Selektywne wzbogacanie i identyfikacja Salmonella spp. z użyciem ksylozy, deoksycholatu lizyny i chromogenicznego agaru

0 wyświetleń2:10 min. • November 28th, 2025

Zaszczepić hodowlę zawierającą zarówno Salmonellę , jak i inne gatunki niż Salmonella do medium z selenitową cystiną i inkubować.

Selenit hamuje wzrost bakterii wrażliwych na selen, zakłócając ich procesy metaboliczne.

Jednak bakterie tolerujące selen, w tym Salmonella, mogą metabolizować selenit i rosnąć.

Rozmazuj hodowlę na agar lizynowy ksylozy lub XLD i inkubuj.

Salmonella redukuje tiosiarczan sodu w agarze XLD do siarkowodoru, który reaguje z jonami żelaza w ośrodku, tworząc siarczek żelaza, tworząc kolonie z czarnymi środkami.

Natomiast gatunki nienależące do Salmonelli , które nie produkują siarkowodoru, tworzą kolonie bez czarnych centrów, co pozwala na wizualne odróżnienie od Salmonella.

Wybierz kolonię o czarnym środku i nanieś ją na chromogeniczny agar Salmonella , aby zwiększyć specyficzność.

Chromogeniczny agar zawiera substraty enzymów specyficzne dla Salmonelli powiązane z chromoforami.

Enzymy salmonelli rozszczepiają te substraty, uwalniając chromofory i tworząc kolonie o pigmentacji.

Wybierz te kolonie do dalszej analizy.

Dodaj 100 mikrolitrów kultury wstępnej wzbogacenia do pięciu mililitrów kryształowego medium selenitu. Następnie wysiabuj hodowlę w temperaturze 36 stopni Celsjusza przez 18 do 24 godzin. Następnie zbierz jedną pętlę hodowli i rozłóż ją na talerzu.

Następnie inkubuj płytkę w temperaturze 36 stopni Celsjusza przez 18 do 24 godzin. Po wysiadaniu wybierz podejrzane kolonie i przenieś je na talerz. Inkubuj płytkę w temperaturze 36 stopni Celsjusza przez 18 do 24 godzin.