JoVE Encyclopedia of Experiments
Mikrobiologia
0 wyświetleń • 2:54 min • November 28th, 2025
Weź zawiesinę komórek bakteryjnych wyrażających białko docelowe oznaczone polihistydyną.
Sonikat na lodzie, aby zminimalizować rozkład białka. Fale dźwiękowe o wysokiej częstotliwości lizują komórki, uwalniając zawartość wewnątrzkomórkową, w tym docelowe białko.
Wiruj w wirówce, aby oddzielić zanieczyszczenia i przenieść białka zawierające supernatant do strzykawki.
Przefiltruj supernatant, aby usunąć kruszywa i zapobiec zatoraniu kolumny chromatycznej.
Weź kolumnę chromatografii powinowacowej na bazie niklu i wyrównuj ją, aby zapewnić optymalne oczyszczanie białek.
Załaduj filtrat na kolumnę. Znacznik polihistydynowy wiąże się z jonami niklu na żywicy kolumnowej, unieruchamiając białka docelowe.
Przemyj kolumnę buforem, aby usunąć niezwiązane białka, i monitoruj absorpcję UV eluatu, aby potwierdzić ich usunięcie białek niebędących celem.
Dodaj bufor elucyjny zawierający imidazol, który konkuruje z tagiem polisydydynowym o wiązanie niklu, uwalniając białka.
Drugi skok absorpcji UV potwierdza elucię docelowego białka, które jest gotowe do dalszego użycia.
Sonikuj komórki na lodzie, wykonując pięć cykli: 15-sekundowy impuls i 30-sekundową pauzę.
Po odwirowaniu lizatu komórki w temperaturze 21 000 g i czterech stopniach Celsjusza przez 15 minut, przefiltruj supernatant za pomocą sterylnego systemu filtrującego strzykawką. Użyj zautomatyzowanego systemu oczyszczania, wyposażonego w pięciomililitrową kolumnę powiązaństwa na bazie niklu, aby oczyścić frakcję RTA oznaczoną HIS z sterylnie filtrowanego supernatantu E.coli . Ogólnie używaj prędkości elucji jednego mililitra na minutę i chłodzi cały system oczyszczania, aby zapobiec nieefektywnemu wiązaniu toksyn i utracie aktywności toksyn.
Krótko wyrównaj kolumnę afinitetów 20 mililitrów buforu wiążącego, aby usunąć bufor magazynowy. Następnie nałóż sterylny, przefiltrowany supernatant na kolumnę powiązaństwa za pomocą strzykawki. Przemyj kolumnę 25 do 35 mililitrów buforu wiążącego, aby usunąć niezwiązane białka z kolumny.
Wykonuj proces mycia aż absorpcja UV w odległości 280 nanometrów zbliży się do początkowej wartości UV. Następnie eluuj związaną frakcję RTA za pomocą 20 do 35 mililitrów buforu elucijnego i utrzymuj próbkę w lodzie. Ważne jest, aby rozpocząć próbkowanie frakcji RTA wkrótce po wzroście wartości UV 280 i zatrzymać próbkowanie ułamków RTA, gdy ponownie osiągnie pierwotną bazę.
Niniejszy artykuł opisuje metodę oczyszczania białek z dodatkiem polihistydynowego znacznika z komórek bakteryjnych. Proces obejmuje sonikację, wirowanie oraz niklową chromatografię powinowactwa w celu wydajnej izolacji białka docelowego.
Chromatografia powinowactwa z wykorzystaniem żywic niklowych umożliwia szybkie i selektywne oczyszczanie białek rekombinowanych, co wspiera wczesny etap walidacji celów terapeutycznych oraz opracowywanie testów w badaniach i rozwoju biofarmaceutycznym.&D. Niezawodna izolacja białek zTagged polyhistidine zapewnia stałą jakość odczynników do późniejszych badań przesiewowych i analiz mechanistycznych. Ten schemat postępowania stanowi podstawę powtarzalności i skalowalności w ramach procesów badawczych w fazie odkrywania oraz badań przedklinicznych.
Ta metoda oczyszczania powinowactwa znajduje się na styku wczesnej fazy odkrywania i opracowywania testów, umożliwiając płynne przejście do badań przedklinicznych w sytuacjach, gdy wymagane są rekombinowane odczynniki białkowe.
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Ostatnia aktualizacja: 29 sierpnia 2026