Dostarczanie biomolekuł fluorescencyjnej do komórek bakteryjnych za pomocą elektroporacji

0 wyświetleń4:55 min • November 28th, 2025

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Zacznij od schłodzonej kuwety zawierającej zawiesinę elektrokompetentnych komórek bakteryjnych, które mają zwiększoną podatność na przepuszczalność błon.

Zawiesina zawiera także biomolekuły oznaczone organicznymi fluoroforami.

Zastosuj impuls elektryczny o wysokim napięciu, aby stworzyć tymczasowe pory błonowe, umożliwiając biomolekułom wejście do cytoplazmy.

Dodaj podłoże bogate w składniki odżywcze i przenieś komórki do rurki. Inkubuj w celu wspomagania naprawy błony.

Wiruj komórki, a następnie odrzucaj supernatant zawierający biomolekuły nieinternalizowane.

Ponownie zawiesić komórki w buforze o wysokiej zawartości soli zawierającym detergent, aby odłączyć biomolekuły przylegające do powierzchni.

Ponownie wiruję w wirówce, wyrzucam supernatant i ponownie zawiesisz komórki w buforze.

Przenieś zawiesinę na filtr i wirówkę, aby usunąć przepływ zawierający biomolekuły nieinternalizowane. Następnie opłucz komórki świeżym buforem i ponownie je zawiesij.

Zamontuj komórki na agarozowej podkładce i załóż pokrywkę. Bakterie oznaczone fluorescencją są gotowe do wizualizacji.

Zaczynając od zapasu fluorescencyjnych biomolekuł przygotowanych w buforze o niskiej wytrzymałości jonowej, przenieś do pięciu mikrolitrów biomolekuł do 20-litrowej aliquoty kompetentnych bakterii lub 50 mikrolitrów kompetentnych komórek drożdży. Ilość fluorescencyjnej biomolekuły inkubowanej z komórkami bezpośrednio koreluje z ilością biomolekuł internalizowanych na komórkę po elektroporacji.

Inkubuj mieszankę na lodzie do 10 minut. Jednocześnie wybierz kuwetę elektroporacyjną o odpowiednich odstępach elektrod i schłodz na lodzie. Przelej mieszankę komórkową do wcześniej schłodzonej cuwette.

Delikatnie stuknij kuwettą kilka razy, aby usunąć pęcherzyki z roztworu. Usuń wilgoć z kuwety ręcznikiem papierowym i umieść ją w elektroporatorycie. Przyłóż impuls wysokiego napięcia do ogniw.

Zaraz po tym procesie sprawdź, czy wyświetlana na elektroporatorze stała czasu wynosi od czterech do sześciu milisekund. Niższe stałe czasowe często wynikają z obecności nadmiaru soli lub bąbelków wewnątrz kuwetty, co może zmniejszyć lub całkowicie zahamować pobieranie biomolekuł do komórek. Impulsy wyższego napięcia poprawiają obciążenie ogniwa, ale mogą także wpływać na żywotność ogniwa.

Bezpośrednio po elektroporacji należy dodać 500 mikrolitrów bogatego medium i przenieść komórki do świeżej rurki o pojemności 1,5 mililitra. Pozwól błonie komórkowej się zregenerować, inkubując bakterie w temperaturze 37 stopni Celsjusza lub drożdże w temperaturze 29 stopni Celsjusza przez 2 do 10 minut. Po wprowadzeniu biomolekuł i odzyskaniu wzrostu należy przez minutę odkręcić komórki w wirówce o temperaturze wstępnie schłodzonej o temperaturze czterech stopni Celsjusza i wyrzucić supernatant.

Ponownie zawiesij pellet w 500 mikrolitrach buforu i powtórz procesy spin-down, usuwania supernatantu oraz ponownej suspensji buforowej jeszcze trzy razy. Te etapy płukania usuwają wszelkie ślady nieinternalizowanych biomolekuł z zawiesiny komórkowej.

W przypadku internalizacji białek znakowanych dodatkowy etap oczyszczania wykonuje się poprzez pipetowanie zawiesiny komórkowej do rurki o pojemności 1,5 mililitra wyposażonej w membranowy filtr o średnicy 0,22 mikrona na wierzchu. Oddziel ogniwa od buforu przez wirowanie, jednocześnie dbając o to, by nad filtrem pozostała wystarczająca ilość cieczy, aby ogniwa nie wysychały, i wyrzuć frakcję przepływową. Pod filtrem dodaj 500 mikrolitrów świeżego PBS na komórki i powtórz kombinację: spin down, a następnie dodaj świeży PBS jeszcze dwa razy.

Wykonaj ostatnie obrócenie z mocą 3 300 g przez minutę, aby usunąć poprzednie płukanie PBS. Ponownie zawiesij komórki 150 mikrolitrów PBS.

Na koniec zdejmij górną pokrywę z wcześniej wykonanej agarozowej podkładki. Załaduj ogniwa na podkładkę, pipetując 10 mikrolitrów zawiesiny ogniwa krople. Po nałożeniu nowego, wyczyszczonego pokrywka na agarozową podkładkę, komórki w kanapkach są gotowe do mikroskopii fluorescencyjnej.

07:04

Oparta na elektroporacji modyfikacja genetyczna pierwotnych ludzkich komórek nabłonka barwnikowego przy użyciu systemu transpozonów Sleeping Beauty

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

10:34

Wytwarzanie i działanie systemu mikroelektroporacji o ciągłym przepływie z detekcją przepuszczalności

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

06:20

Elektroporacja plazmidowego DNA do mięśni szkieletowych myszy

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

11:57

Elektroporacja prątków

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

03:33

Przygotowanie i przemiana bakterii za pomocą elektroporacji wysokonapięciowej

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

03:59

Dostarczanie genów in vitro za pośrednictwem elektroporacji: technika impulsów elektrycznych do wprowadzania fluorescencyjnych plazmidów kodujących białko reporterowe do hodowanych komórek

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

04:41

Wprowadzenie bakteryjnych białek efektorowych do komórek ssaków za pomocą elektroporacji

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

10:51

Mikroskalowy elektroporator wspomagany wirami do sekwencyjnego dostarczania molekularnego

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

15:27

Internalizacja i obserwacja biomolekuł fluorescencyjnych w żywych mikroorganizmach za pomocą elektroporacji

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

08:39

Elektroporacja funkcjonalnych efektorów bakteryjnych w komórkach ssaków

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

Ostatnia aktualizacja: 15 sierpnia 2026