany do badań przesiewowych o wysokiej przepustowości/wysokiej zawartości

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

08:43

Test limfocytów oparty na fluorescencji, odpowiedni do wysokoprzepustowych badań przesiewowych małych cząsteczek

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

10:29

Wysokoprzepustowy, kompatybilny test do oceny skuteczności leku przeciwko prątkom gruźlicy pasażowanym przez makrofagi

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

09:00

Platforma mikroprzepływowa do obrazowania podłużnego u Caenorhabditis elegans

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

Ostatnia aktualizacja: 22 sierpnia 2026