Izolacja endospor z próbki środowiskowej poprzez celowaną lizę komórek wegetatywnych

0 wyświetleń4:11 min • November 28th, 2025

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Pobierz próbkę środowiskową zawierającą komórki wegetatywne i endospory bakterii tworzącej endospory, a także inne bakterie.

Endospory mają ochronną powłokę, która pomaga im przetrwać w trudnych warunkach.

Używając jednostki filtracji próżniowej, przefiltruj próbkę, aby uwięzić komórki i endospory na membranie.

Włóż membranę do misy i pokrój na małe kawałki.

Przełóż kawałki do probówki, dodaj bufor i porusz rurkę, aby uwolnić komórki i endospory.

Inkubuj z mieszaniem w wysokiej temperaturze, aby osłabić struktury komórkowe wegetatywne bez uszkadzania endospor.

Schłodź próbkę, następnie dodaj lizozym i inkubuj z mieszanką. Lizozym zakłóca ścianę komórkową komórek wegetatywnych, powodując ich pęknięcie.

Dodaj wodorotlenek sodu i detergent, a następnie inkubuj, aby rozkładać makrocząsteczki komórkowe i zanieczyszczenia, jednocześnie zachowując odporne endospory.

Przefiltruj próbkę, aby wyizolować endospory. Przemyj endospory, aby usunąć nadmiar odczynników, przygotowując je do dalszej analizy.

Po przygotowaniu jednostki filtracyjnej i pompy próżniowej zgodnie z protokołem tekstowym, użyj wypalonych kleszczy z ogniem etanolu, aby dodać sterylną membranę nitrocelulozową do jednostki filtracyjnej. Dodaj połowę właśnie przygotowanej próbki supernatantu na jednostkę filtracji membranowej i użyj pompy próżniowej do zbierania komórek na membranie. Gdy ciecz całkowicie przejdzie przez filtr, zatrzymaj pompę próżniową.

Użyj sterylnych kleszczy, aby ostrożnie usunąć błonę i umieścić ją w sterylnej szalce Petriego. Przy użyciu świeżego kawałka jałowej błony powtórz filtrację z pozostałą połową roztworu. Aby oddzielić endospory od komórek wegetatywnych w właśnie zebranej biomasie, rozmrozić błonę, jeśli była zamrożona, i użyć nożyczek spalonych etanolem, aby pociąć ją na mniejsze kawałki.

Przełóż fragmenty membrany do sterylnej rurki dwumililitrowej i dodaj 900 mikrolitrów buforu 1X TE. Dokładnie wymieszaj przez wirowanie, aby uwolnić biomasę z błony. Inkubuj rurkę w temperaturze 65 stopni Celsjusza i 80 obr./min przez 10 minut.

Następnie wyjmij tubkę z inkubatora i pozwól jej ostygnąć przez 15 minut. Dodaj 100 mikrolitrów świeżo przygotowanego lizozymu do końcowego stężenia dwóch miligramów na mililitr i inkubuj próbkę w temperaturze 37 stopni Celsjusza i 80 obr./min przez 60 minut, aby lizować komórki wegetatywne. Po zakończeniu lizy należy dodać do próbki 250 mikrolitrów 3 normalnych wodorotlenków sodu oraz 250 mikrolitrów 6% roztworu SDS. Inkubuj w temperaturze pokojowej i 80 obr./min przez 60 minut.

Następnie przygotuj sterylną jednostkę filtracyjną, która utrzymuje membrany o średnicy 25 milimetrów poprzez autoklawowanie. Po ostygnięciu jednostki filtracyjnej należy przymontować membranę nitrocelulozową o średnicy 25 milimetrów i 0,2 mikrometra.

Dodaj próbkę na membranę i użyj pompy próżniowej do filtrowania cieczy, wychwytując endospory na błonie, podczas gdy materiał komórkowy wegetatywny przechodzi przez nią.

10:03

Badanie szkodliwego wpływu niskociśnieniowej sterylizacji plazmowej na przeżywalność zarodników Bacillus subtilis przy użyciu mikroskopii żywych komórek

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

08:58

Wizualizacja germinosomów i błony wewnętrznej w zarodnikach Bacillus subtilis

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

10:03

Izolacja, rozmnażanie i identyfikacja gatunków bakterii o właściwościach metabolizowania węglowodorów z siedlisk wodnych

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

02:36

Przygotowanie i izolacja zarodników Streptomyces venezuelae z płynnej kultury

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

11:13

Hodowla i utrzymanie Clostridium difficile w środowisku beztlenowym

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

09:38

Fizyczna izolacja przetrwalników z próbek środowiskowych poprzez celowaną lizę komórek wegetatywnych

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

08:35

Wykrywanie fragmentów kory mózgowej podczas kiełkowania przetrwalników bakteryjnych

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

08:50

Badanie kiełkowania teliosporu za pomocą analizy mikrooddychania i mikrodysekcji

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

08:21

Izolacja i badania przesiewowe pod kątem różnorodności biologicznej gleby pod kątem grzybów biorących udział w degradacji opornych materiałów

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

07:20

Bioprospekcja mikroorganizmów ekstremofilnych w celu rozwiązania problemu zanieczyszczenia środowiska

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

Ostatnia aktualizacja: 22 sierpnia 2026